实验十二 细胞电泳

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1、实验十二细胞电泳一、实验目的了解细胞电泳的原理及意义，学习细胞(包括细胞器)电泳速度及其ζ电位的测定方法。二、实验原理所谓细胞电泳，就是将细胞制成悬浮溶液．使其单个游离的细胞分散于等渗的介质中。在外电场的作用下，细胞在特殊的装置内发生运动．这种现象称作细胞电泳。细胞表面具有一定的电荷(通常为负电荷)，它能象无机离子一样均匀地分布在介质中。细胞表面吸附了一层极薄的水膜，它与介质间存在着电位差，此电位差称为ζ电位。每种细胞在恒定的条件下(如温度、电压、电流，介质浓度，溶液的PH值等)其电泳速度和ζ电位十分稳定，

2、但在各种有害因子病理状态的影响下，可降低其表面电荷，所以电泳速度和ζ电位值也发生改变(降低)。因此，利用细胞电泳对研究生命结构的表面性质，鉴定细胞或单细胞有机体的机能和病理状态，具有重要的意义，是一种十分有用的方法。有些细胞器(如叶绿体)也具有上述的类似的细胞特性，可进行与细胞电泳类似的细胞器电泳。三、实验用品(一)材料：鼠全血细胞，菠菜叶绿体。(二)用具：细胞电泳仪，光学显微镜，电子表，台微尺，目微尺，细胞电泳架，电泳毛细管，吸血量管，洗耳球，盐桥等。(三)试剂1．生理盐水甘油溶液：O.9％NaCl，0.

3、32M甘油溶液，每毫升加入4-5V(国际单位)的肝素。混匀备用。2．8％蔗糖甘油溶液：8％的蔗糖，O.32M甘油溶液，每毫升加入4-5V(国际单位)的肝素，混匀后备用。四、实验方法(一)细胞电泳前的准备工作1．目微尺校正：与实验二“台微尺与目微尺的校对”相同的操作。2．毛细管d／10层的测定：电泳毛细管的长度为6cm。内腔是正方形或长方形，圆形等。在其中相对应的一对内壁中线处，各刻有一条与长轴平行的滚线，而两线之间的距离为电泳室的厚度d。d的测量同实验二中“厚度的测量”部分。然后将测得的d值除以10，便求得

4、了d／10层的刻度数，将微调回零后，再转动到上述刻度值，便是d／lO层的位置。3．细胞(或细胞器)悬液调制，用血球计数板对悬液计数，然后调制细胞(或细胞器)浓度，全血细胞约2000个／mm3，叶绿体为5000一10000个／mm3。4．显微镜固定及毛细管和银电极的清洁：(1)选可翻转的显微镜以免细胞在电泳时迅速下沉，脱离观察面。(2)用肥皂水(最好用十二烷基磺酸钠)冲洗毛细管电泳室，然后用清水冲洗数次。(3)用普通纱布将电泳架两端的银电极擦干净，以免正反两方向的电泳速度显著不一样。(二)细胞(或细胞器)电泳

5、速度及ζ电位的测定：1．根据所使用的输入电源，将仪器背面的电源选择钮“交流一直流”，调至所要求的位置。2．接通电源，打开电源开关，指示灯亮。3．插入直流输出引线，并注意电极夹的正负极短路，以免损坏仪器。4．将调整开关至“工作”档，换向开关至“正”档，然后调节“电压调节’’及“电流调节”二旋钮，动物细胞电泳时，电压调至40伏，电流调至lmA；叶绿体电泳时，电压调至55伏，电流以调至lmA。调好后再将开关推到“停止”档。5．将制备的样品灌注毛细管电泳室，其灌注方法是：(1)将毛细管斜插入被测样品中，由于毛吸管吸

6、引作用，则整个管腔内充满了被测样液。(2)也可用橡皮胶头的吸吮作用将样品灌满电泳室。将注灌样品的毛细管水平移至电泳架上，并夹紧，然后利用盐桥将细管与银极接通。6．将电泳架移至显微镜载物台上，调整焦距，使焦面落在管腔的d／lO—d／15处。为了对照可测d／2处的电泳速度。7．通过直流输出引线夹，分别与两极接通。8．测量(1)将开关调至“工作”档，再调节电压使其达到原来(即操作4中所调)的水平，由于电场作用，在视野内可观察到管腔内细胞的移动。记录某个细胞通过目微尺2格的时间。(2)将开关调至“停止”档，细胞即停

7、止移动。(3)将换向开关调至“负”处，调整高速开关调至“工作”档，由于电流方向变更，则细胞向相反方向移动，此时再选择一细胞按上述方法，记录下电泳时间。(4)如此反复测量多次，分别记录实验数据。(5)实验结束后，将电压及电流二钮调回到“0”处，调整开关至“停止”处，并断开电源；将毛细管洗干净，同时将电极擦净，放回原处，显微镜恢复到直立状态。9．电泳速度计算：根据所测目微尺的实际刻度值，计算出每次的电泳距离S，将所测电泳距离的总和除以所测时间的总和，得出电泳的平均速度，以下式表示：=∑s/∑ts1+s2+……+

8、snt1+t2+……+tnW=一般s以cm计算，t以秒计算10．ζ电位的计算：根据所测电泳速度，可用下式求得ζ电位：w×rζ=140×vw：cm/秒；r：cm；v：伏特；ζ：伏特五、作业1．根据实验数据，求出鼠的全血细胞和叶绿体的电泳速度和ζ电位。2．全血细胞在蔗糖和生理盐水的肝素甘油液的两种介质中时，其电泳速度有无差别。附：材料悬液的制备及盐桥制备法。一．悬液制备：1．鼠的全血细胞悬液制备用微量吸取全血10mm