荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证

荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证

ID:34845410

大小:7.55 MB

页数:77页

时间:2019-03-12

上传者:U-24835
荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证_第1页
荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证_第2页
荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证_第3页
荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证_第4页
荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证_第5页
资源描述:

《荷花nnγgcs基因克隆、表达及功能验证》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在学术论文-天天文库

\'.‘.?■,分类号阻.?学^2012104115為请農違义餐硕壬学位论文荷花M2rGCS基因克隆、表达及功能验证张阿慧.I*v;>.春-'■■■一^;.'‘?r?:‘-;//.;,'Y、一:‘—.’^-■.■'.二W^热,1.:-‘式;f指导教师刘兆磊副教授'专业名称园林植物与观赏园艺/爹'古研究方向观赏植物分子生物学答辩日期二〇—五年五月 THECLOINQEXPRESSIONANDFUNCTIONALIDENTIFICATIONOFNnGCSFROMNELUMBOyNUCIFERAByZhanAhuigSupervisedbyAssociateProf.LiuZhaoleiTheDissertationSubmittedtoNaninAriculturalUniversitjggy虹PartialFu脚Im畑tof化eRequirementsForMasterDereeg化AricultureSciencesgComletedinMa2015py, 原创性声明本人郑重声明:所呈交的学位论文,是本人在导师的指导下,独立进巧研巧工作所取得的成果。除文中已经注明引用的内容外,本论文不包含任何其他个人或集体己经发表或撰写过的作品成果。对本文的研究做出重要贡献的个人和集体,均已在文中J。^^l明确方式标明本人完全意识到本声明的法律结果由本人承担。学位论文作者(需亲笔)签名:(f气W5^^月到f年1日学位论文版权使用授权书、本学位论文作者完全了解学校有关保留使用学位论文的规定,同意学校保留并向国家有关部口或机构送交论文的复印件和电子版,允许论文被査阅和借阅。本人授权南京农业大学可W将本学位论文的全部或部分内容编入有关数据库进行检索,可采用影印、缩印或扫描等复制手段保存和汇编学位论文。"保密□。。,在年解密后适用本授权书本学位论文属于不保密扫上方框""(请在内打V)1学位论文作者(需亲笔)签名:部巧義。/支年^月日7/导师(需亲笔)签名:乙月曰ll义么^/I 目录目录摘要1ABSTRACTm缩咯词V弓I言vn第一章文11重金属及其危害12水体重金属污染现状23重金属修复方法23.1物理化学修复方法23.2农业生态修复技术33.3生物修g技术44植物的重金属抗性机制.64.1莖合作S64.2区室化作用74.3细胞修复75基因工程在植物修复中应用76植物修复应用前景9第二章荷花WiyGCS基因克隆及序列分析111材料骑法121.1植物材料121.2试剂与仪器121.2.1试剂121.2.2仪器设备121.2.3菌株境体121.2.4引物序列131.33实验方法11.3.1基因简并引物设计131.3.2RNA14提取-nd1.3.3IststracDNA及检测14合成1.3.4PCR15扩増 荷花WwyGCy基因克隆、表达巧功能验证1.3.5片段纯化与连接转化151.3.6重组子筛选及测序15’-1.3.73RACEPCR16扩増’1.3.85RACE161.3.9cDNA全长序列的获得171.3.10序列比对与进化樹构建182结果与分析182.1RNA提取质量与反转录效果检测182.2目的中间片段序列測定19-2.3RACEPCR结果巧2.4荷花JVhyGCS基因全长序列的获得192.5氨基酸序列同源性比对202.6荷花iVwGCS基因氨基酸序列系统进化树构建223觀23第兰章iVnyGCS基因表达写亚细胞定位…25一杞CS第节領胁迫后W巧在荷花中表达分析251機与方法251.1植物材料251.2试剂城器261:.2.1试剂261.2.2实验仪器261.3实验方^&261.3.1荷花RNA提取及cDNA合成说12Real-.3.TimePCR分析261.3.3荷花各器官領含量的测定:272结果与分析272.1荷花基因组织定量分祈272.2領胁迫下荷花叶巧根部MiGCS表达响应28y2.3锅胁迫下荷花组织重金属积累量283讨论30第二节基因亚细胞定位311材稱歸法.....311.1实验材料31 目录12试剂与仪器321.2.1试剂及菌株321.2.2仪器设备321..23菌株与载体321.3实验方法321.3.1正义表达载体构建321.3.2洋葱表皮细胞瞬时表法巧1.3.3显微镜观察巧2结果与分析巧3册34巧四章巧花AT巧供进基因的功能分析.351材料方法351.1材料351.2实验方法361.2.1正义表达载体构建361.2.2拟南芥的遗传转化3613.2.3拟南芥巧种61.2.4拟南芥转化361.2.5拟南芥种子收获?古;371.3筛选阳性拟南芥371.3.1转基因植株鉴定371.3.2转基因巧南芥表达分析381/.4荷花A>iGCS基因在拟南芥中功能验证38y1.4.1根长的比较381.4.2锅胁迫下种子发芽率%14.338.領胁迫下拟南芥植株生长量影咱1.4.4铺胁迫下生理指标变A382结果与分析392.1转基因拟南芥鉴定392.2钢胁迫下根长比较402.3巧胁迫下发芽率比较412.4巧胁迫下拟南芥植株生长量变化412.5巧胁迫下植株内生理指标变化41iii TGCy基因克隆、表达及功能验证荷花A/iy;3冊42全文结论45创巧之处4749参考文献巧录*....巧鱗论文。致巧65iv 摘要荷花A/wGCS基因克隆、表达及功能验证y摘要荷花属睡莲科莲属挺水植物。、瓣型丰富且颜色艳丽花大,大多分布于淡水水域,深受大么欢迎的水生植物之一抗性强,观赏价值和经济价值都较高。本研究从荷,是花中克隆得到荷花谷氨醜半化氨酸合成酶基因(iw巧併y),分析其时空表达模式,通过转化拟南界进而研究荷花iVnyGCS基因功能,从分子水平探讨荷花重金属抗牲机理,为利用基因工程技术提高荷花抗逆能力提供理论依据。’1-.利用RACEPCR技术从荷化台城拂翠的叶片中克隆谷氨耽半脱氨酸合成酶基因M/GCS801ORF)1569。推导的氨基酸序列y,该基因全长1bp,开放阅读框(咕具有典型的GCS2基因家族结构域。系统进化分析表明荷花丫GCS属于双子叶植物类,与龙眼,百脉根亲缘关系较近。-2(RealTimePCR)技术.利用焚光定量,分析MiyGCS在苟花不同器官及锅胁迫下的表达情况。结果表明M77GCS在荷花各器官均有表达,属组成型基因。各器官表达量从高到低依次为:嫩叶最高须。,其次叶柄,成熟叶,根,剑叶,茎最低锅胁迫—,GCS在叶片和根部的表达都有不同程度的响应。不同來度锅处理后GCS下Wwy,TVwy在叶片表达变化越势相同。,均为先下降后上升,且高浓度锅处理下基因表达水平更高然而在根部,不同浓度锅处理后,MryGCS表达变化并不相同,低浓度锅响应更快,高浓度锅反而响应迟鈍。2+3.在200^1^1和400^1^忙(1胁迫下,测定荷花各器官锅积累量,结果表明荷花的根。1须和叶片是主要的锅积累器官叶片中锅积累量高达000l/。在根茎中积累量^gg干重干重。最少,仅80i/|gg4.构建了荷花TVnGCS正义表达载体,并利用基因枪轰击细胞技术进行亚y洋葱表皮细胞定位实验,结果表明iVwGCS基因定位于细胞质。通过农杆菌侵染拟南界花序法拖Vn获得3株转基因株系-GGS基因导入拟南界,经潮霉素抗性筛选及PCR检测(T11y,,---T12。目,T13)巧光定量结果表明T13中的基因表达量最高。在含锅培养基上播种野生型和转基因拟南齐T3代种子,比较其发芽率,结果表明转基因株系发芽率高于野2+生型。根系生长也化野生型化盛iMCd,生长量大于野生型。用100处理后,野生型[拟南齐膜脂过氣化程度大于转基因植株转基因植株。,抗氧化酶活性也高于关键词:荷花腳饼巧基因克隆;表达特点;功能分析I ABSTRACTTHECLGINGEXPRESSIONANDFUNCTIONAL,roENTIFICATIONOFNnyGCSFROMNELUMBONUCIFERAABSTRACTNelumbonuciferaisanemergentaquaticplantbelongingtonelumbooftheAe幻ceae.Anditisoneofttt巧phetoenfamoustraditionalChineseflowers.Isflowersphavevarioustypesandcolores,beworthinghighlyornamentalandeconomicvalue.Mostofemvedneshwaerandearnnmoreandmoreanonnourscthliifrtigtteti.Itudyweloneda,heavene?ymetalrelatedgJV/TGCSfromAW画巧wc/幻analzeditstemoralandy诉,ypspatialexpressionpatternandstudieditsfunctionbytransformingitintoArabidopsisthaliana*Kprovidednotonlygeneticvariationmechanismbutalso过也eoreticalbasisand■-technicalsupport化imroveantio口utionabilityin72WC於/幻.pp1.WeclonedtheTV/TGCSfromtheleavesof""cferabthemethodofyi/y-PCRTRACE.helengthofTVwy併近was1801bpwhichhasanoenreadinframeofK69,pgbp.化alsohad过typicalconservedstructuraldomainofGCS2Superfamily.AccordingtothehloeneticanalsisresultsNnGCShadarelativelcloseevolutionarrelationshipygy,yyypD.withzVwocaw/〇内2"Lour.andCwcw/m*ys幻"vwinn..Thebelongedtodicot巧护()(L)ysubclass-2zexressionwasanalzedbRealTimePC民indiferentoransand.TheMyGGSpyygundercadmiumstre巧innwcz於r幻.TheresultsindicatedthatwasconstitutivelyexpressinanditexpressedinallorgansofNelumbonucifera.ThegexpressionlevelofNnyGCSindifferentorganswasnotthesame.ThehighestwasyoungleavesandthenetiolematureleavesrootstenderleavesandRhizome.NnGCSshowed,p,,,ydiJBferentexressionatterninleavesandrootsundercadmimnstress.Howeverithadthep,psamechangetrendwithdiferentcadmiumconcentrationinleaves.Thetrendsfirstlyseriandthenwentdownthenitshoweddifferenttrendinrootswithdififerentcadmium,,concentration.阳 荷花W/iGCS基因克隆、表达及功能验证y3.Wedetermined化ecadmiumaccumulationconcentrationinalloransofNelumbognuciferaundercadmiumstresswiththeconcentrationof200Mand400M.Leavesandpprootswerethemaorcadmiumaccumulationorans.Theconcentrationinleaveswasasjghighas1000)xg/gfreshweight,andonly80)xg/gfreshweightintheRhizome.4eroloouxr-,WeconstructedtheNnyGCShetgsepessionvector.Subcellular*localization田罕功虹班化indicatediV巧GCSwaslocatedinthecytolasDLTiansformin化pg化*>4/姑诚巧地化放anagainedtransgenicplantswithcadmiumresistance.Transgenicplantsainedbthefloraldiethod.Threelantsworeselectedasbeinearnersofthegypmpgnamed-transeneonthebasisofT1hinlathhemTl1gygromycseectionndPCRmeod,tas,Tl-2T--WTl3.TheNnGCSexressioninTl3wasthehihestTranseniclantsand,ypggpshoweddifferenterminationrateieldandcadmiumresistanceA^chwerehihering,y,,gtransgenicplantsontheculturalmediumwithcadmium.UnderlOOpMcadmiumstress,WThadhigherMDAconcentrationandSODconcentration.KEYWORDS:Nelumbonucifera;NnyGCS;Genecloning;E^qiressionanalysis;Functionalid班地cationIV 缩巧词缩略词英文缩写英文名称中文名称AmpAmpidllin氨苯青霉素BLASTBasiclocalalignmentsearchtool序列联巧搜索工具bpbaseair巧基对pcDNAComplementaryDNA互补脱氧核搪核巧dNTPDeoxyribonucleosidetriphosphate脱氧核巧核巧王巧酸 ̄nGCSYGlutamylcysteineSthetase谷巧骄半疏安谋合成酶yGFPgreenfluorescentprotein绿色巧光爱白GSHglutaihione谷脱甘化-■■----?)IPTGIsorollthioDalactoside异丙基硫代书!半乳糖巧ppy3gKanKanamycin卡那霉素苦LBLuria-bertanimediumLB培养基MTMetallothionein金II谎蛋白NCBINationalCenterforBiotechnologyInformation美国国家生物信息中也ORFOpenreadingframe开放阅读框PCphytocheladns植物络合素PCRPolymerasechainreaction聚合酪链式反应RACERapidamplificationofcDNAendscDNA末端快速扩増RifRi&npicin利福平RT-PCRreversettranscripionolmerasechainreaction反转录巧合SI鞋式反应pyTaqTaqplusDNApolymerase耐热性聚合庚UTR.Untranslatingreion非洒译区g-----"--b-4l-----50XGal5romochoro3indolylpDgalactoside滨斗IK3巧I巧护硫代半孔裤巧HygHygromycin潮霉素V 引言引言荷花(Afe山成/C矿em),又称中国莲,属睡莲科莲属挺水植物。花型昨较硕大,瓣型多样。,花色艳丽,深受人们的喜爱原产我国,主要分布在淡水区域,花期主要,抗性强集中在少花的夏季,耐高温,是重要的水生观赏植物。水体重金属污染情况日益严唉一,水体汚染的修复问题亟待解决。研究表明水生植物对重金属有定的忍受能力(,1981)。,尤其是挺水植物和浮水植物等根系较发达的水生植物蘭疑慧等荷花具有净化水质的作用(暴雅萍等,2006),且具有积累重金属的潜力(孔德政等,20W)。且荷花属多年生植物,生长量大,自行巧殖能力强,对水质和止壌质量要求不严格。,可作为植物修复工程目标桓物,具有较大的研究价值近年来随着分子生物学技术的广泛运用,基因工程被越来越广泛地应用到改良种质性状方面。