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时间:2018-11-25
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1、过氧化氢酶和黏附素保守区二价疫苗治疗小鼠幽门螺杆菌感染 白杨,陈丽,王继德,施理,唱韶红,张兆山,周殿元,张亚历【关键词】幽门螺杆菌ImmunzitiontreatmentofHelicobacterpyloriinfectionalmodelstudy 【Abstract】AIM:ToinvestigatetheeffectsoftentofH.pyloriinfectioninanH.pyloriinfectedmousemodel.METHODS:C57BL/6miceinfectediceofeachgroupmunizedrespectivelybyca
2、talaseandadhesinconservation(separately,100μg)plusCT(2μg),catalase(100μg)plusCT(2μg),adhesinconservation(100μg)plusCT(2μg),catalase(100μg),adhesinconservation(100μg)andCT(2μg),PBSorallyonceaent,allanimalsachbiopsiesiquantitativebacterialcultureassay.RESULTS:Theeradicationrateoftmunothera
3、peuticeffectsthanthesinglevalencevaccine.MoreH.pylorivaccineresearchshouldbedirectedtothemultivalencevaccine. 【KeyL/LO2,100mL/LCO2,850mL/LN2)中培养72h,湿度保持95%以上.H.pylori的菌落呈园形,凸起、光滑、灰白色、半透明,直径0.2~0.8mm左右.液体培养:取固体培养基上生长的H.pylori菌落至布氏肉汤中,抽滤瓶抽气换气2次以满足微需氧条件,恒温振荡培养120r/min培养48~72h.H.pylori的鉴定包括
4、菌落形态、涂片观察(包括革兰染色观察细菌形态、暗视野观察细菌活力)、尿素酶实验(将自制尿素酶试剂加入含鼠胃组织的96孔板各孔中,37℃作用5min,当有H.pylori感染时试剂由黄色变为红色).灌胃用H.pylori的要求:革兰染色阴性,形态呈S形、螺旋形、杆状,暗视野下有活力,不含杂菌,密度约为1×1012/L. H.pylori感染小鼠模型的建立:采用文献〔4〕方法驯化H.pyloriss1株,分离可在小鼠胃内稳定定植的H.pyloriss1株,固体培养2~3d,菌落经鉴定后用布氏肉汤洗下,调整细菌浓度至1×1012CFU/L,每只小鼠灌胃0.5mL(约1×10
5、12/L).所有动物灌胃前禁食12h,禁水4h.灌胃后禁食2h.连续5次,1wk完成.采用胃管法以确保H.pylori灌入胃内.末次灌胃后4wk随机处死5只小鼠,剖腹取胃,沿纵轴将胃切为3部分,一份行快速尿素酶试验,一份置40g/L甲醛固定供组织学检查,一份细菌培养,检查是否感染H.pylori. 1.2方法 将已鉴定感染H.pylori的小鼠随机分成7组:①二价疫苗组:经口喂饲过氧化氢酶和黏附素保守区各100μg加CT2μg;②单价过氧化氢酶疫苗组:经口喂饲过氧化氢酶100μg加CT2μg;③单价黏附素保守区疫苗组:经口喂饲黏附素保守区100μg加CT2μg;④单
6、纯过氧化氢酶组:经口喂饲过氧化氢酶100μg;⑤单纯黏附素保守区组:经口喂饲黏附素保守区100μg/次;⑥单纯CT组:经口喂饲CT2μg;⑦PBS组:经口喂饲PBS200μL/次.前3组为治疗组,每组28只小鼠;后4组为对照组,每组10只小鼠.免疫治疗前小鼠禁食12h,禁水4h.每只小鼠先用30g/L碳酸氢钠100μL灌胃以中和胃酸,10min后分别按上述分组灌胃,30min后再给小鼠提供水和食物.隔周免疫,加强免疫3次,剂量同前.末次免疫后4in以上.在超净工作台内迅速取出胃用于免疫治疗后幽门螺杆菌根除的鉴定,方法采用半定量细菌培养法〔5〕,胃组织称质量后,制成匀浆,
7、用布氏肉汤倍比稀释后,取200μL涂于Hp固体培养基,菌落计数后,计算单位胃组织的定植细菌密度. 统计学处理:采用SPSS10.0软件,计数资料行χ2检验,计量资料的比较采用方差分析,P0.05为有显著性差异. 2结果 经尿素酶实验、组织病理学检查(Fig1)及细菌培养证实5只随机处死的小鼠全部感染H.pylori.细菌培养发现胃组织H.pylori的定植密度为1×105~1×106/g. 胃组织培养H.pylori为阴性者定为根除,疫苗治疗组根除率显著高于其他4组(P0.05,Tab1).未根除H.pylori的小鼠,我们进行了
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