兔子实验报告15154130

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1、*.生理兔子实验报告主题：血压测量、呼吸运动调节实验班级：151541实验小组：第三组实验日期：2016年5月31日具体分工：主刀：15154114李睿哲副手：15154111朱梦洁、15154113周紫星麻醉：15154112陈海芹、15154115谢明思器械管理：15154130李部实验数据记录整理：15154131毕长鹏一、实验目的：通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。二、实验原理：正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉

2、血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。*.呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。三、实验器材：实验动物：一只健康兔子（2.88Kg)实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、

3、肾上腺素 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针四、实验步骤1.实验仪器的准备首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。2.连接压力传感器和液体传递系统用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的

4、生理盐水，使之充满液体。3.动物准备1)术前准备a.*.麻醉：取家兔一只，称重，耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦(5mL/kg体重)进行麻醉。注射时速度要慢，并注意观察动物情况。当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。a.固定与剪毛：将动物背位固定于手术台上（如图-2），用剪毛剪将颈部手术区的被毛剪去，即可进行术。2)手术a.切开皮肢：在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5~7cm的皮肤切口，用止血钳钝性分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。b.分离气管，颈部迷走

5、、交感、减压神经和颈总动脉。将气管旁肌肉翻开，内面朝上，暴露血管和神经。见到三条平行排列的神经：迷走神经最粗、明亮；交感神经较细，光泽较暗；减压神经最细，用玻璃分针分别沿动脉、神经纵向划开附着的结缔组织膜，游离出一段。动脉尽量游离得长一些。分别穿双线备用，先不结扎。尽量清除掉神经外结缔组织、脂肪组织，但切勿损伤神经和伴行的小血管，以免影响神经的鉴别和实验观察。3）实施气管插管*.将玻璃分针从气管下穿过，顶起气管，在气管下穿双线。用镊子清除气管表面的结缔组织，选择合适位置（避开喉头），用眼科剪在软骨环上横向切开

6、（不要在肌肉上切口，容易出血），开口要大，约气管直径的1/2（不要切断气管），再向下纵向切开0.5cm，形成“T”型切口。将气管插管插入，结扎紧，避免脱出。将玻璃分针取出。连接呼吸流量换能器。4)实施动脉插管钝性分离左颈总动脉，靠动物头侧的部分尽可能多分离些，并在其远心端穿线结扎，用动脉夹夹住动脉的近端。在此段血管下穿一条线以备套管插入后结扎用。用眼科剪在尽可能靠远心端处作一斜形切口，约剪开管径的一半，然后把动脉套管经切口向心脏方向插入动脉，用已穿好的丝线扎紧插入动脉的套管前端部分，并以同一丝线在套管的上端（

7、针头与塑料管交连处）缚紧固定，以防套管从插入处滑出。4.实验观察1)观察正常血压、呼吸曲线。可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。2)刺激迷走神经。使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起迷走神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。记录对照血压曲线*.后，再用中等强度的连续电脉冲信号，通过保护电极，刺激神经。血压明显下降后即可停止刺激，并待血压恢复。如果血压并不下降，可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。3)刺激减压神经，方法同上。4)刺激交感神经，方法同上。5）在兔子的耳缘静

8、脉缓慢注射肾上腺素。注射时速度要慢，并注意观察血压、呼吸曲线。5、处死动物，结束实验。五、实验结果及数据分析1、兔的正常活动表现2、夹闭颈总动脉表现当夹住劲动脉时，血压上升明显。原理：当夹闭颈总动脉时，心室射出的血液不能流经该侧颈动脉窦，使窦内压力降低，压力感受器受到刺激减弱，经窦神经上传中枢的冲动减少，降压反射活动减弱，因而心率加快、心缩力加强、回心血量增加(因容量血管收缩)、心输出量增加；阻力血