,同时为新品种的选育提供了新的思路关于重金属抗性基因研究在印度。芥菜,拟南芥,番茄,杨树等植物中已有研究,渉及众多基因种类本研究克隆了与荷花抗重金属相关的谷氨瞄半腕氨酸合成酶基因(yGCS),分折在荷花内的表达特点及对重金属領的响应表达。不仅从,并且通过构建载体转入拟南芥表达进而研究功能分子水平上探讨荷花对重金属抗性积累,也为荷花抗性能力的提髙提供技术支持,从。而丰富荷花种质资源,使荷花在水体绿化和水质净化方面发挥更大作用vn 第一章文章综述第一章文章综述1重金属及其危害一3,重金属本身并没有明确的定义,大多情况下密度是决定性因素般大于5g/cm的金属被认定为重金属李德明等,2009。重金属在不同领域的应用历史已有数千年,()重金属会对人体和动桂物的生长发育产生非常严重的危害。(重金属进入环境的途径有很多,包括空气燃烧,提取等),地表径流(存储和释放),±壌(进入地下水和作物)等。人体会通过空气、水、食物和皮肤接触到重金属,重金属进入人体后,蛋白质,维生素,激素等物质与其结合形成重金属络合物,使机体功能发生变化甚至丧失而引起病变。微生物可使有些重金属发生甲基化作用,例如甲基束等,易挥发,可通过呼吸道进入人体。口腔与皮肤也是重金属进入人体的重要通道-SH)有较强亲和力,重金属进入人体后与某些酶的活性中也琉基(,能取(3)。代琉基上的氨,从而使酶丧失生物活性,这便是重金属的致害机理时圣刚,201例如长期接触一定剂量的锡会对肾脏造成损害,还会导致骨质疏松过多的铅进入人;体会影响肠胃吸收,严重的甚至会出现脑血栓等后果(于晓莉和刘强,2011)。摄入过量的神会増加患癌几率(Gnmdetal.,2005)。近年来我国重金属污染事件时有发生,范围广,,危害大。如2005年广东北江韶关段锡严重超标事件2009年湖南浏阳锦污染事故(李战和李坤,2010),2011年云南络污染事件(郭楠和田义文,2013),2012年广西锡污染事件等(罗秋香,2014)等都对人们的生命安全构成很大威胁,重金属污染已经引起社会各界离度重视。重金属对植物的伤害轻则影响植物体内代谢过程,重则叶片摧绿甚至死t。植物受重金属毒害的一般表现为生长受到抑制,生长发育停止,出现生长缓慢,植株弱小,根系生长受到抑制甚至停止,叶片缺绿甚至发黄变褐等症状。重金属对植物的影响出现在各个生理过程,例如光合作用、呼吸作用、酶活性、细胞结构等(李秀珍和李彬,2008刘万玲,2006)。重金属对植物的伤害在细胞学方面则表现为诱导细胞涧亡。;重金属通过与DNA结合形成复合物致使DNA损化这一步在细跑调亡进程中极为关键(刘欣梅等,2004)。此外有些重金属能够改变膜结构通透性,影响质体活性,例如一es1999)。重金属络能够改变线粒体膜通透性从而影响线粒体活性(Flor,些控制细胞调亡的基因和蛋白也会在重金属的胁迫下特异表达,从而表现为外在的植物损伤。1 荷花MrGCS基因克隆、表达及功能验证y2水体重金属污染现状重金属在生产生活中发挥极其重要作用,人类利用重金属的历史可追溯到几千年前,在这过程中由于各种人为原因导致重金属在人们生活环境中积累得越来越多,已经远远超出环境自身可W降解的范围,不仅会破坏环境,还会威胁到人类及动植物的健康乃至生命。尤其随着采矿、冶炼、制革等行业的发展,W及人为不合理填埋、,使得各种重金属污染物进入地下水系(SekhaandChar堆放、污染物事故性排放y,2003)。重金属污染物在水体较稳定,不能被降解,当重金属在水体积累较多,达到,水体、水生动植物等水体生态系统将会遭受严重破坏对生命体致害的浓度范围,还2006有可能在水产品中累积,通过食物链直接或间接地威胁到人类健康(孟多等)。,我国水体重金属污染问题十分严重80.1%的江河湖库底质被污染。2004年对太湖底,泥进行检测,发现其中铜、铅、領含量均处于轻度污染水平。黄浦江沉积物中Cd超、Pb超1倍、Hg含量明显増加州河中Pb全部超标、Cd超标75%、H超标准值2倍;苏g标62.5%(成新,2002)。水体重金属污染已成为全球性的环境污染问题,危及人类身体健康甚至生命。3重金属修复方法±壤和水系的重金属污染问题越来越严重,采取有效的措施进行修复很有必要,近年来国内外在这方面的研究已经取得显著成效。修复措施主要可W归结为H类:物理/化学修复、生物修复W及农业生态修复。3.1物理化学修复方法换±、去表±,深耕翻±法比较适合小面积重金属污染的物理修复。换±即将己经遭受污染的±壤部分或全部换成非污染±壤,换止的数量及厚度应尽可能多,这样才能保证重金属被完全移除。去表止则是去除表层被污染的±,对下层±壤进行活化,使重金属扩散范围加大耕作。深耕翻±通过翻动上下±壤层,从而降低单位体积重金属含量,使重金属浓度达到对植物不产生危害的程度。但是这类方法需耗费较大人、力物力和财力,成本较高,且不能从根本上清除重金属(黄益宗等3)。,201淋洗剂的使用能有效去除±壤重金属,这种方法称之为±壤淋洗法。影响淋洗效果的因素包括:淋洗剂种类,淋洗浓度,王壤性质,污染程度等。要取得较好的淋洗2 第一章文章综述效果,需要综合考虑各方面因素。研究发现EDTA可W有效降低王壤对铅,锋的吸收率50%左右(PociechaandLestaii2010)。±壌淋洗后会产,能够使止壌中的铜减少j生淋洗剂残留的现象一,淋洗剂的处理问题需及时解决。否则会进步污染地下水,而且影响植物对必须营养元素的吸收。电动修复法去除止壤重金属也取得显著效果。这种方法利用金属离子在电流中移动的原理导出重金属并进行处理。Zn和Cu污染的±壤分别经电动修复后,助极附近±壌的Zn和Cu去除率分别达到74.3%和71.1%(胡宏摧,2009)。对木材防腐剂络化神酸铜(CCA)污染±壌进行电动修复,结果打1、Cr、As的去除率高达65%、72%、77%(Buchireddyetal.,2009)。另外在止壤中加入辅助试剂可増强重金属在王壤中的溶一解性,从而提高修复效率(方丰等,2008)。在物理修复方法中还有一种离子括抗技术,该技术利用离子间的括抗原理,当止壌中某些重金属元素浓度过商时,可W加入与其产生措抗作用且对植物危害较轻的另一种重金属一ene可W,后者可抑制前者对植物的进步伤害。Fg等在±壤中加入少量S抑制重金属Cu和Zn对娱蛇草的毒害作用,Se对Cu和Zn则为括抗作用(Fengetal.,2009)。另外Zn与CcL之间也存在招抗作用,向Cd污染±壤中加入Zn,可减少植物的伤害(周启星等,1994)。3.2农业生态修复技术农业生态修复技术是根据污染±壤的具体情况因地制宜调整耕作制度,也可W通一些能够积累重金属的超富集植物改善±壤环境过种植,改变±壤中重金属的生物有效性,减少或杜绝重金属通过作物流向食物链,危害人类健康。控制±壤水分、调节±壌611值,化肥、有机肥和农药的合理施用W及改变耕作制度和调整作物种类是农业生态修复主要的王种方式。±壤氧化还原状态影响±壤重金属活性还原状态的改变将导致一些金属表,氧化一样=现出不同的毒性和迁移性。比如神和络在不同价位时,所表现出的毒性就不,价As比五价As毒性高,而六价Cr比H价Cr毒性高。在氧化环境下,±壤中的H价As会被氧化为五价As,迁移性和生物有效性降低;H价Cr被氧化为五价Cr,大大提高迁移性和生物有效性,对人类健康的威胁也随之増大。水分影响±壌氧化还原状态,因此可W通过调节止壤水分来改变止壤环境,从而改变重金属毒性。部分重金属在还原状态下会通过形成硫化物沉淀的形式降低毒性,降低可迁移率。例如在灌概水田时由于水层的覆盖,隔绝了空气与止层的接触,阻止氧气进入到止壤中,使止层处于还原22?状态,该样硫酸根被还原为S%重金属离子与S结合可形成不易溶解的硫化物沉淀。3 荷花MiyGCS基因克隆、表达及功能验证因此,止壤环境可W通过灌概等措施来调节,W此来间接降低重金属迁移率和生物有效性。施用肥料和农药是使用最频繁的农业耕作管理措施,也是±壤重金属污染的主要一来源;方面,合理,因此可分别从这两方面来降低肥料和农药施用带来的±壤污染一改善农药和肥料配方。另方面,利用科学,最大程度降低农药和肥料中重金属含量配方合理施用化肥和农药的比例,送样既能最大限度发挥肥料和农药的功效,也可W减少赃料和农药的施用。有研究W氮肥为例证明了不同形态的肥料对于±壤重金属活+-形式的氮肥时性的影响。研究表明植物吸收NH4和N03,根际环境会因析出物质的+时根系会分泌导致根际环境酸化一不同而改变,吸收NH4,但是吸收N03时植物-环境碱化可分泌OH,根际(徐明岗等,2006)。因此对于大多数重金属污染±壌来说,施用硝态氮肥后的主壤环境条件有助于,选择硝态氮肥比选择镑态氮肥更有意义降低重金属的迁移和生物毒性。另外改变耕作制度和调整作物种类也可W有效降低重金属污染程度。増加在重金属污染±壤中种植超富集植物种类和数量,通过多轮种植及收割将重金属移出污染区,避免重金属重新进入污染区。3.3生物修复技术生物修复重金属是指利用植物或微生物的生命代谢活动与重金属间发生作用,从而减少±壤中重金属含量或通过改变止壤中重金属化学形态进而降低毒性的修复方一式。生物修复主要通过两种方式达到对±壤中重金属的清除效果;种是通过生物与一重金属间的作用,改变重金属存在状态,降低可移性和有效性,另种则是生物体本身通过自身代谢吸收,转运重金属,减少止壤金属含量,在生物体内富集累积,W此来降低重金属毒性。1985年,Grill等率先定义了植物修复的概念:即利用绿色植物达到清除环境中污染物的目的,使重金属毒性降低或消失(Brownetal.,1994)。植物主要通过提取,固定和挥发的方式减少±壤重金属含量,降低毒性。(Susarlaetal.2002)。,植物提取是指利用超富集植物吸收污染止壌中的重金属,并在植物体内把重金属从根系转运到地上部分积累起来,割除地上部分就可达到去除的效果。超积累植物即能高效地从±壤或水体中吸收高浓度的重金属,并具有将其从植株的地下部向地上部大量转运能力的植物。目前已发现400多种超富集植物。凤尾藤属的蛟蛇草(PterisvittataL.)是首次发现的As超富集植物,可高效富集神,有效降低±壤中神含量(Chenetal2002。eriscre.、粉叶藤.)后续发现同属凤尾藤属的大叶井口边草(PtticaL),4 第一章文章综化(Pityrogrammacalomelanos)也是神的超富集植物(韦朝阳等,2002)。张杏峰等发x现杂交狼尾草(Peimisetumamericanum(L.)LeekeP.urureumSchumach)和热研pp11号黒巧雀稗(Paspalumatratumcv.ReyanNo.ll)分别对Zn和Cd具有超富集作用(Zhanet址2010)。另外,在植物修复过程中,高效莖合剂的使用也有助于提高重g,金属回收率。例如,在龙葵富集Zn试验中添加EDTA,叶部、茎部和根部富集Zn浓度分别提高231%、93%和81%;添加EDDS导致龙葵叶部、茎部和根部Zn积累浓度都得到了提高,叶片部位竟提高140%、茎部和根部分别提商了124%和104%(Marquesetal.,2008)。天然蠻合剂梓樣酸、草酸、酒石酸等也有助于植物富集重金属。植物根系分泌的特殊物质可使重金属存在形态发生变化,有的可变为挥发态排出植物体,这种方式称为植物挥发。仅适用于某些重金属,例如Se、Hg、As污染的±壤可W利用这种方式达到清除污染物的效果。洋麻可使王壌中H价砸转化为挥发性的甲基砸从而去除砸(Banuelosetal.1997)。种植烟草的±壌中乗被转化为气态的束,而把±壌中的亲去除(Meagher,2000)。植物固定是指植物利用根系固定王壤重金属。植物根系吸收积累或者吸附重金属在根系表面。植物固定可W有效控制王壌中,根系分泌物也可将重金属固定在根际中重金属的迁移,增大重金属流向地下水的阻力,也可W避免向空气的排放及其在食物链中的传递。植物固定技术对干旱、半干旱区等尾矿堆置地植被重建的实现具有应用价值(MendezandMaier2008)。例如,串叶松香草(SilhiumperfoliatumLinn)可,p应用于Cd污染±壌的修复(Zhangetal.,2010)。此外一,微生物因其特殊的生存环境和些特有的代谢机制,在生物修复中也发挥-着很大作用。某些微生物如真菌,细菌等对重金属具有吸附、沉淀、氧化还原等作用,可W降低重金属毒性。细菌本身及其代谢产物对离子态的金属离子也有很强活化能力,可W把重金属吸附固定在±壌中。例如在香蒲(呀p/jfl/ah诉化J)根际中就发现了一些能够純化固定±壌中Cu、Cd的菌株,可降低±壌中可交换态重金属含量(Tiwarietal.2008)。,另外,不同菌种对于重金属的作用机理并不相同,因此根据不同的目的选用不同的茵种是提商微生物修复效率的关键。一W上兰种重金属修复方法的应用试验已经在国内外些地区开展。这H种方法各有利弊,物理化学修复方法需耗费较大人力、物力和财力,成本较高,且不能从根本上清除重金属。农业生态修复方式同样需耗费较大人力物力,且农药和肥料的施用会造成二次污染。而生物修复则拥有其他两种技术所不具各的优势:生物修复可1^^对±壌和水体同时修复,成本低廉,能够大规模推广,可通过后期对植物的处,生态安全理进行重金属回收。另外绿色植物不仅可W净化和美化环境,还能活化生壌环境,提。高±壤肥力,达到绿色环保可持续的长远效果关于植物修复的缺点则在于植物对±5 荷花W巧基因克隆、表达及功能验证壌重金属修复种类较单一而且超富集植物生长缓慢亟待解决的问,,修复速率慢也是一一题之。对于W上植物修复缺点需要进步研究改进。4植物的重金属抗性机制植物修复技术可有效降低主壤重金属毒性一,在此基础上还能増大绿化面积,是>种既环保又高效的修复方式。对植物抗性机制进行深入研究发现植物主要通过1^1下几。种途径将重金属积累在体内从而降低毒性,达到修复污染±壤或水体的效果4.1寶合作用在重金属污染±壤中生长的植物内含有对重金属有较高亲和力的大分子,通过吸收并结合重金属离子形成聲合物,从而降低±壤中重金属浓度,在植物中达到富集金属降低毒性的作用(Meinhart,1996)。在植物中主要发现两种重要的重金属结合蛋白,即金M硫蛋白(Metallothionein,简称MT)和植物络合素(Phyto油elation,简称PC)。金属硫蛋白广泛存在于生物体内,富含半腕氨酸、能被重金属诱导,首次在马肾中提取出MT(Margoshoesandv址ee,1957)。后来研究表明MT广泛存在于动物、植物及微生物中,由基因编码直接得到。关于植物中MT的研究则最早在小麦胚乳Ec蛋白aneea15)。(Ltl.87)之后,从就豆、巧南芥、番茄等多种植物中克隆出MT基因(Ma,etal.,2003;Garciaetal.,1998;Whitelawetal.,1997),对MT蛋白的功能研究都证实其具有较强的重金属藝合能力。一另种重要的植物金属结合蛋白是植物络合素(PC)。和MT相同的是,PC也是含丰富半脫氨酸的多肤,其中半腕氨酸的琉基能与重金属发生络合作用而实现解毒功能(Tennstedtetal.2008)。与MT不同的是,PC并非由基因编码直接得到,而是W,谷脫甘肤为前体,在植物络合素合酶的催化作用下合成PC(Ramosetal.,2008)。目前,在拟南芥(Haetal.,1999),百脉根(Ramosetal.,2008),荷花(Liuetal.,2012)等植物中已经获得编码该酶的基因,研究结果都表明PC通过与重金属墓合形式存在来降低重金属对植物细胞的毒性(Zhaoetal,.2014)。PC合成受重金属离子诱导,不同重金属离子对其诱导能力存在差异,研究表明領是最佳诱导剂。拟南芥APCS突变体对領商度敏感,过量表也会改变植株領积累量和耐受能力(Grilletal.2008)。,6 第一章文章综述4.2区室化作用区室化作用下植物利用复合物将重金属离子结合后转运到液泡中,W这样的方式。降低重金属对植物的伤害,也达到富集的效果例如矯胁迫下,植物细胞会分离出两--Cd复合物slol山arwihMW种PC,低分子量PCCd复合物(wmoecegt,L)和高分子量-shPCCd复合物(ighmolecularweight,HMW。这两种复合物作为载体将原生质体内)的重金属运输至液泡,从而减少重金属对细胞毒性(Ortizetal.,1992)。植物体分离2+2+出的液泡置于Zn溶液中,结果液泡中有Zn的积累,在高耐受重金属的遏藍菜属植一致的结果物的根与地上部分也得到与此,这些都表明液泡区室化重金属是植物抵御2000。重金属的重要机制(王剑虹和麻密,)4.3细胞修复植物还可W通过细胞修复机制减轻金属伤害。例如铜对细胞的毒害是使原生质膜2+受损,而植物则通过修复原生质膜进行防御(Murphyetal.,1997)。拟南芥在Cu胁迫下,会形成酷基载体蛋白(ACP)和己酷辅酶A结合蛋白(ACBP)。研究表明细胞膜脂代谢过程均需要这两种蛋白的参与。而且ACBP的反义负调节表达试验结果显示植物对铜的敏感性増加(Saltetal.1998),说明ACBP在铜解毒过程中的重要作用。,这些结果都证实了细胞对铜耐性的膜修复机制。5基因工程在植物修复中应用应用基因工程手段将与重金属积累相关的基因导入目的植物并使之表达,使转基因植物具有积累重金属或提高重金属耐受为的生物特性,达到解毒重金属的效果,这。种技术称为基因工程修复。该技术经济成本较低,效果持久种植绿色植物的同时又能积累重金属,减少±壤和水体中重金属含量,既能美化环境又能减少污染。近年来,利用基因工程技术发现了越来越多与重金属积累耐性相关的基因。研究发现与植物区室化积累重金属机制相关的是细胞内存在的两类膜转运器;ATP结合盒ATP-转运器(bindingcassete,ABC)和阳离子扩散促进器(Cationdifiisionfacilitator,CDF)。