失血性休克及抢救.ppt

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1、失血性休克及抢救人体机能实验中心卢琼目录实验目的实验原理及相关知识实验材料实验步骤注意事项实验结果实验小结一二三四五六七一.实验目的1．复制家兔失血性休克。2．观察失血性休克时某些指标的变化。3．探讨失血性休克的发病机理及抢救。4．观察休克时动物的表现及微循环的变化。实验难点实验重点2.影响因素影响因素失血量失血速度一般15分钟内失血<全血量10%——可代偿>全血量20%——休克>全血量50%——可能死亡二.实验原理及相关知识1.失血性休克(hemorrhagicshock)由于大量失血失液所引起.见于外伤、溃疡出血、食管静脉曲张出血及产后大出血等。失血失液血容量急剧减少微血管痉挛重要生命

2、脏器和细胞代谢障碍及结构损坏血压下降交感-肾上腺髓质系统兴奋儿茶酚胺大量释放微循环灌流量减少组织缺氧,代谢性酸中毒微循环淤血DIC凝血活性↑血管容量↑大量血浆渗出血压↓静脉回流↓失血性休克发病机制示意图3.临床表现4.失血性休克的抢救烦躁神态淡漠或昏迷皮肤苍白或花纹四肢湿冷少尿或无尿脉压↓血压↓血液回输三.实验材料家兔，20%乌拉坦溶液，0.3%肝素溶液，生理盐水，微循环灌流液，哺乳动物手术器材一套，BL-420生物机能实验系统，微循环灌流装置，BI-2000图象分析系统，输血输液装置，动、静脉套管，1m1、10ml注射器各1只，光学显微镜，压力及张力换能器。四.实验步骤1.称重,麻醉(耳

3、缘静脉注入20%乌拉坦溶液5ml/kg)2.固定(仰卧位)剪毛(颈部和剑突部位)在颈部正中线作一5～6cm切口气管插管左侧和右侧颈总动脉插管两侧动脉插管内均应充满肝素左侧连压力换能器,检测血压右侧暂时夹闭,以备放血左侧和右侧颈外静脉插管左侧连输液装置,控制输液速度为25~30滴/min右侧插至右心房口处(约5cm)连压力换能器,检测中心静脉压3.在耻骨联合上作下一5cm腹部正中切口膀胱插管4.将涂有液体石蜡的温度计缓慢插入家兔肛门约2cm，后读取正常值。5.在右侧腹直肌旁作6cm纵切口，钝性分离肌肉，打开腹腔后，推开大网膜，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻的从腹腔中拉出，放置在循环灌流盒

4、中，显微镜下观察微循环的变化。微循环的观察6.放血前观察记录各项生理指标，包括一般情况，皮肤粘膜颜色、肛温、血压、尿量、中心静脉压、心率、呼吸及肠系膜微循环的变化。7.休克模型复制：打开右侧动脉导管与贮血瓶（加入少量肝素）连接皮管上的夹子，边放血边观察血压的变化，一直到血压降至40mmHg，停止放血（记录失血量）。并以数次少量放血维持这种低血压状况20分钟，此间，应继续细致观察和详细记录各项指标的变化。（皮肤粘膜颜色、肛温、血压、尿量、中心静脉压、心率、呼吸及肠系膜微循环）8.抗休克：停止放血，快速从静脉输回原血和失血量等量的生理盐水（150滴/分），进行紧急抢救。输血输液后，再观察记录动

5、物的一股情况、生理指标、微循环的变化。五.注意事项1．麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛可引起神经源性休克。2．尽量减少因手术而引起的出血。3．拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。4．动脉导管和注射器内应事先加入一定量的肝素，静脉导管一经插入，即立刻输液以防止血凝。5．微循环观察最好保持同一视野，便于实验过程中的比较。6．由于步骤较多，术前人员分工和操作程序要安排好，避免术中忙乱。六.实验结果皮肤黏膜颜色肛温(℃)血压(mmHg)尿量(滴/min)中心静脉压(mmHg)心率(次/min)呼吸(次/min)微循环放血前放血后输血后表1放血及输血前后各项指标的变化皮肤黏膜颜色:红润→苍白/花纹→红

6、润肛温:正常→降低→正常/稍低血压:正常→降低→正常/稍低尿量:正常→少/无→正常/稍少中心静脉压:正常→降低→正常/稍低心率:正常→加快→正常/稍快呼吸:正常→加快→正常/稍快微循环的变化:正常缺血性缺氧期淤血性缺氧期DIC性缺氧期七.实验小结1.失血性休克是各种因素导致机体血容量急剧减少，组织血液灌流量严重不足，引起的急性循环衰竭，其特点是微循环障碍、重要脏器的灌流不足和细胞功能代谢障碍，以致各重要生命器官和细胞功能代谢障碍及结构损害的全身性病理过程。2.失血性休克时应立即予以快速输血进行治疗,防止因多系统器官功能不全或衰竭而导致死亡。THANKS