《动物实验操作》PPT课件

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1、动物实验基本技能医学科研实验中心2013.7.3大鼠生物学特性大鼠汗腺极不发达，仅在爪垫上有汗腺，尾巴是散热器官。大鼠无呕吐反应，对许多药物易产生耐药性。对营养缺乏敏感，可发生典型的缺乏症状。大鼠无胆囊，胆汁通过总胆管进入十二指肠。大鼠神经系统与人类相似。动物实验基本技能编号与标记方法大鼠的抓取大鼠麻醉供试品给予方法采集体液大鼠的采血一、编号与标记方法染色法穿耳孔法标牌法烙印法剪毛法在每组动物不超过l0只或一个实验不超过40只的情况下适用实验动物：大鼠、小鼠染色剂：3-5％苦味酸溶液，可染成黄色染色法：单色涂染法涂染原则：从左到右、从上到下左前肢为1号、左

2、侧腹部2号、左后肢3号，两耳后部4号、背部5号、后肢背部6号，右前肢7号、右侧腹部8号、右后肢9号头部为40号、尾巴根为10号。方法步骤在每组动物不超过100只的情况下适用实验动物：大鼠、小鼠常用染色剂：3-5％苦味酸溶液，可染成黄色，作为“个”位数常用染色剂：0.5%中性红或品红溶液，可染成红色，作为“十”位数染色法：双色涂染法用两种颜色同时进行染色标记用苦味酸(黄色)染色标记作为个位数，个位数的染色标记方法同单色涂染法用品红(红色)染色标记作为十位数方法步骤左前肢为10号、左侧腹部20号、左后肢30号两耳后部40号、背部50号、后肢背部60号右前肢70

3、号、右侧腹部80号、右后肢90号第100号不作染色标记方法步骤穿耳孔法：用专用耳空器在动物耳朵不同部位打一小孔或缺口表示一定号码的方法。原则是：左耳代表十位，右耳代表个位。实验动物：兔、犬、猪标牌法：一般挂在动物的颈部、耳朵、脚上。实验动物：犬、猴烙印法剪毛法其它方法器材：大鼠饲养盒+面罩1套方法步骤：首先戴好防护手套用右手拇指和食指抓住小鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤，完成抓取固定二、大鼠的抓取动物全身麻醉分四期：第一

4、期：随意兴奋期，出现运动与运动失调第二期：不随意兴奋期，由意识完全丧失至规则的自动呼吸开始时止第三期：外科麻醉期第四期：延髓麻醉期，进入此期，麻醉已严重过量三、实验动物麻醉麻醉方法：全身麻醉和局部麻醉，通过吸入、注射（静脉、皮下、肌肉、腹腔）、口服、灌胃等方法使动物麻醉常用麻醉药物：乙醚（吸入），戊巴比妥钠、硫贲妥钠、氯胺酮（静脉），普鲁卡因、利多卡因（局麻）麻醉方法与麻醉药种类戊巴比妥硫贲妥钠盐酸氯胺酮水合氯醛乌拉坦mg/kg途径mg/kg途径mg/kg途径mg/kg途径mg/kg途径小鼠3550IVIP2550I.V.IP22-44IM400IP--大

5、鼠2550IVIP2040IVIP22-44IM300IP0.75IP豚鼠3040IVIP2055IVIP22-44IM200-300IP1.5IP家兔3040IVIP20IV22-441.0IVIP狗30IV25IV125IV1.0IV猪<45kg>45kg30-2015IVIV10-95IVIV10-1510-15IMIM常用麻醉药剂量与注射途径麻醉前应禁食8h以上麻醉前应准确称体重注意麻醉剂量麻醉过程中注意观察动物的反应情况注意保温静脉注射时必须缓慢，在寒冷冬季，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平注意事项原理：是使用非挥发性麻醉药对动物进行全麻术的方

6、法器材：3％戊巴比妥钠、注射器大鼠的麻醉用左手将大鼠捉持保定，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部右手持注射器将针头在下腹部靠近腹白线的两侧进行穿刺针头刺入皮下后进针3mm左右，接着使注射针头与皮肤呈45度角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液大鼠麻醉步骤经口给药注射给药1.皮下注射给药2.皮内注射给药3.肌肉注射给药4.静脉注射给药5.腹腔注射给药四、供试品给予方法自动口服给药灌胃给药:是借器械将药物直接灌入动物胃内的方法，此法可以准确控制给药量，但如果操作不当易造

7、成动物死亡经口给药将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液操作前，大致量一下从口到胃的距离，估计灌胃针头插入的深度左手捉持动物，使头部向上；右手持针，把灌胃针头的前端放进动物的口腔，顺着上腭部插入咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌胃针会顺着食管滑入动物的胃内，此时没有抵触感用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的药液灌入动物的胃中灌胃给药剂量：小鼠约0.1-0.5ml／10g体重，最大体积为1.0ml/只；大鼠约1-2ml／100g体重，最大体积为1.0ml/只注意：在灌胃过程中，避免误插入气管灌胃给药1.皮下注射给药原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋

8、巴管吸收进入血液循环器材：1m1注射器1支、生理盐水、烧杯、酒精、