在植物中发现较早的液泡膜ABC转运器是HMTl(Heavymetaltolerance),HMTI一-Cd复合物向液泡转运形成高分子量PC-Cd复合物相关的蛋白是种与低分子量PC,PC-t位于细胞液泡膜上Cd和植物蟹合素的跨膜运输(Ortizeal.1995),在燕,调节,7 荷花MiyGCS基因克隆、表达及功能验证一BC型转麦中发现该转运器的功能(SaltandRauser1995)。另个与锅耐性有关的A,eastcadmc-运器是酵母福(Yiumfator,yCF7)基因,在细胞内起谷脱甘肤S共觀系作化通过结合Cd并将其运输至液泡达到区隔的目的(Lietal.1997)。表达拟南汹WTP,基因的植物表现出Zn耐性升高(VanderZaaletal.1999)。Ni遏蓝,在超富集菜属植物一r各M0T中分离出种编码金属忍耐蛋白基因(7PJ),能够修复酵母菌C1和ZRC1缺2+2+陷型突变株的敏感性状,C0T1和ZRC1是位于酵母菌液泡膜上与Co和Zn耐性有关的CDF蛋白,因此巧如可能与金属离子向液泡转移有关(Kimetal.2004)。,一些转运器基因外一除了,在桂物体内些合成金属结合蛋白的基因对于植物重金属耐性和积累量也有重大贡献。编码合成MTs蛋白的因的功能研究已经非常深入和成熟。动植物中M7基因的部分功能是相同的,将小鼠JW7W基因转入到烟草中,结果得到对重金属锡有抗性的烟草株系(Fengetal.,1994)。植物中W基因根据结构不同分为四种类型,这四种类型因在植物体内的表达具有组织特异性,不同植物中所含始?《因类型不同而且在植物不同生长发育时期所含种类也不同(Foleyand"2+Sin典1994)。因受Cu诱导表达,拟南芥幼苗经Cu处理后,Ama表达量升2+2+高。10MmCu处理烟草可他因表达量提高2倍多,而50MmCu则降低达2+量。不同植物基因受诱导重金属种类不尽相同,Mn能诱导番茄中基因表达升2+2+2+高。蚕豆叶片经Cu,Fe,Zn处理后,MTl表法下降。紫羊茅在Cd和Cu处理后,^因表达明显増强(常团结和朱巧,2002)。在酵母突变株cupl中表达来自拟南。芥的和该突变体内剔除了内源的因户,表现为对金属离子敏感而表达^^7和的酵母突变体对打18〇4和£(18〇4的抗性増强,说明的?7和^1^2与C哗产在功能上具有同源性(2h〇uandGoldsbroughjl998)。PCs作为植物细胞内重要的金属结合蛋白,PCs合成相关基因在植物重金属解毒过程中也发挥着举足轻重的作用(CobbetandGoldsbrou典2002)。谷脱甘化(GSH)被证实为PC合成的前体-谷。以谷氨酸、以半腕氨酸和甘氨酸是GSH合成的原料,在Y氨醜半脱氨酸合成酶CyGCS)和GSH合成酶(G巧的共同作用下生成GSH。GSH在植物络合素合酶作用下生成植物络合素PCs(Grilletal.1989)。研究表明参与PC合成过程,的基因对于重金属解毒都有不同程度的贡献。例如,拟南芥AtPCSl突变体对锅高度敏感,过量表达心化及?可[^改变植株锅积累量和耐受能力(Cobbetetal.,1998)。在芥菜中表私皆CW基因,可提高对Cd和Zn的耐受力,但是根和茎中的金属积累量并没提高(GasicandKorban2007)。从荷花,通过,中克隆得到基因转基因技术导入拟南芥后,获得锡积累量和耐受能力都明显高于贤生型的转基因拟南芥,转基因植株内箱积累量是致生型2倍多。无矯培养时,拟南芥植株内检测不到口。而在100^1^箱处理情况下,转基因和野生型拟南芥植株体内PC含量都显著増加,且转基因植株PC8 第一章文章综述含量大于野生型植株(Liuetal.2012)。这些研究结果都足W证明PC合酶在植物重金,属解毒过程中的重要贡献。谷脱甘肤的作用体现在植物各个代谢过程和调节机制中,尤其在应对外界非生物胁迫过程中更为重要(XiangandOliver,1999、GSH的合成需要两种酶的参与,即yGCS和GS,这两种酶也与植物重金属解毒机制之间存在联系。yGCS作为GSH合成过程中的限速酶,调控GSH合成并受GSH反馈抑制调节(Noctoretal.,1998)。转入反义的yGCS基因,可W得到GSH水平降低的拟南芥植株(Mayetal.,1998)。转入yGCS和G旌因的印度芥菜植株内,铺积累量増加50%,且PC和GSH含量都显著升高(Zhuetal.,1999;Zhuetal.,1999)。锅胁迫下玉米幼苗yGCS基因受诱导,在根部表达水平升高,且随铜浓度増大,酶活性逐渐升高,GSH含量也显著提高(RuegseggerandBrunold,1992)。一致的是与此结论,离体培养的番茄细胞经領处理后GSH和PC含量升高,yGCS酶活性相对对照组显著升高(ChenandGoldsborough.1994)。,6植物修复应用前景一植物修复作为种新兴的去除±壤和水体重金属的技术,因其绿色环保的技术原理,经济成本低,应用范围广,回收重金属可二次利用等特点,符合公众需求,具有-Sm巨大的应用潜力(Piloiiits2005)。目前,植物修复应从W下几方面考虑来提高修,复效果一二,是寻找更有效地富集重金属的植物品种,即超富集植物。是充分利用基因工程手段,挖掘更多有效抵抗重金属的基因,通过转基因技术产生更多可W解毒和富集重金属的植物种类一。H是由于些超富集植物植株矮小,生长缓慢等特点,可W综合利用基因技术使超富集植物具有生长量大的同时兼备解毒重金属的特性(Cunninghametal.1995Ebbsetal.1997)。依据实际需求,合理调整种植策略,使,;,植物修复效果达到最优化。但是,基因工程所带来的潜在危险及其副作用尚存在争议一(EllisandSalt2003),还需要进步长时间的验证和探索(Palmrenetal.2008)。jg,9 ■第二章荷花WnyGGS基因克隆及序列分析第二章荷花'/nGGS基因克隆及序列分析iy-摘要:Y谷氨醜半化氨酸合成酶(yGCS)是谷化甘肤(GSH)合成过程中的限速酶,参与调节G細合成,并在植物应对外界胁迫过程发挥作用。V乂荷花叶片为材料,PCRRACE技术获iW采用简并引物和得荷花iyGCS基因全长cDNA序列,命違为MzyGCS。该基因全长1801bp,开放阅读框(ORF)1569bp,编码522个氨基酸,且具有典型的GCS2基因家族结构域。系统进化分析表明荷花yGCS属于双子叶植物亚类,与龙眼,百脉根等亲缘关系较近,而与单子叶植物水稻,玉米等亲缘关系较远。-谷氨耽+化氨酸合成醇达分析关键词:克隆Y;荷也基因;表谷氨酷半脫氨酸合成酶(yGCS)是谷脫甘化(GSH)合成过程中的限速酶,过表达该基因的转基因植物GSH含量明显提窩(Takaoetal.2004)。GSH在植物络合素,合成过程中扮演其前体的角色,所提高GSH水平能够影响植物络合素合成。在GSH水平降低的拟南芥植株中,其植物络合素合成的能力显著降低,从而表现出对Cd的敏感性。植物络合素在植物中广泛存在,可与重金属离子塾合成稳定的硫化化合物,这些复合物通过转收和积累更多的重金属污染物,提髙修复效率(Christopher,2000)。可见谷氨戚半脫氨酸合成酶在植物修复中的间接作用不可小勵。目前已经在水稻(彭凌涛等,2004),酿酒酵母(Fanetal.,2004),己西橡胶树(邓治等,2012)等植物中克隆得到谷氨蘭半脱氨酸合成酶基因。荷花,又称中国莲,属于睡莲科莲属大型多年生挺水植物,是中国传统十大名花一之,花型大、瓣型丰富且颜色艳丽,具有很高的观赏价值和经济价值,大多分布于一淡水地区,抗性强,是深受大众欢迎的水生植物之(李春枝等,2011)。另有研究称荷花具有积累重金属的潜力(Vajpayeeetal.,1999),并能够净化水质(憂雅萍等,2006‘)。但关于荷花yGCS基因的研究尚未有报道。本研究耐深水荷花品种台城拂翠’为材料克隆出谷氨醜半腕氨酸合成酶GCS(y)基因,并对该基因序列进行分析,为从分子水平上解释该基因在荷花解毒重金属过程中所起的生理作用提供理论依据,同时对丰富荷花基因库及培育荷花或其他耐重金属新种质奠定基础。11 荷花wwGcy基因克隆、表达及功能验证1材料与方法1.1植物材料‘’自江苏省南京市艺莲苑桂物材料为荷花品种台城拂翠,引。试验于2013年在南一京农业大学花并遗传与育种实验室进行。荷花用根状茎栽培,定植于规格致的周转-50cm38cm高29cm,放。78周左右,选箱中(长,宽,)置于避雨温室内待生长到一取长势致的健康植株进行实验。取荷花叶片用于基因克隆。样品经液氮速冻后于’-C长期保存80。1.2试剂与仪器1.2.1试剂RNA快速提取试剂盒购自原平瞧生物技术公司,RNA快速提取试剂盒购自原平瞧生物公司;DNA片段纯化回收试剂盒(Agaro化GelDNAPurificationKitVer.2.0,TAKARA);cDNA合成试剂盒(Superscript虹ReverseTranscriptase,Invitrogen),xPCR反应试剂(TAKARA):2.5mmol/LdNTP;lOPCRBufer;TaqDNA聚合酶;’,A5RACE试剂盒(5RACESystemforRapidmpUficationofcDNAEndskitVersion2.0,Invitroen)粒DNA小提试剂盒(MiniBESTPlasmidPuri扫cationKitVer.2.0g;质TAKARA);限制性内切酶(TAKARA);2000bpDNALadderMarker(TAKARA)。1.2.2仪器设备°。°-C冰VCO-仁職-、70箱(RE)、20、4C冰箱气龍湿震荡箱、水浴锅、恒温培养箱(MC00722,MMM)、烘箱、低温冷冻离也机(Centrifoge5810R,Eppendorf)、凝胶电泳系统一(北京六仪器),紫外凝胶成像系统(JS380,上海培清)、制冰机(SANYO)、-^RAD-普她CR仪(PTC200,Bio)、超净工作台(HS840U,苏州净化)、全自动高压-3560-灭菌锅(TH)、巧光定量PCR^统(RotorGene3000,CorbetResearch)。1.2.3菌株与载体-T购自大连宝生物公司菌DH5a购自天根公司克隆载体PMD19,大肠杆。引物合成和测序由上海捷瑞生物工程有限公司完成。12 第二章荷花WwGCS基因克隆及序列分析12..4引物序列用Prim-ierPrimer5软件设计基因克隆过程中所需的所有引物序列,见表21,上海捷瑞生物工程有限公司负责合成和测序。表2-1荷花yGCS基因克隆及表达分析所用引物序列-Tab.21PmerseuencesusednenecloninanexressionanalsesofNelumnucieraGCSleriiggdboqpyfy’,—弓riSeuen优1物Prime序歹jq53()GCS-FCCCTCTGGAGACCCTcacaracnytgGCS-RGAAGATGGTGGTCAGGTGGttytcccartcJ-iangTCTGATCTAGAGGTACCGGATCCTTTTTTTTTTTTTTTTJiang-RCTGATCTAGAGGTACCGGATCCGCS-G31ATGAGAAGCCACATTTGGACCGACACGCS-G32TGGGTTTGAGCAGTATGTGGAAAPGGCCACGCGTCGACTAGTACGGGUGGG口GGG口GAUAPGGCCACGCGTCGACTAGTACGCS-G51CCCATACCTTCCCTTTGGCATTGCS-G52CCTTCGCCTTACAACCAGAGGCS ̄G巧AGCATCATCTGTAGGGGGGCGCS-WFATTCTATCACTCGACACTCAAAGCCGCS-WRTCAATATAACAGCTCCTCAAAAATGGGATCCACGCATTGACCCCNnAct-FACCACTGCTGAACGGGAAATinNnActn-RATGGCTGGAATAGAACCTCAiAtAct2-FTTCGTTTTGCGTTTTAGTCCCAAc2-RGGGAACAAAAGGAATAAAGAGGCtt1.3实验方法1.31.基因简并引物设计在NC朗中用BLASTn比对,根据洋葱八化C巧aAAL61610、拟南芥()凤-幻6/麻如CAA71075)、黄瓜(Cwcwwws如zVmsADK7788巧、龙眼(/woca巧uy/〇/2沪71AFF18844)、己西橡胶树(优veaADE062%)、百脉根(Zo化’*y巧?owcwAA045821)、水稻〇7za口挪〇人巧oWc幻仿01/片CAD48599)、梨(兮ms(C幻旅/7口如AHC02699)、菜豆(戶/zoyeo/uyvm/复a/lsAAF22136、魏豆(仍yw/wS加VM/n)AAF22137)、百日菊(Z如e/巧BAD27390)、玉米(Zea/maysCAC83005)、小麦’‘TW一(/zcw/wae饥VU/WAAW58147)等的yGCS氨基酸保守区域设计对简并引物,GCS-FGCS-民2-和(表1)。13 荷花AT/yGCy基因克隆、表达及功能验证1.3.2RNA提取RNA提取步骤及方法见附录一。1-.3.3IststrandcDNA合成及检測(1)在蛋白酶K处理过的PCR管中配置混合体系;TotalRNA1.0iljOUodTi8Primer50M2.0ig()(p)pRNaseFree味09.0[j1Total12.0(2)锅旋混匀,70C保湿10min后迅速在冰上冷却2minW上。(3)离也数秒使混合液聚集在PCR管底部。(4)在上述PCR管中配置下列反转录溶液:上述RNA反应混合液12.0山RNase-FreeddHaOL7ip5XM-MLVBufer4.0^1dNTPsMixture(lOmM)1.0ipRNaseitr0.ilMiibo5(RTaseM-MLV0乂WTotal20.0(5)42C延伸Ih。C讓-(6)705mil垢冰上冷却,綱觀DNA可用于PCRT増,也可置于20C保存。(7)根据荷花肌动蛋白基邸(登录号3序列设计引物NnActin-F:EU13115)-R2-1PCR和NnActin表,W荷花肌动蛋白基因作为内参基因进斤,检测cDNA合成水平。()ddHzO15.8ilt…xPCRBufer2.5片12+Mg1.5jildNTP(lOmM)2.0lnNnActin-F〇nM)1(l.0ln-iM)NnActinR(lO1.0j山TaqE(5U/nL)0.2|xlcDNA1.0"1Total25.0山"*反应条件为;94C预变性5min;94C变性30s,50C退火30s,72C延伸30s,30个循环!72C延伸7in。m取适量进行琼脂糖凝胶电泳检测,方法如下xTAE:首先用5〇溶液配置质量分数为1%的凝胶,将冷却后的凝胶先放在合适的电泳板上再放入电泳槽,加入50XTAE溶14 第二章荷花W巧GC?基因克隆及序列分析液,保证完全覆盖凝胶且要适当高于凝胶表面。选择合适量程的移液枪将上述反应液一加入胶孔中。观察条带大小及质量并拍照保,开启电泳仪,定时间后,关掉电泳仪存。1.3.4PCR扩増(1):先5000rm离也30s按引物订单说明加入适量ddH20干粉引物稀释p;;水合2min;祸旋15s。(2)Wc--F-l.3.3中合成的DNA为模板W表21中兼并引物GCS和GCSR为上下游R扩増’,引物,进行中间片段PC反应体系同1.3.3(7)反应条件为;94C预变性5min;°‘’‘’94C变性30S,50C退火30s,72C延伸1min,35个循环;72C延伸7min。4C保湿。1.3.5片段纯化与连接转化(1)目的片段切胶纯化回收见附录二。(-se2)纯化片段连接pMD19Timl载体,连接体系如下p:PC民roduct2.0JppT-vector0.5il)SolutionI2.5il|Total5.0ln’将上述反应液混合均匀,于16C连接45min。’连接产物转化/-80C冰箱取出(3):将大肠杆菌感受态(100叫支)从放在冰盒里解冻,待其融化后加入5山t述混合液揽拌均匀,冰盒中放置30min。冰浴结束,’C水浴热击90s-进行42,之后即刻转移到冰盒35min。向上述混合液中加入离也管2/3B口’体积的无菌L液(无抗生素),摇匀。用封膜将离也管封口37C摇,放在床培养1h。12000111离必1,11混匀菌液巧111111后吸掉上清使液体仅剰余100[,和菌体,利用移LB平板(AmX-a圧TGl)液枪将混合液放在含有p,,g上,用无菌玻璃棒涂抹,将平‘一板有培养基的面置于上方,放在37C烘箱过夜培养。1.3.6重组子筛选及测巧从平板培养基上随机挑取白色的阳性单菌落放入1.5扯离也管中,加入700iLLBf’-a-液体培养基(含Amp,IPTG,Xgl),在37C摇床振荡培养2h3h。取1叫菌液作为GCS-FGCS-RjS行PCR反应。根据凝胶电泳跑胶结果挑取阳性模板,利用特异引物,菌液送上海斯普金公司测序。15 荷花AMX进基因克隆、表达及功能验证’1-.3.73RACEPCR扩増(1)根据已经得到的目的基因中间保守区域的序列,设计两条正向引物作为’3RACE反(2-1)应的上游引物表。一-(;2)^Superscript田为逆转录酶,WJiangT为反转录引物,合成cDNA的第链:TotalRNA1.0^1J-ianT2.0ilg[RNaseFree味O9.0ipTotal12.0ip"稍搞旋泥匀,70C保湿lOmin后迅速在冰上冷却2minlU上。离也数移使源合液聚集在PCR管底部。