实验性脑出血动物模型的研究现状

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1、实验性脑出血动物模型的研究现状【摘要】本文对实验动物选择、胶原酶诱导法脑出血模型、自体血注入法脑出血模型、微球囊充胀法脑出血模型和自发性脑出血模型的制作方法、病理生理学和各自的优缺点作一综述。【关键词】脑出血；动物模型；综述文献高血压脑出血是一种临床常见的、病死率和致残率都较高的重症疾病，缩短了人类的预期寿命和降低了患者的生活质量。由于很多研究脑出血损伤机制及防治的方法都是损伤性的，故脑出血动物模型是国内外研究脑出血疾病的必要工具，且研究脑出血的损伤机制、神经功能的恢复以及相关的治疗策略须选择适合的模型。本文就各种实验性脑出血动物模型的制作方法、病理生理学和各自的优缺点作一

2、综述。1实验动物的选择根据研究目的不同须采用不同的动物制作脑出血模型：大动物如猫、猪、猴、犬等脑体积较大，更适用于研究脑出血占位效应及血肿清除效果，如猪脑叶出血模型大量用于白质损伤、外科血肿清除技术、周围水肿的形成、病理生理和治疗学上的研究［1-3］；小型动物，如兔、大鼠、小鼠等，适用于研究组织形态和病理机制，其中以SD大鼠最为常用［4］；转基因或基因敲除鼠类则在研究细胞反应、细胞因子的效应、基因调控损伤机制等方面具有优越性［5-6］。24种实验性脑出血模型2.1胶原酶诱导法脑出血模型胶原酶是一种金属蛋白酶，可以分解细胞间基质及血管基底膜上的胶原蛋白，主要分布人体的脑血管周

3、围，存在于巨噬细胞和单核细胞内。病理情况下其可以从细胞中释放出来并被激活。Rosenberg等［7］于1990年建立的胶原酶诱导脑出血模型已被广泛采用。他们在立体定向仪下用微量泵向大鼠尾状核注入含0.01～1.00UⅦ型细菌胶原酶的生理盐水2μL，9min内完成的实验中发现注入0.5U胶原酶的出血模型脑出血点周围可见明显水肿，且大鼠几乎都可以存活，他们认为0.5U胶原酶诱导的脑出血模型适合于实验研究。将胶原酶注入小鼠尾状核后，小鼠即出现脑内血肿和对侧上下肢瘫痪，行走呈“划圈样”向同侧转圈，神经功能缺失症状在12　h最明显，光镜下术侧尾状核可见明显的出血区，其中的细胞几乎全部

4、坏死、周围神经元数目明显减少和基质水肿，形态学证实出血的高峰时间与肢体偏瘫症状的发展过程基本一致［8］。注射胶原酶4h后，血肿周围可见粒细胞浸润，第3天粒细胞水平达到峰值［9］，1～3d血肿边缘的神经缺失并伴有小胶质细胞和巨噬细胞的积聚和激活［10］，提示粒细胞的浸润、小胶质细胞和巨噬细胞的积聚和激活均可能引起或加重脑出血后继发的脑损害。张花先等［11］观察到注射Ⅶ型胶原酶的大鼠术后神经功能改变与人脑出血类似，可造成长期的运动缺陷，可用于研究脑出血后神经功能的恢复及评价药物疗效。胶原酶诱导脑出血模型的制作方法具有简单、快捷、重复性好，与人脑出血的病理、生化及病理生理有许多相

5、似性［8］，且出血区面积的大小可以控制的优点，但由于出血主要以弥漫性出血为主，不能形成真正意义上的血肿，且出血灶中常混有正常脑组织与临床自发性脑出血的发病不同，故该模型较适用于研究血肿及脑水肿在脑出血中的作用及评价脑出血后神经功能的恢复状况和药物的治疗效果。2.2自体血注入法脑出血模型脑内直接注入自体血是最经典的脑出血模型。自20世纪60年代开始，人们采用向脑内特定区域注入自体血的方法制作了狗、猴、兔和猫等大型脑缺血动物模型。立体定向技术问世以后，人们开始利用立体定向仪将自体血准确注入大鼠尾状核进行系列研究［12］。注血量的多少应根据动物脑体积的大小而定，Nath等［13］

6、采用的鼠脑注血量分别为25、50和100μL，分别相当于人脑20、40和80mL的出血量，这是造成临床上不同严重程度脑出血的出血量。由于自体血注入的造模方法操作简单，特别是应用立体定向仪后，动物的死亡率明显降低，且血肿位置更加精确，除有不可避免的穿刺针道损伤外无其他物质，故该法造出的脑出血模型的病理过程更接近人。在用该法制作的脑出血模型进行的研究发现，脑出血后的继发性脑损害和脑水肿形成的机制是多方面的。脑出血后24　h，基质金属蛋白酶2（MMP-2）开始表达，于第6天达到高峰，第10天仍维持高水平表达，而基质金属蛋白酶9（MMP-9）在脑出血后6h开始表达，24　h～3　d

7、最明显，此后活性逐渐降低，第15天时不再表达［14］。在MMP-9缺乏的大鼠脑出血模型中，神经凋亡、小神经胶质活化、中性粒细胞蓄积这些病理损害均有所减轻，而用凝血酶特异性抑制剂水蛭素拮抗凝血酶后也会减轻上述病理损害［15］。张颖等［16］也证实了脑出血急性期凝血酶可能破坏血肿周围组织微管相关蛋白-2（MAP-2）而致病。以上说明脑出血后MMP-9的活性增高可能与急性期脑水肿的形成有关，而MMP-2的迟发表达还可能同时参与了脑组织的修复过程。脑出血后尽早抑制凝血酶及MMP-9的神经毒性作用有助于改善脑出血的预后。Ma