动物实验操作基本方法

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1、动物实验操作基本方法Contents实验动物的捉持与给药1实验动物的编号和分组2实验动物的麻醉34实验动物的采血www.nordridesign.com大鼠豚鼠家兔犬一、捉持与给药小鼠www.nordridesign.com小鼠的捉持1、用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将小鼠提起，放在饲养合的面罩上。用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后及颈背部的皮肤，将小鼠提起。翻转左手掌，以左手掌心和中指夹小鼠背部的皮肤，使小鼠整个呈一条直线。用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后及颈背部的皮肤，将小鼠提起。www.nordri

2、design.com大鼠的捉持首先戴好防护手套用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行。以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤，完成抓取固定。www.nordridesign.com豚鼠的捉持先用左手轻轻扣、按住豚鼠背部。顺势抓紧其肩胛上方皮肤，拇指和食指环箍其颈部。用右手轻轻托住其臀部，即可将豚鼠抓取固定。www.nordridesign.com兔的捉持用右手抓住兔颈部的被毛和皮肤，轻轻把兔提起。用左手托住兔的臀部

3、家兔的固定方式有腹卧式和仰卧式两种www.nordridesign.com犬的捉持实验者先抚摩，逐步接近，勿使其惊恐或将其激怒。用粗棉绳兜住狗的下颌，并在上颌打结（勿太紧）。如犬不合作，则先用一根特制长柄狗头夹，从后面夹住犬颈，限制犬头部活动，再按上述方法捆住犬嘴。实验动物的捉拿.MPGwww.nordridesign.com灌胃给药——大小鼠1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液。左手捉持动物，使头部向上。右手持针，把灌胃针头的前端放进动物的口腔，顺着上腭部插入咽部，顺咽后壁轻轻往下推。用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射

4、器中的药液灌入动物的胃中。剂量：小鼠约0.1-0.5ml／10g体重。最大体积为1.0ml/只大鼠约1-2ml／100g体重，最大体积为1.0ml/只www.nordridesign.com灌胃给药——兔将兔放进固定架内，灌胃者用左手拇指和中指挤压兔两颊，将下颌挤开使兔被动张口。右手将开口器从一侧口角插入口腔并固定。胃管经开口器的孔插入，向前推进约15cm，可达胃内。在插管时应将胃管另一端泡在水中确认没有冒气泡，即可用注射器经胃管注入药液。豚鼠灌胃同家兔www.nordridesign.com皮下注射给药——大小鼠颈背部、腋下、

5、腹侧和后肢的皮下注射针头取一锐角角度刺入皮下。将针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下。再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下www.nordridesign.com静脉注射给药——大小鼠将大小鼠放在金属笼或小鼠固定器中，通过金属笼或大小鼠固定器的孔拉出鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴中下部，用75％酒精棉球反复擦拭尾部注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧，用食指从下面托起尾，右手持4号针头的注射器，使针头与静脉平行（小于30度角）大鼠亦可用舌下静脉注射www.nordridesign.com静脉注射给药——犬前肢皮下头静脉或后

6、肢小隐静脉注射。先将注射部位毛剪去。在静脉血管的近心端，用乳胶管扎紧肢体，使血管充盈，注射器针头向静脉血管的近心端方向穿刺。回抽注射器针栓，如有回血，则证明针尖在血管内，即可推注药液。www.nordridesign.com静脉注射给药——兔兔放在固定架内，酒精消毒并揉搓血管，使兔的耳缘静脉充盈。用左手食指和中指夹住兔的耳缘静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指和小指放在耳郭下作垫。右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针头从远心端插入血管回抽有血即可注射，拔针后用棉球止血豚鼠可用足背静脉注射实验动物的给药.MPGwww.nordri

7、design.com二、实验动物的采血5231尾尖采血眼眶静脉丛采血断头采血腹主动脉采血4心脏采血腹主动脉采血6静脉采血www.nordridesign.com方法：固定动物并露出鼠尾，将尾部在45℃的温水中浸泡数分钟（或以二甲苯棉球涂擦），使尾部血管扩张。将鼠尾擦干，用锐器切去尾尖0.3～0.5cm，让血液滴入盛器或直接以血红蛋白吸管吸取。对象：大、小鼠特点：小量采血，可以多次采血。1尾尖采血www.nordridesign.com方法：用左手捉鼠，拇指及中指抓住头颈部皮肤，食指按于眼后，使眼球轻度突出，眼底球后静脉丛淤血。右

8、手持取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管（临用前折断成1-1.5cm长的毛细管段，浸入1％肝素溶液中，干燥后用）刺入深度小鼠2～3mm，大鼠4～5mm。当感到有阻力时再稍后退，得到所需要的血量后，拔出。对象：大、小鼠等。特点：中等血量（0.2～0.3ml，小鼠