在上述PCR管中配置下列反转录溶液:上述RNA反应混合液口.0山RNase-Free1姐d(2〇1.7j5XM-MLVBufer4.01^dNTPsMixture(lOmM)1.0ipRNaseInhibitor0.5ipRTase-MLV1M0.8^Total20.01片?,42C延伸lh。70C5min后冰上冷却cDNA可用于3RACE扩増,也可保温1,得到的’置于-20C保存。一--(3)JcDNA的(^l合成的第链为模板,用特异引物GCSG31和接头引物JiangR一进行第轮PCR,反应体系同1.3.3(7)。反应条件为;94X:预变性4min;94r变性30s,55r退火30s,72C延伸90s,35个循环;72C延伸7min。一^物稀释100倍-(4)将第次PCRJ,稀释产物为模板,用特异引物GCSG32和J-二接头引物iangRj进行第轮PCR,反应体系及反应条件均同步骤(3),扩増产物进行琼脂糖凝胶电泳,纯化回收第二轮PC民产物片段。-(5)纯化产物的连接转化、筛选及测序.3.41.3.6。,方法同1’1.3.85RACE根据已获得的目的基因片段’,设计兰条反向互补的特异引物作为5RACE的下游-1所示引物,序列如表2。(1)反转录:RNa-FreeseddHjO9.0ipGCS-G51(10M)2l.0nMTotalRNA1.0^1Total口?0ip16 第二章荷花MyGCS基因克隆及序列分析‘C保温min后迅速在冰上冷却2min。稍祸旋混匀,70lOl^上离也数秒使混合液聚集在PCR管底部。在上述PCR管中配置下列反转录溶液。上述反应混合溶液12.0叫xM-MLVer5Buf4.0叫dNTPsMixture(lOmM)1.0山RNaseInhibitor0.5iljRTase-MML0.8叫RNase-FreeHddiO1.7xl[Total20.0xl|(2)PC艮产物回收见附录H。(3)cDNA加尾。ddH20氏5叫SxTailBufer5il.0|dCTP口mM)2.5叫纯化cDNA10.0叫Total24.0pj’C2-nn将上述混合液稍离也,94,3mi,然后冰浴1mi,稍离也置于冰上,加入1°?TdT稍混匀后Cmin5(:min上。叫,37,30,6,10,离也置于冰一(4-)第轮PCR:W上述第H步产物为模板,WGCSG52和AAP为引物进行PCR’C预‘C°反应。反应体系同1.3.3(7)。反应条件为:94变性4min9430s,55C;变性°°退火30s,72C延伸90s,35个循环;72C延伸7min。一5 ̄()W稀释OOfg后的第轮PCR^为模板,从3CSG53和AUAP为引物进行第二轮l’一PCR反应反应体系剛:3.3(7)。反应条#同5RACE第轮PCR反应条件。将第二轮PCR ̄产物凝胶电泳后产物回收并纯化产物.,连接转化、筛选及测序方法同1.3.4U6。1.3.9cDNA全长序列的获得-WF和GCS-WR将上述H段序列拼接,根据拼接结果设计全长引物GCS。进行PCR扩増检测序列的可靠性。反应体系如下;(1曲2〇15.8nlxlOPCRBuffer2.5山2+Mg1.5叫dNTP(lOmM)2.0叫GCS-iM)WF(lO1.0j叫GCS-i)WR(lOfM1.0111TaE5U/0.2q(nL)cDNA1.0叫Total25.0ilf17 荷花WwGCS基因克隆、表达及功能验证’’’’反应条件C预变性4min94C变性30s,55C退火30s,72C延伸2min,35;94;个’循环;72C延伸10min。PCR产物进行凝胶电泳,并产物回收。产物纯化、连接转化-1及筛选测序.3.4.3.6。,方法同11.3.10序列比对与进化树构建利用NCBI的ORFfinder查找序列开放阅读框。通过BLAST进行序列比对分析lustalXl.83进行多重,选择与荷花yGCS同源的其他植物yGCS氨基酸序列用CNe-比对,利用MEGA5.1软件ighborjoining(NJ)算法构建系统进化树。然后利用在线软件对蛋白进行分析。ProtParam(http;//web.expasy.org/protparam/)预测蛋白的TMHMMSever2.0htt://www.cbs.dtu.dk/servic的/TMHMM/)分子量及等电点;(p预;//wosortse.cbrc./)预测亚细胞定位测跨膜结构域;及wolfPSORT(httpq;巧jp-SMART(http://smart,emblheidelberg.de/)分析蛋白的保守结构域。2结果与分析2.1RNA提取质量与反转录效果检测°提取雛沒RNA后RNaseFreeHzO溶解。充分溶解后取IilRNA,进行1/疏臟j-1乂)电泳检测(图2。在图中可1^1看到288、188条带,并且清晰明亮,说明财认质量较好。28S和18S含量比働为2:1RNA无明显。,表明痛耽MlRNAj?行两步法合胞DNA。吸取1^llcDNA为模板,科荷花肋动蛋白基因为内参基因进行?(及内参检测,cDNA合b2-化)。PCR扩増结果获得200p左右的片段(图,条带明嘉带型稳定戯量,与?一删大小致。说明合成的cDNAM量可靠,可用作下游实验MMas■250bBp^^^|AB-图21RNA质量检測A:总RNA;B:内参基因W化4C7WPCR扩増;M:DNAMarker,2000F-ig.21uantityofextractedtotalRNAQAKfition:TotalRNAB:AmcaofgeneM:DNAMarker2000;p;,18 第二章荷花iVwGCS基因克隆及序列分析y2.2目的中间片段序列测定通过在NCBI上搜索其他植物谷氨酷半脱氨酸合成酶基因的保守氨基酸序列,在线设计上下游兼并引物。合成的cDNA为模板,进斤PCR扩增反应。得到600bp左右-2-目的片段(图2A)。经过切胶回收,连接PMD19T,转化大肠杆菌DH5a感受态,挑取阳性单克隆,用LB液体培养基振荡培养1h后,用特异引物进行PCR检测。挑取电泳检测呈现阳性条带的菌液送上海思普金公司测序。测序结果发现获得的该片段与龙眼公切访立基因有92%的同源化初步确定该片段为荷沿VnyGGS基因片段。2-.3RACEPG民结果’’’RACE根据获得的中间片段序列,设计了3RACE和5特异引物。通过两轮3RACE’’’RACEPC民反应358b2-2BC)和3轮5,分别获得片段巧6bp和片段66p(图,。通过’iVS基因的3产物纯化回收,连接转化及测序等步骤,可W确定得到的片段是荷花wGG’端和5端序列。750bphjBI750bp^^^WABC图2-2荷花WnGCS基因克隆y’片段’M:DNAMarker,2000,A:中间片段,B:3,C:5片段-eumboFi.22GenecloninofNnyGCSinNlnucieraggf,,M:DNAMarker2000A:ConservedseuencesB:3RACEC:5RACE,,q,,2.4荷花iVwGCS基因全长序列的获得’’将获得的中间片段与3片段,5片段拼接得到全长序列1783bp,ORF1569bp,编’’码522个氨基酸。序列分析表明,该序列包含3非编码区194bp,包括化lyA18bp,519 ■基因克隆荷花、表达及功能验证JVwGCS非编码区38bp。yGCS蛋白预测相对分子量59159.0,等电点6.27,稳定指数39.60,表明该蛋白较稳定-WF和。根据开放阅读框(ORF)两端设计全长序列的引物GCS-序获得全长GCSWR,进行PCR反应扩增全长序列,经现I1783bp,命名为iVwGGS。M12342000bp一。?圍2-3图TVnyGCS全长扩增arker000-:M:DNAM,2;14目的片段-Tnng.23hefulllengthamplificationofNyGCSMDNA-menM:arker200014:Theobectfrat,;jg2.5氯基酸序列同源性比对蛋白质序列分析表明,该基因的推测蛋白具有522个氨基酸,与已克隆的巴西橡胶树、黄瓜和拟南芥的氨基酸数目相化大于百脉根中494个氨基酸。NnyGCS蛋白预测相对分子量巧159.0,等电点6.27,稳定指数39.60,表明该蛋白较稳定。对该蛋白进行跨膜结构域分析发现其不具有跨膜结构域。利用DNAMAN软件进行多重比对,iVwGGS基因所编码的氨基酸序列与百脉根'王ofw〇mcav4化cea,D诚/onwn,己ve幻句,洋葱(f)龙眼(g)西橡胶树(無(_/W’?■4地访a化6ms7"en加Cmcwww5口柿"yra6!成2口句的GCS氨基酸),黄瓜(句和拟南芥(取y序列一8:87%85%1%80%78%和76%。该基因在进化过程中C端保守致性分别为,,,,性较髙,N端前100个氨基酸差异性较大。可见该基因在不同物种中体现种源差异性。20 第二章荷花柳7CS基因克隆及序列分析.B?^SYCVPtfiKCFRtLCtlSTPlLlCln#^...TEUKTSPFGVTHRIEASK...GVPRECQ73^C^^Hgg^|fl百SSMHHH趾pisSFVAAS.GSS?Fgl47取巧响姑|虹南养??^I;^SYTVVPSGVCSKTGTVSGGVRNLDVI脚AFGS倒sMLLHSV.flQIfl74|^|^^|齒皆眷裙|^|^.痒葱.QSRCWQLER.KGFWLS..FLNFEKNAKNISeE48^^龙賦..?.SEITPG.…igGS63l'g??IAHRIGAETLRCRGGNb&FNES..THAE5LK^LLsNIMHGLH黄/t.■|!t^f^^Ss|S3IDSAKMASE?vfl77^^申||韦|莲.tjMpaCpyPSSYIRSEHNVAGNMEDRIVSRGKAYKM垃W吨由志..KVPRISHLDGI昏国74Consensusmsvi9ii篮巧4ConsensusasteltdllasckritehekffIillnaerfvkmepppygggpyq巧.宫P洁1^.2巧莲.234ConsensusiglqgkqsislepggqfelsgapletlhqtcaevnshlyqvkavaeegigflggfqpkwdipmkrimpgyE?^KW-313..[2百S^.巧唾强国|^巧拟 ̄^.3。洋葱..-286FWVflB^fe01.BWfeiBBMWHWWEMWBMBMBI^^WM..Bsim301:eme觀.jWBsiBBR—BlHi—3巧ConsensusympkvggldmmrtctvqvnldfsedrktagIqpiatafanspfgkpngstdr.巧]己西橡胶树"iIi1||HHIlI|lilHilllIIPW,IHIIIIIiyiHIllMIIIMIHl||1W1||II|川川IIIII1H,IHI百瞒g.365洋葱.see1^.巧5Consensusgmlpfvfdsfgfeyvaldvpmyfyryidcgfrfgklpgelpdwenhlttifpevr1kryl己树.473百脉根.^K^BSSS^S^^^MiMkn>J4化|U热tfHHil"2洋葱.?446|g|li化h^KAB^R^^^^^wSH4c聲SH"5莲.担"2ConsensusemrgdggpwrrlcalpafwvgllydIqadwtemlrkvgDctpfrdglhva过ag己西橡胶棘522c^WJHtg.494tm^.^521痒意-495r.Consensuslergkegflvevtgvtpeliewvdfelyg图2 ̄4不同植巧GCS基因推測的氨基巧序列的多重巧列比对分析yF2-4Muig.ltiplealignmentofredictedaminoacidseencesofGCSenesfromdifferentlantspquygp21 荷花WwGcy基因克隆、表达及功能验证2TwGCS基因氨基酸序列系统进化树构建.6荷花Ay觀VwyGCS基因序列所推测的氨基酸序列在NC助网站上进行BLASTTp,找到许多同源的yGCS蛋白,选取15个yGCS序列与NnyGCS序列进行多重序列比化利用MEGA-5.1软件NeihboroininNJ算法构建系统进化树。jg()系统进化树分析结果表明;不同植物的yGCS蛋白被分为两个亚类,荷花NnyGCS属于双子叶植物亚类,与双子叶植物龙眼,百脉根等亲缘关系较近。与水稲、小麦等单子叶植物亲缘关系较远。LGCS巧jyII78PvGCS_y'PsGCSyCbGCS17yjAGCS100tyDlyGCSI—*PcGCSaTy ̄CsGCSy^HbGCSy^ZeGC29ySINnGCSyAcyGCSITayGCSIOsGCSyIWZmGCSy^'P乃ayGCS—1111!0.020.000.080.060.04图2-5植巧GCS系统进化分析y-.25PhlltGCS巧loeneticanasesofan6ygypy?I(S:6化10AtGCS:巧南芥CAA71075;CsGCS:黄瓜(ADK77说2);DlGCS:龙SAFF18844);(A巧GC洋巧(AAL);r()rYHbGCS:百化报(AA045821OsGCS:水稻CAD485典PcGCS:劳:己西橡胶巧(ADE06226)LGCS;();y;ir)yy(02699)PvGCS:37ZeGCS:百日巧田AD27390ZmGCS:玉AHC:巧豆AAF22136PsGCSF221;);;y();r巧豆(AA)yy米(CAC拍00化aGCS:小麦(AAW58147).Tr22 第二章荷花MiGCS基因克産及序巧分析y3讨论‘’T/本实验首次从耐深水荷花品种台城拂翠中克隆得到荷花iSiyGCS基因。将该基因与己知的同源基因比较发现’,该基因在5端序列的保守性较差,而C端具有较商保守性。对yGCS^基酸序列进行分析发现不同植物中编码该基因氨基酸巧目不尽相同,荷花W/iyGGS基因预測编码纪2个氨基度残基,与已克隆的己西橡胶树,黄瓜W及拟南芥中気基酸数目相近,且同源性较高。而小麦中yGCS仅274个気基酸。不同植物中yGCS基因都有一个共同的结构域,属于GCS2家族。因在系统进化过程主要分为两个亚组:双子叶植物亚组和单子叶植物亚一组。荷花A/hGCS基因属于双,与龙眼y子叶植物亚组,音脉根,E西橡胶树等组,与龙眼,百脉根亲缘关系较近,而与单子叶植物水稻,玉米,小麦等进化关系较远。荷花因的克隆一,为下步研究该基因的调控表达及其在植物耐重金属过程中的具体作用机理奠定了基础。23 第H章W巧GC?基因表达与及亚细施定位第王章iVnyGCS基因表达与亚细胞定位第一节福胁迫后MGGS在荷花中表达分析iy摘要:利用200^1^1和400曲1的锅分别处理盆栽荷花,于处理后111,3h,6h,12h,24A^h,用获光S基因在锅胁迫后的表达情况处理后取样定量方法分析荷花wGC。并在1山3d,5d,9d时取样荷花叶片,叶柄,根茎,根须。用于测定荷花各器官锅积累情况。结果显示:在锅胁迫后,荷花MzyGC媒因在叶片和根部都有不同程度的响应。不同浓度锅处理后,iVwyGCS在叶片表达变化趁势相同,且高浓度锅处理下基因表达■一强度更大。在根部的GGS表达变化趋势不致。荷花各器官中根须中积累重金属TWiy最多,根茎积累重金属最少。重金属积累量从高到低依次为根须>叶片>叶柄>根茎。尽管在不同浓度锅处理条件下一致锅积累量却,荷花各组织锅积累量变化趋势,但是差异显著。关键词:茨光定量分析;锅胁迫福对于植物来说是一种非必需元素,高浓度下箱会对植物产生毒性。植物在进化过程中逐渐形成应对重金属的适应机制,即通过合成金属结合蛋白响应領胁迫从而降低重金属毒害(熊愈辉和杨肖娥,2006)。研究表明重金属,高温,低温等胁迫能诱一导yGCS基因上调表达(Wuetal.2009)。基因响应胁迫表达能够从方面反映该基,因的功能,,重金属诱导下yGCS酶活増强其中研究较多的是锅胁迫下该基因的表达ota。变化(Hlgerel.1998Semaneetal.,2007),;本实验在从荷花‘台城拂翠’中克隆出因的基础上利用巧光定量技术研,究该基因在荷花正常生长情况下W及铜胁迫处理后的表达情况,并测定锅胁迫下荷花各器官积累重金属的情况。为解释iVwGCS基因在荷花重金属解毒过程中所起的重要作用提供理论依据。1材料与方法1.1植物材料25 荷花MiGCS基因克隆、表达及功能验证y‘’一植物材料为荷花品种台城拂翠,引自江苏南京艺莲苑有限公司。选取生长致且健康的荷花幼苗,用200pM和400pM氯化锡处理荷花,分不同时间点(Oh,Ih,3h,6h,12h,24h)取荷花叶片和根部。在链处理后Id,3d,5d,9d取样荷花各器官(叶片,叶柄,根茎,根须)用于测定销积累量。1.2试剂与仪器1.2.1试剂RNA提取试剂念(TRIZOL)-,cDNA合成试剂盒(MMLVRTasecDNA巧),巧光定量PCR试剂盒SYBRGreenRealtimePCR购自TaKaRa,浓硝酸等。1.2.2实验仪器ICP离子检測系统,其余同第二章1.2.2。1.3实验方法1.3.1荷花RNA提取及cDNA合成一(1)RNAM取方法见附录。(2)cDNA合成方法同第二章1.3.3。