重组质粒的构建..pdf

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1、重组质粒的构建实验流程—质粒构建基因提取—1、2、3基因提取—1、2、3PCR反应扩增目的基因—4、3PCR反应扩增目的基因—4、3DNA片段回收—5、3DNA片段回收—5、3重组质粒检测：（1）PCR(2)双酶切—8、5重组质粒检测：（1）PCR(2)双酶切—8、5测序测序重组质粒提取—2、3重组质粒提取—2、3菌种保藏—7菌种保藏—7目的片段与载体连接及转化—6目的片段与载体连接及转化—6实验操作1、LB培养基配置LB培养基用于一般细菌培养，特别用于分子生物学试验中大肠杆菌的保存和培养。其中蛋白胨、酵母膏粉提供氮源、维生素和生长因子，NaCl维持均衡的

2、渗透压，葡萄糖提供碳源，琼脂是培养基的凝固剂。【试剂】胰蛋白胨（Tryptone）、酵母提取物（YeastExtract）、NaCl、琼脂（Agar）【实验步骤】1、LB固体培养基配方（配置100ml培养基）胰蛋白胨（Tryptone）1g酵母提取物（YeastExtract）0.5gNaCl1g琼脂（Agar）1.5g单蒸水100ml蛋白胨很易吸潮，在称取时动作要迅速，另外，称药品时严防药品混杂，一把药匙用于一种药品、或在称取一种药品后，洗净、擦干，再称取另一种药品，瓶盖也不要盖错。2、液体培养基除不加琼脂外，其余同固体培养基一样。3、包扎用报纸封住瓶口

3、，再用皮筋捆扎好，用记号笔注明培养基名称、组别、日期。4、灭菌将上述培养基以1.05kg/cm2、121.3℃、20min高压蒸汽灭菌。如因特殊情况不能及时灭菌，则应放入4℃冰箱内暂存。灭菌后，将锥形瓶放入烘箱烘干，烘干后，4℃保存。5、LB固体培养基倒板配置：如上述配方配置100ml的LB固体培养基。抗生素的加入：将凝固的培养基放入微波炉内加热至完全融化，然后置于55℃的水浴中，待培养基温度降至55℃时（手可触摸）加入抗生素，以免温度过高导致抗生素失效，并充分摇匀。倒板：一般10ml倒1个板子，培养基倒入培养皿后，打开盖子，在紫外下照10—15min。保

4、存:将培养皿倒置放于4℃保存，一个月内使用。二、质粒的提取（protocol）1、大肠杆菌的培养：从平板培养基上挑选单菌落接种至5ml的含有抗生素的LB液体培养基中，37℃过夜培养。【注：培养液不宜过量，过量时会因菌量太大而溶菌不充分，纯化时会影响质粒的纯度。】2、5ml菌液倒入5ml离心管中，10,000xg，1min离心，弃上清。（实验室用的离心机转速达不到，故将其调到最大转速12,000rmp，离心2min）【注：rmp（转速）与rcf=×g（相对离心力）,RPM只是一个习惯用法，g才是衡量转速的通用标准：不同的转子，RPM是不能通用的，g值则是通用

5、的，也就是说，只要你在不同的离心机上用相同的g，他们的离心效果原则上是一样。】3、加入250ulSolutionⅠ（使用前加入RNaseA1，冰箱4℃冷藏），充分悬浮细菌沉淀。【注：注意不要残留细小菌块，可以使用振荡器Vortex等剧烈震荡使菌体充分悬浮。】4、加入250ulSolutionⅡ【裂解细胞】（提前放入37℃孵育箱内预热）轻轻地上下翻转混合5—6次，使菌体充分裂解，形成透明溶液。【注：此步骤不宜超过5min】5、加入350ulSolutionⅢ【变性蛋白】，轻轻上下翻转混合5—6次，直至形成紧实凝集块。6、将上面液体倒入1.5ml的EP管中，1

6、3,000xg，10min离心。7、将上述离心得到的液体倒入柱内，10,000xg，1min离心，弃液体。8、加入500ulbufferHB，10,000xg，1min离心，弃液体。9、加入700ulDNAwashbuffer（提前加入指定体积的100%乙醇），10,000xg，1min离心，弃液体。（重复一次）10、空离，13,000xg，2min离心。11、将离心柱放入1.5mlEP管内，置于孵育箱内3min烘干。12、加入60ulddH2O（提前在60℃水浴箱内预热），60℃摇2min。13、13,000xg，1min离心，得液体。14、测浓度。15

7、、DNA经1.5%琼脂糖凝胶电泳进行检测。【注：提好的质粒需标明时间、名称等，-20℃保存。】三、琼脂糖凝胶电泳【试剂】琼脂糖（Agarose），1xTAE电泳缓冲液，染料（SyBRSafeDNAGelStain）,DL2000DNAMarker,10xLoadingBuffer【实验步骤】1、配置50ml（大样）、25ml（小样），1.5%的琼脂糖凝胶。称取50x1.5%=0.75g琼脂糖粉末于锥形瓶中，加入50ml1xTAE缓冲液，染料2ul（边加染料边倒TAE缓冲液于装有琼脂糖的锥形瓶中），封口。2、放在微波炉中加热，沸腾2次，直到看不到油滴，形成均

8、一的溶液。（一般中低档，5min）3、插入梳子，倒入制胶槽中。4、