干旱胁迫对小麦幼苗生理生化指标地影响

干旱胁迫对小麦幼苗生理生化指标地影响

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1、实用文档干旱胁迫对小麦幼苗生理生化指标的影响摘要:以小麦幼苗为试验材料,研究干旱胁迫对小麦生理生化指标脯氨酸(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)、抗氧化酶(PPO、POD)、谷胱甘肽(GSH)、抗坏血酸(ASA)的含量的影响。试验结果表明:在干旱胁迫下除发芽率下降外,小麦幼苗的脯氨酸(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)、抗氧化酶(PPO、POD)、谷胱甘肽(GSH)的含量都比正常情况下小麦幼苗的含量多。关键词:干旱胁迫小麦幼苗生理生化指标引言:植物体生存在自然环境中,其水热条件随时都变化,对植物多少会产生一些影响。凡是对植物产生伤害的环境

2、都被称为逆境,也称胁迫。干旱也属于逆境,水分在植物的生命活动中占主导地位。大多数植物遭受干旱逆境后各个生理过程都会受到不同程度的影响。如生理生化指标脯氨酸(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)、抗氧化酶(PPO、POD)、谷胱甘肽(GSH)等发生变化。小麦的生长不仅受到自身遗传物质的控制,还受到众多环境因子的影响,如光、温、水和土壤营养物质等。世界上约有70%的小麦播种面积分布在干旱、半干旱农业区,干旱对小麦的生理、生化都产生重要的影响,进而影响小麦的生长发育、产量和品质。因此,为了减小环境对小麦生产的影响,有必要从小麦的各项生理生化指标含量的变化,来

3、研究干旱胁迫对小麦的影响。本次实验是研究吸胀12小时萌发一周后,干旱处理一周的小麦其生理生化指标脯氨酸文案大全实用文档(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)、抗氧化酶(PPO、POD)、谷胱甘肽(GSH)、抗坏血酸(ASA)含量的变化。一、材料与方法1、材料及处理将吸胀12小时的小麦种子在有6层湿润滤纸的带盖白磁盘(24cmX16cm)培养基中生长7天,7天后将其中一部分幼苗干旱生长7天,7天后用相同的方法分别对实验组和对照组的小麦进行脯氨酸(Pro)、丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)、抗氧化酶(PPO、POD)、谷胱甘肽(GSH)、抗坏血酸(AS

4、A)的含量的测定。2、测定方法[1](1)小麦种子发芽率的测定各取50粒吸胀的小麦种子→沿胚的中心线切成两半(严格区分两个半粒),进行下列实验:其中50个半粒进行TTC染色(30℃水浴20min),另50个半粒进行曙红染色(室温染色10min)根据两种方法的染色情况,分别计算发芽率。(2)脯氨酸(Pro)含量的测定①脯氨酸(Pro)的提取:分别取0.1g实验组和对照组的胚芽鞘→加入3mL3%磺基水杨酸(SSA)和少许石英砂→充分研磨→用2mL3%SSA洗研钵→5000rpm离心10min→上清液定容至5mL。②脯氨酸(Pro)的测定:上清液各2mL→分别加入2mL冰

5、乙酸和2mL茚三酮试剂→煮沸15min→冷却后→5000rpm离心文案大全实用文档10min(若没沉淀可略此步骤)→分别测定A520,将测得的结果用公式Procontent=计算出正常和干旱生长小麦的胚芽鞘的脯氨酸含量。(3)丙二醛(MDA)含量的测定①丙二醛(MDA)的提取:分别取0.1g实验组和对照组→加入3mL10%TCA和少许石英砂→充分研磨→用2mL10%TCA洗研钵→5000rpm离心10min→上清液定容至5mL。②丙二醛(MDA)的测定:分别取上清液各2mL→加入0.6%TBA(用10%TCA配制)2mL→煮沸12min→冷却后→5000rpm离心5

6、min→分别测定OD450和OD532将测得的OD450和OD532的数据带入下列公式OD450=C1x85.4OD532=C1x7.4+C2X155000C1:可溶性糖的浓度,C2:MDA的浓度解方程计算出C1可溶性糖的浓度,C2MDA的浓度。(4)过氧化氢(H2O2)含量的测定①过氧化氢(H2O2)的提取:分别取0.1g实验组和对照组→加入3mL50mMPBS(pH=6.8,内含1mMHA)和少许石英砂→充分研磨→用2mLPBS洗研钵→5000rpm离心10min→上清液定容至5mL。②过氧化氢(H2O2)含量的测定:分别取上清液各3mL→文案大全实用文档加入0

7、.1%Ti(SO4)2[用20%(v/v)H2SO4配制]1mL→摇匀→5000rpm离心10min→OD410将测得的OD410值带入下列公式H2O2content=(mmol.g-1FW)计算出H2O2酶的含量。(5)抗氧化酶(PPO、POD)的测定①抗氧化酶(PPO、POD)的提取:分别取0.1g实验材料→加入少许石英砂和3ml提取液(50mmol/LPBS,pH6.0,内含0.1mmol/LEDTA,1%PVP)→充分研磨 →转入离心管中→用2ml提取液洗研钵→5000rpm离心10min→上清液定容至5ml→用于测定POD和PPO酶活性或分装后转至-2

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