l-T1.3.2ReaimePCR分祈荷饱因巧光定量的引物有上海捷瑞公司合成,内参基因则选用荷花肌化-动蛋白基邸(登录号:EU131153),引物序列见表31;3-表1荷花yGCS基因表达分析所用引巧序列Tab-le.31PrimersequencesusedinexpressionanalysesofNelumbonuciferaGCSy,’引鉤Primer序列Sequen-3ce口)NnAc-tinFACCACTGCTGAACGGGAAATNnAc-tinRATGGCTGGAAIAGAACCTCAGCS-RTFGCTTATITCCCAGCCAAGTCGCS-RTRTCTCGGCACTCCAIAACAAG将合成的cDNA稀释30倍,按照巧光定量试剂盒说明书建立20Hi反应体系:SYBR10.01^26 =第章WwyGCS基因表达与及亚细胞定位cDNA5.01片上游引物1.0叫l下游引物1.0i^ddH2〇3.0Total20.0il|‘‘’,焚光定量PCR反应程序;95C2min;95C15s,60C30s,72C25s,40个循环3。AAC姑进。每个样品重复次,分析每个样品的a值使用行计算,目标基因的相_么么口=对表达量2(XivakandSchmitgen2001)。^1.3.3荷花各器官福含量的测定用200^lM和400pMCdcl2处理荷花后,在0(1,Id,3d,5d,9诚滿花的叶片叶’C杀’C烘柄,根茎,根须部位,经蒸馈水冲洗干净后,在烘箱内105青30min,再80干-。23天。称重后用HN03消煮,利用原子吸收分光光度计测定領含量。每个样品重复3次2结果与分析2.1荷花iVwGCS基因组织定量分析)、取样正常生长的荷花叶片(成熟叶,嫩叶,剑叶叶柄、茎、根须各器官保存cDNA定量分析-。由图31于液氮中,随后提取荷花RNA,反转录合成,进行巧光可W看出基因在荷花各个器官均有表达,无组织特异性,但是不同器官的表达量有差异。在荷花各个器官中,该基因在嫩叶中表法量最髙,茎中表达量最低。各器官>>>>>一组织的不同发育时表达量从高到低依次为嫩叶叶柄成熟叶根须剑叶茎。在同期,,嫩叶中Mi信CS表达量高达成熟叶的3倍。剑叶的近9倍。基因表达量也不相同)1.00rTg0.80圓.■轴夏.迸旨0.60■T0.40■圓'I-?IL^mm塞巧肿衡■叶巧巧巧H3-组织中表达模式图1方巧<沿5在荷巧不同-nressnFtiig.31NyGCSexpioatternsindifferentssuesp27 荷花WfiyGCS基因克隆、表达及功能验证2.2福胁迫下荷花叶和根部iVwGCS表达响应-由图32可W看出在領胁迫后,匈GC巧荷花叶片和根部的表达均有响应。不同的是在不同部位该基因的响应水平和响应时间不同。在叶片中表现为表达量先下降再一M,在根部的表达量变化则为在某时间点骤升链处理时,升高的趋势,比如在200^^。胁迫后1h时该基因表达量剧増,而在其他时间点的表达量则保持相对稳定状态在400^M福处理的根部也表现出相似的现象。虽然在叶片部化^巧信0¥基因的表达表达水平,该基因的响应水平也有所不同。从图变化趋势相同,但是不同浓度的锡胁迫情况下中可^明显看出400?^^領处理情况下该基因的表达水平明显高于200^1\1領处理条件下的表达水平。可见高浓度的領胁迫能增强该基因的表达水平。在根部也有类似的现象,0图1211和(:图111均为基因响应时间点,但是400^11^1锅胁迫下如巧;併3表达强度明显高于200山VI时的表法水平,前者约为后者的1.2倍。饼原压不同器官的不同模式的胁迫响应可能与其不同组织的功能相关,荷花不同组织对重金属的积累程度也可能与该基因的表达情况相关。为了解斯叩併进基因在荷花积累重金属方面的贡献,本研一究进步对領处理后荷花各器官组织的重金属积累量进行测定。2.3福胁迫下荷花组织重金属积累量为研究荷花积累重金属的特性VWP4001\?:(1(:12处理荷花后,于1d,3d,,用200n][5d,9d取样荷花叶片,叶柄,根茎,根须等组织测定重金属含量。测定结果显示:荷花各器官中根须中积累重金属最多,根茎积累重金属最少,根须中領积累量高达1400l/干重,根茎中領含量则低至80l/F重。重金属积累量从高到低依次为根须>^gg^g护一>>3-3可定的规律叶片;叶柄根茎。从图W看出锡胁迫后荷花各器官領积累量变化有叶片中福积累量逐渐升高,根茎中,而叶柄中锡积累量逐渐减少锡变化趋势为先升髙。后降低,根须中锅含量变化也是先升高后降低尽管在不同浓度箱处理条件下,荷花一各组织領积累量变化趋势致,但是福积累量却差异显著。200mM锅处理下叶片中福1处理时,高达十几倍。在叶柄中3d;t200iM积累量明显高于400^1^前400pM处理比^处理高达2倍]^1,而5(1后则降低的比200^lM处理降低得多。400^处理时根茎中領含^1領处理条件下,根须中箱积累同根茎相同,离浓度锅胁迫下反而积累量均低于2001^領较少。28 第H章iVnGGS基因表达与及亚细胞定位yAB〇0.40.5r.1liuiiiliiliiiliOh化化6h12h24hOh化化化12h24h10〇-fO1.0r0-8?巧!1?S0.8i。.6-〇-6斷i|IIl|I霞laIl,.l^—Foil一‘I〇Oh化3h6h12h24hOh化3h6h12h24hCD3-2图iVhyGCS在锅处理下表达模式分析A:叶片200^MCd处理;化叶片400|4]^0(1处理;C:根200^lMCd处理;0:根400叫^0(1处理;■巧3-2昏iV只GGSexressionaternsunderCdtreatmentyppAL200MCdtretmtB:Leaves400iMCdtreatmentC:Root200jMCdtreatmentD::eavesjaen;;;f||Root400iMCdtreatment.|1000il800■0XOiunol20tmol。|「。!IIILLOdId3d5d9dOdId3d5d9d〇AB。.[lilfIt\ZMIft址?,OdId3d5d9d〇dId3d5d9d^^图3-3荷花各纽织領巧累量A:叶片B:叶柄C;根茎D:根须F-mnnnumbouig.33titleCadiumcotetiNelNciferaorgansALsBPC:RizomeD:Rt:eave:etiolehoo,,,29 荷花VnyGGS基因、表达及功能验证i克隆3讨论在荷花各器官中,均能检测到yGCS基因的表达。泛与之前在己西橡胶树各器官中一均有该基因的表达结果致(邓治等,2012)。表明yGGS基因属于姐成型基因,在植物生长发育各个阶段均发挥重要作用。不同的是,在不同阶段的组织中,基因表达量不同。在己西橡胶树中健康植株中比枯死植株中该基因表达量商,而在荷花叶片中,嫩叶中该基因表达量高于成熟叶和剑叶。这表明yGGS基因在植物生长旺盛阶段发挥较大作用。另外,在荷花绿色组织中(叶片,叶柄)该基因表达量相对于非绿色组织(根茎)。这可能与该基因在细胞内的分布有关。,根须则较离領胁迫下,荷花叶片和根部GCS基因表达均有响应。在叶片中,该基因表达量先y下降后上升。随着处理铜浓度的升高,基因表达量整体有升高趋势。基因表达量的变化趋势体现其功能的发挥。基因表达量先下降可能是合成GSH耗用,随后又上升可能受到GSH反馈抑制调节。GSH应激调节在植物遭受非生物胁迫时发挥重要作用(郭静成和尹顺平,19%)。在根部,iVwGGS表达量变化则为瞬时升高。不同浓度处理,基因响应时间不同一致的是,高浓度矯胁迫下,反而响应延后。但是,与叶片中情况高浓度下基因表达量普遍升高。从荷花各器官領积累情况来看,叶片和根须中积累较多,叶柄和根茎中则较少。一8这与箱在花挪菜中积累特点致(汤惠华等,200)。随着觸胁迫时间的延长,叶片中領积累量逐渐升高,叶柄中趋势则是逐渐下降,根茎中先上升后下降再上升,根须中先上升后下降。据此猜测荷花中矯积累路径可能为最先接触根须,在根须积累量很快上升,然后从根须向根茎转移进而经过叶柄最后转移到叶片中。領积累量和NnrGCS一。基因在各器官表达量有定联系在根茎中表达量最低,領积累量也最低。叶柄中基因表达量虽然高于根须。,但領积累量却低于根须根际环境的特殊性W及根系微生态的作用可能是根系积累大量重金属的原因(孙琴等,2005)。实验表明荷花积累領的器官是根须和叶片一。荷花作为重要的水体观赏植物,具有积累重金属的特性,这特点提高了荷花的利用价值,在美化环境的同时积累水体重金属,减少水体污染,是植物修复技术的具体体现。30 第H章俯yGCS基因表达与及亚细胞定位第二节TVwyGGS基因亚细胞定位摘要:构建绿色茨光蛋白(greenfluorescentprotein,GFP)融合表达载体-GGSpMDC43M77,利用基因枪轰击法将其导入洋葱表皮内表达,在激光共聚焦显微镜下观察到该基因定位于细胞质中。关键词:载体构免亚细胞定位基因功能研究已成为目前生物学研究的热点,而蛋白质的亚细胞定位研究可W帮助全面地理解植物形态建成、生长发育化及对逆境的耐受性和抵抗性,从而研究蛋白质如何正确行使其功能(左青等,2011)。目前亚细胞定位的研究方法较多,应用较多的主要有基于报告基因表达产物的特性来实现目标蛋白定位的融合报告基因定位法、免疫组织定位法等(邢浩然等,2006)。其中绿色巧光标记(GFP)应用最为广泛於山(1611化31幻31.1996。近年来绿色英光蛋白被应用于活体定位观察、蛋白质定位,)4FP等研究(Chalfieetal.,199)。当G在真核细胞或原核细胞中表达时,如受到蓝光或一紫外光的激发,会产生种明亮的绿色巧光,该基因与目的基因连接不会影响目的基因的表达FP一,而且能与目的基因形成融合表达。G作为种新的报告系统,在基因表达和蛋白质定位的研究中得到了广泛的应用,该方法己成功地应用于大量的植物研究(Pangetal.,1996)。关于yGCS基因的细胞定位,有报道称该基因定位于细胞质及叶绿体中(HellandB一erginann,1990;Joseetal.,2004)。通过在线预测软件分析结果与之前报道致。为-了解荷花iVwGGS的基因定位情况,本研究通过构建表达载体pMDC43NnYGCS,利用基因枪轰击的方法,,将重组质粒导入洋葱表皮细胞暗培养后在巧光显微镜下观察基因表达及定位情况。1材料与方法1.1实验材料盆栽荷花,新鲜洋葱。31 荷花WwGG?基因克隆、表达及功能验证12试剂与仪器.1.2.1试剂及菌株酒精,亚精胺,氯化钩,金粉等,1/2MS固体培养基,山梨醇,其他试剂同第二章.2.1。11.2.2仪器设备同第二章1.2.2。1.2.3菌株与载体MD19-T购自大连宝生物公司克隆载体P,大肪杆菌DH5a购自天根公司。引物合成和测序由上海捷瑞生物工程有限公司完成。没巧和等核酸内切巧采购于Fermentas公司;ENTRlA入口载体和植物表达载体MDC43为本实验室保存。pp1.3实验方法1.3.1正义表达载体构建根据pENTRlA表达载体上的多克隆位点,选择iVhyGCS序列中不含有的两个限/)GCS-&饥和GCS-M制性内切酶(及zW和iVirf醇切位点>rt。W荷,设计上下游引物’-cDNAPCR反应。反应程序为C30S;%C10S,WC30S,72C花为模板进行;98"C°2min,35个循而72IOmin;4C终止。反应体系如下;丸狙2〇11.85xPhusion册Bufer4.01片DMSO0.6nldNTP(lOmM)0.4ilfGCS-alM)1Sl(10.01n片GCS-Notl(10M)10ln.nPhusionDNA聚合酶0.21片cDNA1.0Total20.0il^二5-1回收反应产物,后续实验操作同第章1.3..3.6。测序验证后,分别提取-T-pMD19iV>27GCS和pENTRlA的质粒(详细步骤见附录五)。将得到的两种质粒进行32 第H章WwGCS基因表达与及亚细胞定位S幻/I和酶切。分别加入lOxFastDi的tBuffer2叫,质粒4叫,加/I和AW1各1冲g°加ddH2〇至总体积20叫即完成酶切反应液配置。酶切程序为37C,Ih。然后进行产物电泳检测,并回收酶切后的目的片段和pENTRlA载体。将上述纯化回收的目的基因片段与pENTRlA载体片段用T4连接酶连接,分别加入目的片段和pENTRlA载体片段各4叫,T4连接酶1叫,连接酶Buffer2沁加d姐20漏合液在°至总体积20叫,将PCR仪16C连接2h后,将产物转化大肠杆菌感受态,涂’布在含卡那LB平板上37C过夜培养筛选。挑取单克隆进行PCR菌液检测,并测序。ENTR-测序正确后提取plAA吟GCS质粒,并用限制性内切酶Pvul(NEB,美国)x充分酶切使之线性化。分别取质粒5叱Pvull叫,10Buffer2叫,加ddH20至总体°°积20叫。PCR仪中设置37C,2h,70C,10min程序。反应完成后将酶切产物进行电泳检测,回收线性化片段。提取PMDC43的质粒,将含有NnyGCS基因的pENTRlA载体线性化产物和:DNA2叫MDC431叫L民酶1,pMDC43质粒进行LR重组。重组体系线性,P,叫加°入巧’(1地20至总体积5^11。浪匀后25C,1h,加0.5叫ProteinaseK,混匀,C,15min,°C70,10min后将反应产物在冰上放置5min即重组完成。重组质粒转化大肠巧菌,挑取阳性单菌落,利用目的基因特异引物和PMDC43载体引物进行PCR检测,并送测序。挑取阳性克隆提取质粒用酶Pacl和Ascl进行酶切验证。1.3.2洋葱表皮细胞瞬时表达洋葱处理:将购买回来的新鲜洋葱去除表面两层皮,将中间两层切成边长1cm的一方块,然后将内表皮侧贴合于含有山梨醇的1/2MS固体培养基上,培养16h。次日,将洋葱内表皮撕下来铺于1/2MS固体培养基上。c-eartceevers质粒DNA的金粉包埋及基因枪(BiolistiPDS1000/HPilDliySytem)轰击操作步骤见附录五。1.3.3显微镜观察-n将洋葱表皮置于载玻片上,癸光正置显微镜下观察pMDC43iVyGGS融合蛋白在洋葱表皮细胞中的表达和定位情况。2结果与分析-将构建好的重组质粒pMDC437VnGCS经基因枪轰击法导入洋葱表皮细胞,暗培y33 GC?荷花MiS基因克隆、表达及功能验证y养16hW上,用巧光正置显微镜观察绿色巧光蛋白表达情况。结果显示,在导入空载,绿色巧光分布在整个细胞中体PMDC43的洋葱表皮细胞中,而在导入-3-34)pMDC4NnY〇CS的洋葱表皮细胞中,可看到细胞质中有绿色英光(见图。3-4M图syGGS在洋葱表皮细胞定位■MDC4-3空载体定位a:可见化,b:GFP,:叠加437Vpc;pMDCnyGGS定位d:可见光,e:GFP,f:叠加。-Fil山zationf内teig.34SubcelarlocalioTVyGCSeneroeininoniondermalcellsgppEmrtM43-ovectoriibllihtbGFPeredMDCiVGCSdiibllihtbGFPMr.a:vseg,:,c:g;ny:vse:,c:eedpy,pgg3讨论亚细施定位方法作为一种研究基因功能的辅助手段,能够提供最基础直观的信息Niedenthaletal.1996。蛋白的功能与其在细胞中的定位密切相关,从而可W对基因(,)功能作出预测。在线预测MjyGGS定位于细胞质和叶绿体,本研究利用基因枪轰击N一irGCS基因定位于细胞。洋葱表皮法结果表明y质,这与预测结果基本致用分离原生质体法研究表明丫GCS基因定位于细胞质和叶绿体中(ReginaandGeorge,1990)。基于洋葱表皮没有叶绿体细胞器,在洋葱表皮细胞内不能观察到叶绿体巧光情况,还需进一GCS基因定位于细胞质中GSH步借助其他方法研究。y,在细胞质内发挥功能合成。一領胁迫下PCCd-PCs复合物,GSH含量升高进步合成,与領结合进而生成,在转运蛋白作用下转移到液泡中,从而减少重金属对植物细胞的伤害。34 第四章荷花VwGCS基因的功能分析第四章荷花TVwyGGS基因的功能分析-摘要;通过构建荷花iVwGCS正义表达载体pMDC43iVwGC&然后通过农杆菌--介导法转化野生型拟南齐,经过潮霉素抗性筛选,RTPCR,qRTPCR筛选鉴定阳性。选用转入基因表达量高的株系(T3代)完成根长生长苗,种子发芽率,生理指标含量等功能验证实验。结果表明,在含锅培养基上,转基因株系根长明显大于野生型拟南齐,根系也较野生型发也种子发芽率稍高于野生型,植株受重金属伤害较野生型轻。关键词:转基因拟南界耐锅力;荷花再生体系方案尚不成熟,而通过转化拟南芥研究植物基因的功能已经有相关报道,并被广泛应用。Liu等(2012)从荷花中分离得到植物络合素合酶基因MifCSi成功转入到拟南芥中,转基因植株在靖胁迫下,较野生型耐锅能力和积累領能力均増■强。柳忠玉等(2011)将虎杖白黎芦醇合酶基因fc化S转入拟南芥中,结果转基因拟南芥种皮颜色发生改变呈浅黄褐色,并且子叶中花青素含量显著减少,表明fci议基因导致转基因拟南芥黄丽类物种合成受阻。陈吉宝等(2010)将菜豆脯氨酸合成酶基。因转入拟南芥,结果改善了转基因植株的抗旱性和耐盐性利用拟南芥转基因体系将外源基因导入贤生型拟南芥能有有效的进行目的基因功能验证实验,而且拟南芥生长周期短,基因组研究背景成熟,已是进行基因功能研究的模式桂物。基于成熟的拟南芥转基因转化体系和鉴定体系,本研究选用哥伦比亚型拟南芥为MDC4-GCS£社4705:受体植物,构建植物正义表达载体p3M7y,通过农杆茵介导,将,iWTGCS基因对根系发育目的基因导入拟南芥初步分析了y,种子耐福力,植株锡积一。累量等方面的功能,为进步探讨解析yGCS基因的功能提供理论基础1材料与方法1.1材料’沈’野生型拟南芥(如加1!psbAa&awa);生态型Columbia(Col),在本实验室光照培35 荷花WwyGCT基因克隆、表达及功能验证养箱中培养生长。茵株和质粒:大肠杆菌(怎.co/f)菌株DH5a及农杆苗菌株EHA105aKaRa。购自T,质粒pMDC43由本实验室保存1.2实验方法1.2.1正义表达載体构建二方法同第H章第节1.3.1。