实时荧光定量PCR具体实验步骤

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1、..-实时荧光定量PCR操作步骤以下实验步骤仅供参考：1样品RNA的抽提①取冻存已裂解的细胞，室温放置5分钟使其完全溶解。②两相别离每1ml的TRIZOL试剂裂解的样品中参加0.2ml的氯仿，盖紧管盖。手动剧烈振荡管体15秒后，15到30℃孵育2到3分钟。4℃下12000rpm离心精品文档，你值得期待15分钟。离心后混合液体将分为下层的红色酚氯仿相，中间层以及无色水相上层。RNA全部被分配于水相中。水相上层的体积大约是匀浆时参加的TRIZOL试剂的60%。③RNA沉淀将水相上层转移到一干净无RNA酶的离心管中。加等体积异丙醇混合以沉淀其中的RNA，混匀后15到30℃孵育10分钟

2、后，于4℃下12000rpm离心10分钟。此时离心前不可见的RNA沉淀将在管底部和侧壁上形成胶状沉淀块。④RNA清洗移去上清液，每1mlTRIZOL试剂裂解的样品中参加至少1ml的75%乙醇〔75%乙醇用DEPCH2O配制〕，清洗RNA沉淀。混匀后，4℃下7000rpm离心5分钟。⑤RNA枯燥小心吸去大局部乙醇溶液，使RNA沉淀在室温空气中枯燥5-10分钟。⑥溶解RNA沉淀溶解RNA时，先参加无RNA酶的水40μ-.word.zl-..-l用枪反复吹打几次，使其完全溶解，获得的RNA溶液保存于-80℃待用。2RNA质量检测1〕紫外吸收法测定先用稀释用的TE溶液将分光光度计调零。

3、然后取少量RNA溶液用TE稀释〔1:100〕后，读取其在分光光度计260nm和280nm处的吸收值，测定RNA溶液浓度和纯度。①浓度测定A260下读值为1表示40µgRNA/ml。样品RNA浓度(µg/ml)计算公式为：A260×稀释倍数×40µg/ml。具体计算如下：RNA溶于40µlDEPC水中，取5ul，1:100稀释至495µl的TE中，测得A260=0.21RNA浓度=0.21×100×40µg/ml=840µg/ml或0.84µg/µl取5ul用来测量以后，剩余样品RNA为35µl，剩余RNA总量为：35µl×0.84µg/µl=29.4µg②纯度检测RNA溶液的A

4、260/A280的比值即为RNA纯度，比值范围1.8到2.1。2〕变性琼脂糖凝胶电泳测定①制胶1g琼脂糖溶于72ml水中，冷却至60℃，10ml的10×MOPS电泳缓冲液和18ml的37%甲醛溶液(12.3M)。10×MOPS电泳缓冲液浓度  成分-.word.zl-..-0.4M  MOPS，pH7.00.1M  乙酸钠0.01M  EDTA灌制凝胶板，预留加样孔至少可以参加25µl溶液。胶凝后取下梳子，将凝胶板放入电泳槽内，加足量的1×MOPS电泳缓冲液至覆盖胶面几个毫米。②准备RNA样品取3µgRNA，加3倍体积的甲醛上样染液，加EB于甲醛上样染液中至终浓度为10µg/m

5、l。加热至70℃孵育15分钟使样品变性。③电泳上样前凝胶须预电泳5min，随后将样品参加上样孔。5–6V/cm电压下2h，电泳至溴酚兰指示剂进胶至少2–3cm。④紫外透射光下观察并拍照28S和18S核糖体RNA的带非常亮而浓〔其大小决定于用于抽提RNA的物种类型〕，上面一条带的密度大约是下面一条带的2倍。还有可能观察到一个更小稍微扩散的带，它由低分子量的RNA〔tRNA和5S核糖体RNA〕组成。在18S和28S核糖体带之间可以看到一片弥散的EB染色物质，可能是由mRNA和其它异型RNA组成。RNA制备过程中如果出现DNA污染，将会在28S核糖体RNA带的上面出现，即更高分子量的

6、弥散迁移物质或者带，RNA的降解表现为核糖体RNA带的弥散。用数码照相机拍下电泳结果。3样品cDNA合成①反响体系序号  反响物  剂量1  逆转录buffer  2μ-.word.zl-..-l2  上游引物  0.2μl3  下游引物  0.2μl4  dNTP  0.1μl5  逆转录酶MMLV  0.5μl6  DEPC水  5μl7  RNA模版  2μl8  总体积  10μl轻弹管底将溶液混合，6000rpm短暂离心。②混合液在参加逆转录酶MMLV之前先70℃干浴3分钟，取出后立即冰水浴至管内外温度一致，然后加逆转录酶0.5μl，37℃水浴60分钟。③取出后立即9

7、5℃干浴3分钟，得到逆转录终溶液即为cDNA溶液，保存于-80℃待用。4梯度稀释的标准品及待测样品的管家基因〔β-actin〕实时定量PCR①β-actin阳性模板的标准梯度制备阳性模板的浓度为1011，反响前取3μl按10倍稀释〔加水27μl并充分混匀〕为1010，依次稀释至109、108、107、106、105、104，以备用。②反响体系如下：标准品反响体系序号  反响物  剂量1  SYBRGreen1染料  10μl2  阳性模板上游引物F  0.5μ-.word.zl-..-l3