sds-page检测蛋白质纯度

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1、SDS-PAGE检测蛋白质纯度1．电泳的基本原理许多生物分子都带有电荷，其电荷的多少取决于分子性质及其所在介质的pH及其组成。由于混合物中各组分所带电荷性质、电荷数量以及分子量的不同，在同一电场的作用下，各组分泳动的方向和速度也各异，因此，在一定时间内，由于各组分移动距离的不同，而达到分离鉴定各组分的目的。2．影响电泳的主要因素2.1电泳介质的pH当介质的pH等于某种两性物质的等电点时，该物质处于等电状态，即不向正极或负极移动。当介质pH小于其等电点时，则呈正离子状态，移向负极；反之，介质pH大于其等电点时，则呈负离子状态，移向正极。因此，任何一种两性物质的混合物电泳均受介质pH的影响，即

2、决定两性物质的带电状态及其量，为了保持介质pH的稳定性，常用一定pH的缓冲液，如分离血清蛋白质常用pH8．6的巴比妥或三羟甲基氨基甲烷（Tris）缓冲液。2.2缓冲液的离子强度离子强度对电泳的影响是：离子强度低，电泳速度快，分离区带不易清晰；离子强度高，电泳速度慢，但区带分离清晰。如离子强度过低，缓冲液的缓冲量小，不易维持pH的恒定；离子强度过高，则降低蛋白质的带电量(压缩双电层)使电脉速度减慢。所以常用离子强度为0.02-0.2之间。2.3电场强度电场强度和电泳速度成正比关系。电场强度以每厘米的电势差计算，也称电势梯度。如纸电泳的滤纸长15cm，两端电压（电势差）为150V，则电场强度为

3、150/15=10V/cm，电场强度愈高，则带电粒子的移动愈快。电压增加，相应电流也增大，电流过大时易产生热效应可使蛋白质变性而不能分离。2.4电渗作用在电场中，液体对固体的相对移动，称为电渗。如滤纸中含有表面带负电荷的羧基，溶液则向负极移动。由于电渗现象与电泳同时存在，所以电泳的粒子移动距离也受电渗影响，如纸上电泳蛋白质移动的方向与电渗现象相反，则实际上蛋白质泳动的距离，等于电泳移动距离减去电渗距离。如电泳方向和电渗方向一致，其蛋白质移动距离，等于二者相加。电渗现象所造成的移动距离可用不带电有色染料或有色葡聚糖点在支持物的中间，观察电渗方向和距离。2.5对支持物的选择一般要求支持物均匀，

4、吸附力小，否则电场强度不均匀，影响区带的分离，实验结果及扫描图谱均无法重复。如纸电泳时，滤纸厚薄不均匀或吸附力过大，则蛋白质或其他胶体颗粒在它们泳动过程中有一部分被滤纸吸附，造成分离区带蛋白含量相对量降低。因此，电泳前应事先处理滤纸，以减低滤纸的吸附能力，可取得较好的分离效果。若选用WhatwanNo．1号滤纸或国产新华滤纸，一般不需要进行预处理。2.6温度对电泳的影响电泳过程中由于通电产生焦尔热，热对电泳有很大的影响。温度升高时，介质粘度下降，分子运动加剧，引起自由扩散变快，迁移率增加。温度每升高1度，迁移率约增加2.4％。为降低热效应对电泳的影响，可控制电压或电流，也可在电泳系统中安装

5、冷却散热装置。3．电泳的分类3.1按分离原理分类可分为区带电泳、移界电泳、等速电泳和聚焦电泳4种。1）区带电泳电泳过程中，不同的离子成分在均一的缓冲液中分离成独立的区带，这是当前应用最广泛的电泳技术。2）移界电泳是Tiselius最早建立的电泳，它是在U型管中进行的，由于分离效果较差，已为其它电泳技术所取代。3）等速电泳需专用电泳仪，当电泳达到平衡后，各区带相随分成清晰的界面，并以等速移动。4）等电聚焦由于具不同等电点的两性电解质载体在电场中，自动形成pH梯度，使分离物移动至各自等电点的pH处聚集成很窄的区带，且分辨率较高。从表面看与区带电泳相似，但原理不同。3.2区带电泳的分类1）按支持

6、物物理性状分类1.滤纸及其他纤维素膜如乙酸纤维膜、玻璃纤维膜、聚胺纤维膜电泳。2.粉末电泳，如纤维素粉、淀粉、玻璃粉电泳。3.凝胶电泳，如琼脂糖、琼脂、硅胶、淀粉胶、聚丙烯酰胺凝胶电泳。4.丝线电泳，如尼龙丝、人造丝电泳。2）按支持物的装置形式不同分类 1.平板式电泳，支持物水平放置，是最常用的电泳方式。2.垂直板式电泳。3.连续流动电泳，首先应用于纸电泳，将滤纸垂直竖立，两边各放一电极，缓冲液和样品自顶端下流，与电泳方向垂直。可分离较大量的蛋白质。以后有用淀粉、纤维素粉、玻璃粉等代替滤纸，分离效果更好。3）按pH的连续性不同分类1.连续pH电泳：电泳全部过程中缓冲液pH保持不变。如纸电泳

7、、乙酸纤维膜电泳。2.不连续pH电泳：缓冲液与支持物之间有不同的pH，如聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳、等电聚焦电泳、等速电泳等，能使分离物质区带更加清晰，并可作ng级微量物质的分离。不连续电泳与连续电泳的主要区别在于前者①有两层不同孔径的凝胶系统；②电极槽中及两层凝胶中所用的缓冲液pH值不同；③电泳过程中形成的电位梯度亦不均匀。而后者在这三个方面都是单一或是均匀的。4．几种常见的电泳方法 4.1聚丙烯酰胺凝胶电泳 聚丙烯酰胺凝