122拟..南芥的透传转化首先制备农杆菌感受态,根癌农杆菌感受态的制各见附录六。质粒转化农杆菌转化5MDC4-iV:取U纯化的3nGCS质粒DNA10[p7,加入山农"杆茵感受态,小也混匀;冰浴30min,随后转入液氮冰冻5min,水浴锅中37C水浴5min。再冰浴5min,加入750nlYEB液体培养基,250rpm振荡培养5h。菌液5000rpm离也5min,倒掉部分菌液上清,剰余100jil左右菌液涂布在YEB固体培养基(含’C培‘Kan和Rif抗生素)上。28养2d,挑取单克隆,在YEB液体培养基中28C振’5-荡培养h,然后进行PCR菌液检测。检测正确的菌液加入30%甘油,混匀后置于70C超低温冰箱保存备用。1.2.3拟南芥播种(t-1)将拟南芥种子置于1.5ml离也管中,加1ml75%酒精和0.1%TrionX100振荡15min。(2)倒掉离也管中的酒精,在超净工作台中用无水酒精洗种子2次。(3)直接把种子连同酒精倒在事先灭过菌的滤纸上,滤纸铺在超净工作台上待吹干种子。一(4)将滤纸对折,左手捏着角,右手用摄子轻轻敲击滤纸把种子均匀撒在1/2MS培养基上(为抑制细菌的生长,培养基中加入少许Amp抗生素)。’(5)将培养C冰箱2d。2d基置于4,进行春化后移至光照培养箱中培养,正常光照(16h光培养/8h暗培养)。(6)拟南芥在1/2MS培养基上生长2周后将带有4片真叶的小苗移植到栽培培=-养基(睡石:营养止1:1)中。,W相同的条件培养,毎周繞水12次1.2.4拟南芥转化拟南芥在止壤中大概生长7周左右,主苔长至15cm左右开花旺盛时期可用于转36 第四章荷花M?yGC方基因的功能分析化:,转化时将已经长成的角果剪去。转化步骤如下(1)将之前保存的阳性单克隆农杆菌菌液活化,在H角瓶中加入10mlYEB液体‘an和Rif)28C振hl培养基(含K,荡培养24,取上述菌液5m至250ml新鲜YEB‘液体培养基(含Kan和Rif),28C振荡培养16h,使OD值达到0.8左右。(2)将上述菌液分装在50ml离也管中,5000rm离也20min,弃上清p,用浸染液将沉淀重悬(浸染液:1/2MS液体培养基,5%庶糖,KOH调PH至5.7)。(3)将待浸染的拟南芥植株花朵浸泡在浸染液中,约1min,将植株平放,用保-。h后鲜膜罩在植株上,用于保湿暗培养12h16,取下保鲜膜,将植株放回长日照光照培养箱自然生长。一(4)为提高转化率,在第次浸染后7d进行第二次浸染,依照拟南芥开花情况决定是否进行第H次浸染。(5)常规管理拟南芥,种子成熟则可收获(T1代)。1.2.5拟南齐种子收获转化后大概1个半月后,拟南芥个别角果有发黄现象,则表明种子将成熟,可将角果剪下放在种子袋里干燥。当拟南芥大部分角果都枯黄时,可将植株地上部分剪下’。1.5ml4C。来放在种子袋内干燥待种子完全干燥后,清理干净放在离也管中,保存1.3筛选阳性拟南芥’M将4C保存的收获的T1代拟南芥种子播种在含有潮霉素的1/2S固体培养基上,2播种方法同1.3.2.。一待播种后7d左右可观察到有些拟南芥种子正常萌发并生长,其余的则不能正常生长,那么正常生长的拟南芥即为阳性拟南芥苗。播种15d后,可将阳性苗移植到±中,斑足水,并用保鲜膜覆盖W保湿,7d后取下保鲜膜,将其放置在短日照光照培养箱内正常管理,等待收获T2代种子。1.3.1转基因植株鉴定DNA水平:提取筛选得到的拟南芥总DNA(DNA提取方法见附录走),W总DNA为模板,未转基因野生型拟南芥为阴性对照,利用潮霉素引物和目的基因全长引物进行PCR反应扩増.3.8。,反应体系及程序同第二章1RNA水平:取DNA水平检测到的阳性苗,提取RNA,并反转录成cDNA,WcDNA为模板MDC43-Nn〇CS重组子,WpY质粒为阳性对照,W野生型拟南芥为阴性37 ?荷花M?GCS基因克隆、表达及功能验证y对照。用荷花全长引物和潮霉素引物进行PCR扩増。W拟南芥基-c--因为内参引物(AtAct2F和AtAt2R见表21)检测cDNA的质量。1.3.2转基因拟南芥表达分析W鉴定出的阳性拟南芥为材料,提取RNA,反转录成cDNA,设计荷花iVwGCS基因特异引物,W拟南芥知v4C7W基因为内参,进行巧光定量实验。目的在于选择出表达量高的转基因株系,W便进行后续功能验证实验。1.4荷花WwyGCS基因在拟南芥中功能验证1.4.1根长的比较‘将在4C进行过春化的野生型拟南芥和转基因拟南芥种子播种在1/2MS培养基上,垂直放置在短日照光照培养箱内培养两天,然后在超净工作台上分别将其转移到含有不同浓度領(50^11^1,lOOuM,200^11鸣的1/2?48培养基上,每个培养皿上播种5棵转基因株系和5棵野生型株系,每种浓度设置3个重复,垂直放置生长2周后测量根长,观察表型。1.4.2福胁迫下种子发芽率将收获得到的T3代转基因拟南芥种子和野生型拟南芥种子播种在含有不同浓度領的1/2MS培养基上每个培养皿内分别播种50棵野生型种子和50棵转基因种子,,一同锦浓度设置3次重复。放置在短日照光照培养箱中培养,7d后观察种子萌发情况,并统计发芽率。1.4.3福胁迫下拟南巧植株生长量影响一在含領培养基上生长3周的野生型植株和转基因植株,10个植株为组称量鲜重(包括根,重复3次,比较野生型和转基因植株生长量差异。,茎和叶)1.4.4福胁迫下生理指标变化将在±中正常生长的野生型和转基因拟南芥植株取出,用蒸馈水冲洗干净根须,2+放于含100^\1£(1的蒸馈水中,在处理后011,It3h,6h,12h,2411时取叶片测定SOD含量。每个指标取3株幼苗,H次重复。SOD活性的测定采用氮蓝四嗤(NBT)光化还原法(李合生,2000)。反应液包括50mMpH7.8磯酸缓冲液1.7ml,130mM甲硫氨酸溶液0.3ml,750fiMNBT溶-溶液0液0.3ml,1mMEDTANa2.3ml,20M核黄素溶液0.3ml,酶提取液100,n叫38 第四章荷花AfnGCS基因的功能分析yW磯酸缓冲液替代酶提取液设置一一2个对照管,其中支放置暗处用于调零,另支和其余各样品管于5000lx日光灯下照光反应15min,反应结束后,分别测定各管在560nm波长处的吸光值。W抑制NBT光还原反应50%的酶量为1单位(U)SOD酶活性。****=SOD总活性Ack-Ae0ccW.5AkWV()()(Ack:对照管吸光值,Ae:样品管吸光值,Vt:样品叶总体积,W:样品鲜重,Vc:测量时酶液体积)丙二酸(MDA)含量的测定采用硫代己比妥酸(TBA)比色法(李合生,2000)。S氯石酸(TCA)mrm取0.5g样品,加5%5l,研磨后所得匀浆在室温下4000p离也〇20min。取上清液2ml,力口2ml0.67/〇TBA溶液,混合均匀后沸水浴30min,冷却后一再离也次。分别测定上清液在450nm,532nm和600nm波长处的吸光值,MDA=6x-A-xo浓度(叫".45(A5326〇〇)〇.56A45〇,再算出单位鲜量组织中的MDA含量(牌l/gFW)。每个处理3个重复。2结果与分析2.1转基因拟南芥鉴定提取转基因拟南芥和野生型拟南芥叶片DNA和RNA,用iVwGGS基因特异引物。结果表明(图4-和潮霉素引物进行PC民扩増1)转基因拟南芥植株能够扩增出潮霉素条带和MiyGGS基因特异条带。取1帖RNA反转录为cDNA,稀释30倍,进行巧光定量表达分析。结果表明iVnyGCS基因在转基因拟南芥植株中表达量显著高于野生-。这些结果都证实了荷花型拟南芥(图42)iVwGGS基因已经成功转入拟南芥中。可W进行后续功能验证方面的实验。4-DNA图1转基因拟南巧鉴定F-1DNAidi打iitiltig.4entcatonnransgencanspWTl、1、2、3;潮霉素引物,WT2、4、5、6;特异引物WTl/1/2/3:PrimersofhromcinWT2/4/5/6:SecialrimersofTV巧GCSygy,ppy39 荷花WwGCS基因克隆、表达及功能验证T王一王T王一2T王一3250「丄J2。。咖卽琴I1100Ii巧量s,_。_,j一,■J--WTT11T12T1-34-2图拟南芥中MzGCS表达分析y‘^-ExFii口成巧WW说幻3g.42piessio打analyssofTV巧yGCSin扣化W幻2.2福胁迫下根长比较2+-3由图4可W看出在含Cd培养基上生长14d的拽南芥受矯影响,植株生长受到2+浓度抑制。且随Cd増大,抑制情况不断增强,拟南芥根系生长也受到较大限制。值2+得注意的是,在相同Cd浓度的培养基上,转基因拟南芥植株明显比野生型植株健壮,2+且根长显著长于野生型。随着Cd浓度的増加,转基因植株受領抑制明显小于野生型,对福的耐受力更强,而野生型则出现了生长弱,株型瘦小等现象。在含福培养基上生长45d时,可W看到转基因植株依然生长良好,根系发达,须根数多。而野生型植株。则株型较小,根系瘦弱,须根数少,甚至出现枯黄,死亡的现象图4-3搞胁迫下拟南芥生长情况-wF.//ig43Therothof幻6成ssf片幻/f幻巧幻undercadmiumstressg取40 第四章荷花WnyGCS基因的功能分析2.3福胁迫下发芽率比较将转基因巧南芥和野生型拟南芥种子播种于含福培养基上,7d后观察种子发芽情况。结果发现;转基因拟南芥种子和野生型拟南芥种子萌发情况都受到領影响,且随2+2+d-4)着C浓度的不断増大,种子萌发率越来越低(图4。Cd浓度为0时,萌发率2+在96%左右,在£(1浓度为2001\1时,萌发率降低到60%左右。然而不同的是,[。在相同箱浓度下,转基因拟南芥种子萌发率明显髙于野生型而且,随着領浓度的升高。,转基因拟南芥种子萌发率降低的程度也小于野生型2.4福胁迫下拟南芥植株生长量变化2+一组称量鲜重在含Cd培养基上生长生长3周的拟南芥植株,10株为,重复32+次。对比野生型拟南芥和转基因拟南芥受領影响后生长量差异。结果表明,在含Cd培养基2+上生长的拟南芥植株生长量受锅影响显著,且随着Cd浓度的增加,生长量不断减少(图4 ̄4)。然而不同的是,转基因拟南芥植株较野生型拟南芥生长情况好,即2+相同矯浓度胁迫下,转基因植株生长量比野生型生长量大,随Cd浓度増大,生长量减少幅度较野生型小。100三占———40r寒广丈1^…―830化I三3巧1饼.—§WT—W―器愚喜,如n--一-—TWI吝T.35I40巧-- ̄I20^I…*"■0'—050100200050loo200巧浓度巧浓度CadmiunccH^ntratiQn(|.uno1/l)Cadmiunconce!itration(^mol/1)图4^镜胁迫下拟南芥生长量及发芽率比较-erFcadmressiintiieldofArabidosishalianaundiumst.44Theermaonandtgypg2.5福胁迫下植株内生理指标变化2+Cd胁迫条件下,随着处理时间的延长,野生型拟南芥和转基因拟南芥中抗氧化酶活性(SOD)均有所提高。且24,其中野生型酶活性提高幅度明显大于转基因植株h后,酶活性均大于正常生长条件下的水平。说明铜对植物均产生了影响,对野生型41 荷巧MiGCT基因克隆、表达及功能验证y的伤害大于转基因植株。丙二處(MDA)是衡量细胞膜脂过氧化程度的标尺。实验结2+处理两天后。不同的是,果表明,在Cd,野生型和转基因植株MDA含量均有所升高野生型MDA升高水平较转基因植株高。说明野生型植株受伤害程度大于转基因植株,也从侧面说明了MiGCS基因的功能。y250撕,一.1撕二芳:為S誦12父?^至^中I?*TI-3*Cd香-氏去為朵之一I窒100和了1,脚撕■*巧n.觀言一T含!城i8,miM….———…―…―……巧化.。8乏麵■■!0136122402时间Time伊)时间Time(h)图4 ̄5镜对转基因拟南芥中SOD活性和MDA含量影响F-rDDAilti.45EffectofCdtessonSOactivityandMconcentrationintransencansggp3讨论虽然重金属对植物的生长发育有非常严重的毒害作用一些植物在高浓度重金,但属±壌环境或水体环境中依然能够正常生长,说明植物在长期的进化过程中形成了适应重金属的耐性机制、。福抑制氮的吸收和运输,抑制根系生长。本研究中转基因拟南一定程度的抑制,芥和野生型拟南芥在含領培养基上的根系生长都受到了,但是转基因株系根长仍然长于野生型一,说明转入拟南芥内的iVwGCS基因对于福毒害起到了一Munzu定的减缓作用。这与小麦和黄瓜种子福胁迫实验中得到的结果致(rogluandGeddl,2002)。关于福抑制根系伸长的原因有研究称铺诱导根系产生艺帰,艺稀对细胞有很强的伤害作用(曾翔等,2007),因此根系生长受抑制。还有研究证明領胁迫下植物细胞中核酸含量下降(周青等,1999),这可能也是根系生长受限制的原因之一。种子发芽率也受領影响,随着铜浓度的不断升高,种子发芽率逐渐降低,但是在相同镜浓度下,转基因拟南芥种子的发芽率却明显高于野生型拟南芥。WwGGS基因一定程度的提高对于种子的耐锅能力也有。3+2+锅抑制Fe还原酶活性,导致Fe的缺乏,影响光合作用效率(Alcantaraetal.,1994)。箱还能引起叶片卷曲和缺绿,减少生长量(Aididet址,1992)。本研究在含锅培养皿上播种的拟南芥生长过程中也出现叶片缺绿现象,并且野生型拟南芥缺绿情况42 第四章荷花AM?cy基因的功能分析比转基因拟南芥严重得多一,生长量明显小于转基因植巧,这从方面证明了荷花基因在拟南芥中发挥抵御重金属毒害的作用。锅胁迫能够产生氧化胁迫,然而不同于其他重金属的是,福不是直接作用于氧化产物的产生,例如領能够増强膜脂过氧化,而是抑制参与抗氧化反应的几种酶的活性程度(过氧化物酶,过氧化氨旗,超氧化物歧化酶,谷腕甘肤,降低抗氧化廣的活巧还原酶等)(Gallego巧al.lW6)。锅胁迫巧期,,,芦竹抗氧化能力有増强趋势随着胁迫时间的延长,锅进入植物体内,对植物产生不可逆的伤害,酶活性会随之降低(韩志萍等,2008)。本研究中,锅胁迫1h后,野生型和转基因植株体内,SOD活性均008)急剧増强,且巧生型活性高于转基因株系,韩志萍等(2关于铺胁迫芦竹的研究中3h,在锅胁迫10d左右,SOD活性才开始下降,而本文中胁迫后就开始下降,猜。測可能由于拟南芥株系较小,对箱的忍受能力不如株系较大的芦竹而镜胁迫后,SOD活性变化的趋势却是相同的。野生型植株和转基因植株在锡处理2d后,植株内MDA2006含量均提商,与谭晓荣等()研究領对,说明重金属对植株产生膜脂过氧化伤害一致小麦幼苗的影咱实验中结果。本研究从转基因巧南芥表型和生理指标方面初步证明了iVGC芯基因在耐重金属w一方面的作用步设计试验进行更深入的研究。。关于该基因具体作用的机理尚需进43 全文结论全文结论-1.GCS),基因全长1撕1从荷花中克隆Y谷氨醜半腕氨酸合成酶基因W/iy咕,开放阅读框(ORF)1569bp,编码522个氨基酸,具有GC说基因家族典型结构域。系统进化分析表明荷花yGCS属于双子叶植物类,与龙眼,百脉根亲缘关系较近。2.JVwGCS在荷花各器官均有表达,属组成型基因。各器官表达量商低依次为:嫩叶最苗iV^iGCS,其次叶柄,成熟叶,根须,剑叶,茎最低。锅胁迫下,y在叶片和根部都有咱应?,且高浓度锅能诱导该基因表达水平更高2+3.Cd胁迫下,測定荷花各器官锅积累量,结果表明荷花的根须和叶片是主要的锡积累器官。叶片中锅积累量高迭10001/干重。在根茎中积累量最少80/|68,仅ngg干重。。荷花属超富集植物4.构建了荷花i州减进正义表达载体,并利用基因枪轰击洋葱表皮细胞技术进行定位实验,结果表明iVwGCS莲因定位于细胞质。y一5.利用农巧菌侵染拟南芥花序法输化GCS基因导入拟南芥,获得具有定销抗性y+2的转基因植株。在含Cd培养基上播种野生型和转基因拟南芥种子,比较其发芽率,生长量,根长等表观特征。结果表明转基因株系发芽率窩于野生型,根系生长也比毋生型巧盛2+,生长量大于巧生型。用10011斯:(1处理后,巧生型拟南芥膜脂过氧化程度|大于转基因植株,抗氧化巧活性也高于转基因植株。巧步证明MiyGCS对于財重金属的贡献。45 色J巧之处创新之处1.首次从荷花中克隆得到基因,并利用基因枪技术验证W>iyGCS基因定一位于细胞质中。,与其他方法得到的结果致2一.将荷花WwGCS基因导入拟南芥得到的转基因植株具有定的財锡能力。证明■iV>iyGGS基因在植物抗重金属和水体净化方面的作用,具有研究价值,47 参考文献参考文献AididSB,OkamotoH.Efectsoflead,cadmiumandzincontheelectricmembranepotentialatthexylem/symplastinterfaceandcellelongationofImpatiensbalsamina[J].EnvironmentalandEx?erimentalBotany1992,324:似9448.p,()Alc^taraE,RomeraFJ,CafieteM,etal.Efec技ofheavymetalsonbothinductionand扣nctionofrootFe-111reductaseinFedeficientcucumberCiicumissativusL.lantsJ.JoiunalofExerimental()()p[]pBo-tany,1994451:18931898.,(巧BanuelosQAjwaH,MackeyB,etal.Evaluationofdiferentplantspeciesusedforphytoremediationoflit-highsoilselmuniJ.JournalofEnvironmentalua199726:639646.