动脉血压的神经体液调节

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1、实验四动脉血压的神经体液调节实验内容1.示教2.每组单独完成实验时间安排10：00—看示教、完成家兔的麻醉、气管插管午饭—分离神经、血管…完成实验要求：1.实验后统一总结2.第四组值日3.每大组打印一份结果，写实验报告。实验目的1.学习急性哺乳类动物实验的常规手术。2.观察家兔颈迷走神经、减压神经及去甲肾上腺素、乙酰胆碱等对心血管活动的影响。实验思路记录心血管活动的改变电脑、采样条件设置(已备好）夹闭颈总动脉、电刺激神经、静脉注射药物施加影响因素观察心血管活动动脉血压、心率麻醉、气管插管动脉插管等1.2.3.实验方法与步骤（操作均需掌握）1.称重、麻醉、固定家

2、兔：用2﹪戊巴比妥钠经耳缘静脉缓慢注射麻醉(2ml/kg体重),然后将家兔仰卧固定于兔手术台上。2.气管插管：3.分离神经、血管：拉开气管两旁的肌肉，暴露并分离出左右两侧的血管神经束（颈动脉鞘），细心辨别出减压神经（最细）、颈交感神经、迷走神经（最粗）和颈总动脉，用玻璃分针分离出——左右减压神经、右迷走神经、左右颈总动脉（左侧分离2cm左右以备动脉插管）——分别穿上不同颜色的线备用。3．动脉插管：在左颈总动脉下穿两条线。一条线结扎其远心端（尽可能靠近头端结扎），另一线在近心端，挽个松结备用，在松结下方用动脉夹将动脉夹闭。然后在动脉紧靠头端结扎处的近心侧用眼科剪

3、作一斜形切口（注意：剪刀稍放平，切勿将动脉剪断）。将动脉插管（已充满肝素）由切口向心脏方向插入血管，将备用线的活结扎紧，余线可结扎固定于插管上的橡皮圈上，以防滑脱。麻醉方法1．局部麻醉法局部麻醉包括表面麻醉、浸润麻醉和阻断麻醉等。其中，浸润麻醉最为常用。浸润麻醉方法：根据实验操作要求的深度，将1﹪－2﹪的盐酸普鲁卡因按皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的顺序依次分别注入，阻断手术部位的神经冲动传导，使疼痛消失。适用于中型以上的动物。2．全身麻醉法(1)吸入麻醉法：先将蘸有乙醚的棉球放入玻璃罩内，然后投入待麻醉动物，经过1－2分钟左右，动物逐渐失去运动能力。使用该法麻

4、醉时间不可太长，麻醉时要密切观察，防止动物缺氧、窒息或麻醉过深而死亡。该法适用于大、小白鼠的短时间麻醉。较大的动物也可用，但需要使用麻醉口罩等。(2)注射麻醉：经腹腔或静脉注射麻醉，其操作简便，较常采用。腹腔给药麻醉法多用于小鼠、大鼠和豚鼠等动物。静脉给药麻醉法则多用于兔、狗等较大的动物。各种动物的静脉注射部位及方法见本章第四节内容。动物麻醉的注意事项1．准确计算麻醉剂量所有麻醉药使用过量均可引起中毒，故应特别注意麻醉药的使用剂量及用药途径。在严格按照体重计算麻醉剂量的同时，还要考虑动物对药物耐受性的个体差异。2．缓慢注射，并随时观察动物情况注射过程中，注意观

5、察肌肉紧张性、角膜反射、呼吸频率和夹痛反应等指标。当这些反应明显减弱或消失时，应立即停止注射。3．注意保温动物在麻醉期体温下降，要采取保温措施。为随时观察体温的变化，可在动物的肛门插入体温计。在寒冷的冬季做慢性实验时，在注射前应将麻醉剂加热至动物体温水平。4．万一麻醉过量，应积极抢救可根据不同情况，施行人工呼吸、注射呼吸兴奋剂或强心剂等抢救措施。耳缘静脉注射法耳缘静脉注射主要用于家兔、豚鼠等。注射方法：固定兔耳，找到耳的外侧缘皮下静脉，拔去注射部位的毛，并用手指轻轻弹动该处（或先用一动脉夹在静脉近心端夹闭静脉），使静脉充盈。然后左手持平耳缘部，右手持注射器从血

6、管远端刺入（针头与血管呈近30°夹角），沿血管平行方向进针约1cm，回一下血，放松对静脉近心端的压迫，缓慢推入药液。观察项目(1)观察正常血压和心搏曲线，识别一级波和二级波，观察有无三级波(2)夹闭颈总动脉提起右颈总动脉的备用线，用动脉夹夹闭颈总动脉5－10秒，观察血压与心搏的变化。(3)用备用线结扎迷走神经，于结扎处的头端剪断之。然后用刺激电极刺激迷走神经的外周端，观察血压、心搏的变化。(4)持备用线轻轻提起右侧减压神经，将其搭在保护电极（刺激电极）上，刺激减压神经，观察血压、心搏的变化。(5)耳缘静脉注射1/10000去甲肾上腺素0.3－0.4ml，观察血

7、压心搏的变化。(6)耳缘静脉注射1/100000乙酰胆碱0.3－0.4ml，观察血压、心搏的变化。注意事项1.麻醉时，进针应由耳缘静脉远端开始，推注麻醉药物时要缓慢，并随时观察动物的反应，防止动物死亡。2.手术操作要小心准确，避免损伤神经、血管。分离神经血管时，应尽量保持其解剖关系的正常，最先分离减压神经。3.实验前应检查动脉插管口斜面是否光滑，检查压力换能器、三通开关是否畅通，有无漏水等。＠4.每进行一个项目后，须待心搏与血压恢复正常后方可进行下一项目。5.实验过程中应随时注意动物的状态（如麻醉深度），动脉插管的位置是否扭转、有无漏血等。心迷走中枢心交感中枢

8、缩血管中枢心脏血管窦弓压力感受器+血压