线粒体的分离

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1、实验三线粒体的分离、超活染色与观察一、实验目的1、学习差速离心法分离动、植物线粒体技术。2、观察动、植物活细胞内线粒体的形态、数量与分布。3、学习细胞器的超活染色技术。二、实验原理利用沉降系数不同的颗粒，在一定介质中沉降速度的差异，采取分级差速离心的方法，将线粒体从细胞悬液中逐级分离出来。离心用的悬浮介质通常用缓冲的蔗糖溶液，它比较接近细胞质的分散相，在一定程度上能保持细胞器的结构和酶的活性，在pH7.2的条件下，亚细胞组分不容易重新聚集，有利于分离。整个操作过程应注意使样品保持4℃，避免酶失活。活体染色是指对生活有机体的细胞或组织能着色但又无毒害的一种染色方法。它的目的是显示生活

2、细胞内的某些结构，而不影响细胞的生命活动和产生任何物理、化学变化以致引起细胞的死亡，可用来研究生活状态下的细胞形态、结构和生理、病理状态。体外活体染色又称超活染色，它是由活的动、植物分离出部分细胞或组织小块，以活体染料溶液浸染，染料被选择固定在活细胞的某种结构上而显色。詹纳斯绿B（JanusgreenB）和中性红（neutralred）两种碱性染料是活体染色剂中最重要的染料，对于线粒体的染色各有专一性。线粒体的鉴定用詹纳斯绿活染法。詹纳斯绿B（JanusgreenB）是对线粒体专一的活细胞染料，毒性很小，属于碱性染料，解离后带正电，由电性吸引堆积在线粒体膜上。线粒体的细胞色素氧化酶

3、使该染料保持在氧化状态呈现蓝绿色从而使线粒体显色，而胞质中的染料被还原成无色。三、实验材料与方法1、材料：人口腔上皮细胞、大鼠肝脏、玉米黄化幼苗（水稻、高粱等幼苗均可）、洋葱鳞茎内表皮细胞。2、主要试剂和仪器：Ringer溶液，10%、1/3000中性红溶液，1%、1/5000詹纳斯绿B溶液；分离介质：0.25mol/L蔗糖、50mmol/L的Tris-盐酸缓冲液（pH7.4），3mmol/LEDTA，0.75mg/ml牛血清白蛋白（BSA），50mmol/L的Tris-HCl缓冲液(pH7.4)，0.3mol/L甘露醇（pH7.4）、20%次氯酸钠（NaClO）溶液、1%詹纳斯绿

4、B染液，生理盐水，0.25mol/L蔗糖＋0.01mol/LTris-盐酸缓冲液(pH7.4)，0.34mol/L蔗糖＋0.01mol/LTris-盐酸缓冲液(pH7.4)，固定液，姬姆萨染液，1/15mol/L磷酸盐缓冲液（pH6.8）。温箱，冰箱，冷冻控温高速离心机（或普通高速离心机），高速离心机，显微镜，恒温水浴锅，解剖盘，玻璃匀浆器，剪刀、镊子，双面刀片，载玻片，凹面载玻片，盖玻片，漏斗，小烧杯，表面皿，吸管，牙签，吸水纸，纱布，瓷研钵，尼龙织物。四、实验方法（一）大鼠肝线粒体的分离1、制备大鼠肝细胞匀浆。实验前大鼠空腹12h，击头处死，剖腹取肝，迅速用生理盐水洗净血水，用

5、滤纸吸干。称取肝组织2g，剪碎，用预冷到0－4℃的0.25mol/L缓冲蔗糖溶液洗涤数次。然后在0－4℃4/4条件下，按每克肝加9ml冷的0.25mol/L缓冲蔗糖溶液将肝组织匀浆化，蔗糖溶液应分数次添加，匀浆用双层尼龙织物过滤备用。注意尽可能先充分剪碎肝组织，缩短匀浆时间，整个分离过程不宜过长，以保持组分生理活性。2、差速离心。先将3ml0.34mol/L缓冲蔗糖溶液放入离心管，然后沿管壁小心地加入3ml肝匀浆使其覆盖于上层。用冷冻控温高速离心机按图7-1顺序进行差速离心。3、分离物鉴定。(1)细胞核：取细胞核沉淀一滴涂片，入甲醇-冰醋酸液固定15min，充分吹干，滴姬姆萨染液（

6、原液10－20倍稀释）染色10min。自来水冲洗，吹干，镜检。结果：细胞核紫红色，上面附着的少量胞质为浅蓝色碎片。(2)线粒体：取线粒体沉淀涂片（注意勿太浓密），不待干即滴加1%詹纳斯绿B染液染20min，覆上盖玻片，镜检。线粒体蓝绿色，呈小棒状或哑铃状。分离细胞核鼠肝1克匀浆↓　匀浆过滤↓滤液（制涂片一张①）↓将滤液3mL覆盖于相同容积的0.34mol/L蔗糖溶液上↓700×g离心10min↓↓　                ↓沉淀（细胞核及碎片）    上清液1(制一张涂片②,自然干燥)↓                              洗涤（0.25mol/L预冷

7、蔗糖溶                              液3mL洗涤两次）每次1000×g                                  离心15min                                                             ↓                                         　　　　                           ↓