[]Qy,,BrownSkChaney民L,AngleJS,etal.PhytoremediationpotentialofThlaspicaerulescensand-bladdercampionforzincandcadmium<ontaminatedsoilJ.JournalofEnvironmentalualit[]Qy,-1994236:11511157,()BuchireddyPR?Bricka民MyGentDB.Electrokineticremediationofwoodpreservativecontaminatedsoilcontainingcopper,chromium^andarsenic[J].Journalofhazardousmaterials^2009,162〇):490-497.ChalfieTuY,EuskirchenGetal.Greenfluorescentprotein化amarkerforgenee巧ression[J].-Science1994263巧14.,:802805,巧-nthetaseChenJGoldsbrouPB.Increasedactivitofaimnalutamlcsteinesintomatocells,ghy[g]gyyy巧3-selectedforitolJ.PlatPhsiolo1994106123乂cadmumerance[]nygy,,():ChenTB,WeiC义HuangZC,etal.ArsenichyperaccumulatorPterisvittataL.anditsarsenic-accumulation阴.ChinSciBull*2002,47(11):902905.MM--CobbetCSaJ,HowdenRetal.Thelutathionedeficientcadmiumsensitivemutant,,y,g, ̄-cad2lofArabidosistbalianaisdeficientinlutalcysteinesn1faetaseJ.ThelantlmPJournapygy[],,y199816173-78:,,()CobbettCS.Phytochelatinsanddieirrolesinheavymetaldetoxification[J].Plantphysiology,2000,-1233:825832.()CobbetC,GoldsbroughP.Phytochelatinsandmetallo他oneins:rolesinheavymetaldetoxificationandi-lfltbil20029始.homeostassJ.Annuareviewoanoo巧。:151[]pgy,,)EbbsSD,LasatMM,BradyDJ,etal.Phtoextractionofcadmiumandzincfromacontaminatedy?soil.JournalofEnvironmentalualit1997265:14241430.。Qy,,()49 荷花WwGCS基因克隆、表达及功能验证EllisDR,SaltDE.Plants,seleniumandhumanhealthJ,Currentoinioninlantbiolo,2003,63:[]ppgy()-Tn119.FanX,HeXjGuoX,巧al.In灯easingglutathio打eformatio打byftinctionalexpressio打of化e-lutamlcsteinesnthetaseeneinSaccharomycescerevisiaeJ.Biotechnologyleters2004ygyyyg[],,265415-1:47.()FengR,WeiC,TuS,etal.EffectsofSeontheuptakeofessentialelementsinPterisvittataL[J],Plant-2-andso化20093251:123132.,()'FengT,A化uaP,Binggenetal.WangWenqingDepartmentofBiology,PekingUniversity,Beijing;RaidDeterminationofMetallothioneinbLinearSweePolarorahJ.JournalofInstrumentalpypgpy[]Analysis,1993,5.FresPrJMoxavDNAloAeez.Cttoicitotosisandinitrodamaeinducedbotassium,yy,pp,gypJ-chromate.Toxicologyandaliedharmacolo19991611:7581.[]pppgy,,()i-eneFo:exleCSinhKB.IsolationofaVciafabametallothioneinlikere巧io打infoliary民,ggpmo-trichoraesJ.Pan14444ltlecularbiolo199426:35.[]gy,,()GallegoSM,BenavidesMP,TomaroML.Effectofheavymetalionexcessonsunflowerleaves:rnvovemenoxaveressce-evidencefoiltofidtist?IMantSci畑19961212:1511巧.…,,()-Hem姐zLMGaraadezMMurhATai.etallothioneinsIand2have出stinctbutovedain,py,ppgressnrPan-exP1112ioattensinArabidosis.lthsiolo9988:387397.ppp…ygy,,()GasicK,KorbanSS.TransgenicIndianmustardBrassicauncealantsexressinanArabidosis(j)ppgpphytochelatinsynthaseAtPCSlexhibitenhancedAsandCdtoleranceJ,Plantmolecularbiolo,()[]gy-%92007644:361.,()Winnack-meta-GrillEL5flerStal.Phtelatinsthhlbindintidt,,er巨L,eyoch,eeaveesoflansareygppp,thesfr-snizedomlutathionebaspecificlutamlcsteinedietidyltransetidaseygyygyypppp(phytochelatinsynthase)J.Proceedinsof化eNationalAcademofSciences19818:[]gy,乂%()6838-6842,HaSB,SmithAP,Howden巧al.PhytochelatinsynthasegenesfromArabidopsisandtheyeastSchne-izosaccharomcesombeJ.ThePlantCellOnli1999116:11531163.y,,p[]()A-ndHellR,Bei,GlutamylcsteinesthetaseinhihertltirrtgmannL.yynglans:cataycoeiesasubcellularppp4-localizationJ.Planta1990180:603612.[]^,()e-H化iTNiiHNakatsuTtal.Crstalstructureoflutamlcsteinesnthetase:insihtsi打tothe,,,yygyyygmechanismofcatalsisbakeenzruanehomeoJ.Pryyyymefogltthiostasisoceedinsofthe[]gaAAm2004425052-057NationlcademofSciencesoftheUnitedStatesoferica101:115.y,,()50 参考文献KimD,GustinJL,LahnerB,etal.TheplantCDFfamilymemberTgMTPIfromtheNi/ZnhyperaccumulatorThlaspioesinenseactstoenhanceefluxofZnatthelasmamembranewhenggpexressedTh-1inSaccharomcescerevisiae■ePlantJournal2004392:別725.py…,,()Lane6KaTwhea-z-iokaKenned.ThetermEcroteinis江inccontaininmetallothioneinJ.,jygpg[]-BiitraCellB11101.ochemsiolo987651:01005yndgy,,()LiZS,LuY巧ZhenRQ巧al.Anewpathwayforvacuolarcadmiumsequestratio打inSaccharomycescerevYCFl-runaJnisiae:catalyzedtranspotofbisltathiotocadmium.Proceedisofthe(g)[]gNtA1142-aionalcademofSciences9979447.y,,():LiuZGuCChenFetal.Heteroloousexressio打ofaNelumbonuciferahtochelati口sthaseene,,,gppyyngenhancescadmiumtoleranceinArabidosisthalianaJ,Aliedbiochemistryandbiotechnolop[]ppgy,1122-4202663.:7巧,()L-ivakKJSchmitenTD.Analsisofrelativeeneexressiondatausin巧〇115虹0uantitativePC民,gygpgq-andAACTe-thodJt1252.the2m.Mehods,2004:40408[],()M"aM,LauPS,?FiaYT,etal.Theisolation地dcharacterizationofType1metallothionein(MT)cDNA--"fro田过heavltolerantlantFestuca-lin.巧ati2003411田etarubracvMer…nScence16:560.ypj,,()MaigoshesM,ValleeBL.AcadmiumproteinfromequinekidneycortexJ.JournaloftheAmerican[]-Chemicai.lSocety19577917;48134814,,()MaruesverrvaEDDEDTA-numAOliiaSamadieetal.Sandenhancedzi打caccunmlationbsolaq,j氏yrumaedr—crrrwnnniginocultwi化abus山amycohizalfimgigroicontaminatedso。町Chemoshere200870(6)1-114;0020.p,,MaMJVemouxTS站chez-Fem細dez氏etal.Evidenceforostranscritionalacdvationofy,,pp*-ressProylutamylcysteinesynthetaseduringplantstiesponsesJ,ceedinsoftheNational呂[]gAof12012-12cademSciences99895:049054.y,,()MeagherR.Phytoremediationoftoxicelementalandoi^anicollutantsJ.CurrentOinioninPlantp[]pB-iolo20003巧162:1.gy,,MendezM,Mai灯民?Phytostabilizatio打ofminetailingsinaridandsemiaridenvironments:Anemeiging-remeditEnvirlhPeiv116:272.iatonechnoloJ],onmentalHeatrsectes,2008883gy[p,MunzurogluO,GeckilH.Eflfectsofmetalsonseedgermination,rootelongation,andcoleoptilesandhyocotlrowthinTriticumaestivumandCucumissativusJ.ArchivesofEnvironmentalpyg[]ConmnaT2203-taitionandoxicolo200243:213.gy,,()MurphyA,ZhouJ,GoldsbroughPB,etal.Purificationandimmunologicalidentificationofmne-1snaP7111etallothioins姐d2fromArabidisthalia[J].lantPhysiology,199,34:1293130.叩()51 荷巧MzyGCT基因克隆、表达及功能验证NiedenthalRRilesL,JohnstonMjetal.Greenfluorescentproteinas江markerforeneexressiongpza-andsubcelhilarlocalitioninbuddineast?Yeas199612:773786.g,y…t巧)OrteaTBaea.BiilllriziiJLemleSJaStlochemcaandmoecuarcharacteatonoftransencLotusg,p,gg,gaon-jpicusplantsconstitutivelyoverexpressing过cytosolicglutaminesynthetasegeneJ.?1孤每[]200425-19:807818.,()OrtizDF,KreppelL,SpeiserDM,etal.HeavymetaltoleranceinthefissionyeastKquiresanATP-casse-vacuoarMBObindintetypelmembranetransorter?TheEournal19921110:gp…j,,()3491.z-OrtiDFRuscitiTMcCueKF巧al.TransortofmetalbindinetidesbHMTlafissioneast,,,pgppy,y-evacuomembranrurnarABCtlareotein.JolofBioloicalChemisty19952709:ypptng,,()4 ̄4728巧1.PalmgrenMGClemensS,WilliamsLE,etal.Zincbioforti行cationofcereals:problemsandsonJTr1 ̄lutios.endsinlantscience20083:464473.[],,p巧)PangSZ,DeBoerDL,WanY,etal.Animprovedgree打幻uoresce打tproteingeneasavitalmarkerinan-ltsPhys1:?巧antiolo1996123893900.p…gy,,()P-v2005-D1ilonSmitsE.Phtoreme出ationJ.Annu*Re.PlantBiol.56:53乂CunninhamSBertiWy[],,g,RHuangJW.PhtoremediationofcontaminatedsoilsJ.Trendsinbiotechnolo1995139:,y[]gy,,()-393397.PociechaM,LestanD.UsingelectrocoagulationformetalandchelantseparationfromwashingsolutionafterEDTAleachinofPbZnandCdcontaminatedsoilJ.Journalofhazardoumaterial2010g,[]ss,,-1741:670678.()RamosJ,ClementeM氏NayaL,巧al.PhytochelatinsynthasesofthemodellegumeLotusjaponicus.Asmallmultienefamilwi化diferential巧sonse!:〇cadmiumandalternativelslicedvariantsJ.gypyp[]P2007431-lanthsiolo13:1101118.,,pygy()RamosJ,NayaL,GayM,巧al.Functionalcharacterizationofanunusualphytochelatinsynthase,LPCS3of-545LotusaonicusJ.Planthsiolo20081481:巧6.j,,,jp[]pygy()Rn-nthesJueseerABnmoldC.Effectofcadmiumlutamlcteinesiinmaizeslins.ggg,oygyysyseedg[]巧t428 ̄anPhsiolo1992992433.ygy,,():-SaltDE民aus巧WE.MATPdeendenttransortofhtochelatinsaero巧thetonolastofoatrootsJ.,gpppyp[]Plt-anPhsiolo19%107412931301.ygy,,():SaltDE,Sm地RD,RaskinI.PhytoremediationJ.Annualreviewoflantbiolo,1998,491:[]pgy()643-668.52 参考文献-KNASchaferHJHaaerwerARauschT.cDcloninandexressionanalsisofen货encodinCSH,g,gpygg-mev-stalaccumulatorBrassicauncea.ynthesisinrootsoftheheavyL:eidenceforCdinductionofjau-amtPptativemitochondrialyglutylcsteinesynhetaseisoformJ,lantmolecularbiolo,1998,y[]gy-371:8797.()SekharKC,CharyNS,KamalaCT,巧al.Fractionationstudiesandbioaccumulationof-vronmesedime打tboundheavmetalsinKollemlakebed化le行shJ.EnintInternational2004yy[],,297-8.:1001100()SemaneB,CuypersA,SmeetsK,etal.CadmiumresponsesinArabidopsis化aliana:glutathionemn-metabolis抑datioxidativede佐neestemJ.PhsioloiaPlantarum2007,1巧:519528.巧[]yg,口)SusarlaS,MedinaVF,McCutcheonSC.Phytoremediaticn:anecologicalsolutiontoorganicchemical-tt.conaminaionJEcoilEnin2002185:7.locaeerin,,(64658[]ggg)Teimstedt巧PeiskerD,目6tch巧C,etal.Phytochelatinsynthesisisessentialforthedetoxificatio打ofexcesszincandcontributessignificantltotheaccumulationofzincJ.PlantPhsiolo,2009,y[]ygy-1492938948():.TiwariS,KumariB,SinghS.EvaluationofmetalmobUity/immobilityinflyashinducedbybacterialstrainsisolatedfromtherhizoshericzoneofThalatifoli红rowinonflyashdumsJ.pypggp[]-Bioresourcehnolo:13Tec200899051310.gy,,VajpayeeP,SharmaSC,Tripathi民D,etal.Bioaccum山ationofchromiumand化xicity化hotosyntheticigmentsnitratereductaseactivitandroteincontentofNelumbonuciferapp,yp-aertinJ.Chemoshere1999392:21592169.g[]p,,y)VanderZaalBJ,NeuteboomLW,PinasJE,etal.OverexpressionofanovelArabidopsisgenerelated-man:crareneneadnhancedresandtoputativezintnsportegsfromailscal化ezincistancenPhs-accumulation.Platyiolo1991193:10471056.^]gy,乂()VangronsveldJ,HerzigWeyensN,etal.Phytoremediatio打ofcontaminatedsoilsandgroundwater:Lenvr2009-ssosfrom:7794thefieldJ.EnionmentalScienceandPollutionResearch1665.[],,--V6e.PgliLaneWagnerGJSubcellularLocalizatio打ofCadmiumandCad阳iumBin出打getidesingpT-obaccoLeavesIlicationofaTrartFutirCadiBindinPtidJ.Pltmpiosponconfomumgepes[]anPhs1410-iolo99092861093.ygy,,():WhitelawCA,LeHuquetJA,ThurmanDA,etal.TheisolationandcharacterisationoftypeII-metallothioneinlikeenesfrom化matoLcoersiconesculentumPlantmolecularbiologyg(yp,1997333-515031.,():Wuneecunza-JuTCheStalaandcharacerilunenel.Molrclonitito打ofatamlcsteisthetas,Q,,gy呂yyyenemeanaJ--Pasma235142736.gfroChorisporabung[].rotopl,2009,():53 荷巧W巧基因克隆、表达及功能验证XanJ.uaeirilresmeandamoniOliverDGltthionmetabolcenescoodnateond化heavtlsasicgC,gypyj-acidinArabidosis.ThePlantCellOnline199810:15391550.NoctorArisiACpm,,巧)QJouaninL,巧al.Glutathione:biosynthesis,metabolismandrelationshiptostre巧toleranceexploredB149-intransformedlantsJ.JournalofExerimentalotan,998,321:623647.p[]py()M--Zenk吐Heavymetaldetoxificationinhiherlantsareview[J.Gene1996171:2130.g],,%)pZhangX,XiaH,LiZ,巧al.Pote凸tialoffourforagegrassesinremediationofCdandZ打contaminatediloourceTechnoo2010b101-sosJresl;20632066.Bigy.[],,ZhaoC,XuJ,UQ,etal.Cloningandcharacterizationof过Phramitesaustralishtochelatinsnthasegpyy(P沁C巧andachievingCdtoleranceintallfescue[J]?巧oSone,2014,9(8):el03771.ZhouJ,GoldsbroughPB.Fimctio打alhomologsoffimgalmetallothionei打genesfromArabidopsis[J].-TheantCellOnlin175.Ple994,66:8884,()ZhuP"-itsEAHJouaninLetalnthetaYLonSm.OvereressionoflutathionesseinIndian,,,邱gy-mustardenhancescadmiumaccumulationand:toleranceJ.PlantPhsiolo19991:7380.[]ygy,乂11()ZhuY-EAALPilonSmitHTStl.CadmitlltiiIitis,arun,eaumoeranceandaccumuaonnndanmusards,-PhenhancedboverexressinlutamlcsteinesnthetaseJ.Plantysiolo19991214:ypgygyyy,,[]gy()1169-1177.20071871-1曾乳张玉化王訊荣:665668.,集矯对水稻种子萌发的影响肌应用生态学化,()朱被.生常团结.植物金属硫蛋白研究进展(二)植物MT基因的表达特征及其功能机物技术,通报2002-5:I:5.,()陈吉宝.转PVP5CS1基因拟南芥植株对干旱和盐胁迫的反应.作物学报赵丽英,毛新国,等,,阴20101147-153.():20024>.太湖流域重金属污染亟待重视内.水资源保护:3941.成新,()邓治,刘向红,覃碧,等.己西橡胶树巧听沿S基因克隆及表达分析阴.植物生理学报,2012,-48872.:7778()一丰郑余阳唐娜等.EDTA强化电动修复王壌铅污染J.2008272:方,,,[]农业环境科学学报,,()-612616.J郭静成.砸.西,尹顺平对高等植物中谷化甘化过氧化物酶活性及谷化甘肤含量的影响[]北植物4-学报199818:533537.,,()—郭楠田义文从云南曲靖市络污染事件谈起内-.中国环境公益诉讼的实践障碍及,完善措施环境污染与防治20-13351:%99,,().韩志萍,吕春燕,王趁义,等.箱胁迫对芦竹抗氧化酶活性的影响核农学报,2008,226-:846850,()20091132091-2094胡宏檐铜污染止壤电动修复研究化环境工程学化.,():54 参考文献胡肆慧,陈章龙,陈灵芝,等.凤眼莲等水生植物对重金属污水监测和净化作用的研究m.植物生98-态学与地植物学丛刊,11,5口):187192.黄益宗郝晓伟雷鸣等.重金属污染王壤修复技术及其修复实践机.农业环境科学学报2013,,,,,323-:409417.()孔德政.铅铺和巧胁迫对荷花生理生化的影喃J.2010,裴康康,李永华,等,[]河南农业大学学报,42-407:40.()20-李春化蒋炳化宋丽11277:109111.,掌荷花在园林设计中的应用町中国园艺文撤,()生长发育的影响7-75李德明.重金属对植物J.安徽农业科学2009371:4.,郑昕,张秀娟,,[]()4-J5745746李秀珍.安敏农业科学2008361:2.,李椒重金属对植物生长发育及品质的影响[],,()20-101:270.李战..6268,李坤重金属污染的危害与修复[J]现代农业科技,,427刘万玲.J.安徽农业科学2006316:402640.重金属污染及其对植物生长发育的影响[],,()刘欣梅,项黎新邵健忠,等.重金属诱导细胞调亡的分子机制化细胞生物学杂志,2004,26(3):235-240.柳忠玉庄楚雄等.生书晶.虎杖白黎芦醇合酶基因转化拟南芥的研究机华南理工大学学报:,,,-自然科学版20113951:13838.,,():罗秋香.广西重金属污染监测与防治初探龙江J.广,贺江水污染事件为例[]西师范学院学报20-自然科学板14(1):101104.孟多周立化于常武水体重金属污染现状及治理技术化迁宁化工20063594-:W536.,,,()-曼雅萍刘波等.200631A0111011冯子云.荷花净化水质能力分析m林业调查规划,:2.,,,,()彭凌涛,王江,李琳,等.水稻谷氨酷半化氨酸合成酶基因的结构和表达分析山.植物生理与分子生物学学报20043055-5:巧40.,,()201341146425-6426时圣刚..重金属对环境与人体健康影响浅议[J].安徽农业科学,,():孙琴,王晓蓉,Tdb明.超积累植物吸收重金属的根际效应研究进展[J].生态学杂志,2005,24(1):-3036.谭晓荣,戴媛,李欢庆,等.重金属領对小麦幼苗生物大分子损伤的研究J.安徽农业科学,2006,[]"34174227.:42巧()汤惠华,杨涛,胡宏友,等.領对花郁菜光合作用的影响及其在亚细胞中的分布饥[J.园艺学报,]2008-%9:11巧12%.,()-麻密41.王剑!H.植物修复的生物学机制町植物学通报2000176:5050,,,()一韦朝化陈同银黄泽瓷掌大叶井口边草一种新发现的富集神的植物化生态学化200222,(-5):777778.邢浩然刘丽氣刘国振植物蛋白质的亚细胞定位研究进展化华北农学报20062-1S2:16.,,()55 荷花W巧GCS基因克隆、表达及功能验证熊愈辉,杨肖娥.領对植物毒害与植物耐锡机理研究进展[化安徵农业科学,2006,34(1巧;-29692971.徐明岗.,刘平宋正国,等施Jim污染±壤中重金属行为影响的研究进展[孔农业环境科学学报,,-2006251:328333.,()-于晓莉.〇12126.,刘强水体重金属污染及其对人体健康影响的研究化绿色科技,2011U):3—周启星.重金属CdZn对水稻的复合污染和生态效应m.应用生态学报44:吴燕玉,199,5,()438-441.彭方晴--周青.LaGl物对Cd伤害小白菜的影巧化环境科学,1999,209194.,黄晓华,y配合(化左青,段玉蜜,陈立杰,等.蛋白质亚细胞定位方法在植物病理学研究中的应用化中国植物病理学会20。年学术年会论文集20".56 m录附录附录一RNA提取方法试剂准备:-无水乙醇,P琉基古醇,RNasefieeH2〇,RNA快速提取试剂盒药品。实验揉作:原平惟RNA快速提取试剂盒操作步骤;1.取500i裂解液RLT(已经加入护琉基玄醇)于1.5ml离也管中,再加入50p叫PLANTaid混合均匀备用。2.将50mg样品在玻巧研律中用液氮研磨成细粉后,转入上述加有RLT和PLANTaid的离也管中,立即振荡20s,使组织充分裂解。-312000i也5…。.将裂解物分钟pm离,取上清液至新离也管中4一.较精确估升上清液体积,加入上清体积半体积的无水乙醇,此时可能出现沉淀。,吹打均匀一5.将混合物加入个吸附柱RA中,吸附柱放入收集管中,12000rpm离也1min,奔掉巧液。6.加700i去蛋白液RW1,室温放置2min,12000i离也30s,弃掉滤液。ppm一7.加入5001RW,12000i,离也3〇8,弃掉滤液。^漂洗液pm,此步骤重复次8.将吸附柱RA放回空收集管中12000im离也2min,p,尽量去除漂洗液,避免漂洗液中残余酒精影巧下游反应。一9-.去除吸附柱RA,放入个RNasefree离也管中,加入3050叫RNaseflee也0,室温放置2m1min.min,12000rp离也57 荷花AfriyGCy基因克隆、表达及功能验证附录二目的片段的纯化回收(AgaroseGelDNAPurificationKit,TaKaRa)1.取巧HiPCR扩増反应液进行琼脂糖凝胶电泳(根据目的片段大小配置凝胶浓度),在恒电压条件下电泳15min左右。紫外灯下切下含目的片段的琼脂糖胶块,较精确切取胶块il便提高DNA回收率。(注:切胶时尽量减少DNA暴露在紫外灯下,!^的时间,避免DNA突变损伤)。=2.把胶块放入1.5ml离也管中,称量胶块重量,计算胶块体积(lmgl叫)。义向胶块中加入3倍凝胶体积的DR-I。Bufer4.均匀海合后,放在75r烘箱加热融化胶块,间断振荡至胶块充分酷化。5-ufer/-r.向上述强化液中加入DRIB体积量12的DRnBufe,均匀海合。当分离片段小于400咕时。,应向此溶液中再加入少量的异丙醇6.将试剂盒中的SpinCohram安置于CoUectioiiTube上。7.将上述操作5中的溶液转移至SinColumn中00rmmin。弃滤。p,120p离也1液(将滤液加入SpinColumn中离也两次,提高回收率)。8.将500片1的RinseA加入SpinColumn中,12000rpm离也30s,弃滤液。9.将700jil的RinseB加入SpinColumn中,12000rpm离也30s,弃滤液。10.重复操作步骤9。11.将SpinColumn安置于新的1.5ml离也管上,在SpinCohimn膜的中央处加入巧il的ddH20或Bufr,室温静置1min。:BuferfElutione(法把ddH2〇或因地on加热至60C,有利于提商洗脱率)。12.12000rpm离也1min洗脱。58 附录附录HTaKaRainiBestDNAFramentPurificationKitVer3.0纯化Mg试剂盒一1.向cDNA第链反应液中加入5倍量的BuferDC(如果需加入的BuferDC量不足100叫时应加入100叫),然后均匀混合。2.将试剂念中的SpinColumn安置于CollectionTube上。上述操作1中的溶液转移至SpinColumn中,室温12000rpm离也1min,弃滤液。3.将700jil的BuferWB加入SpinColumn中,室温12000wm离也30S,弃滤一液。此步骤重复次。4i.将SinColumn置于Collectionube口000rmmn〇p安T上,室温p离也15.将SpinColumn安置于新的1.5ml的离也管上,在SpinColumn膜的中央处加入30的灭菌水或ElutionBufer,室温静置1min。6.室温12000rpm离也1n血洗脱DNA。附录四质粒提取方法?1.大肠杆菌的培养:从平板培养基上挑选单菌落接种至14ml的含有抗生素的°液体培养基中,37C过夜培养。*2.取14ml的过夜培养菌液,12000rpm离也2min,弃上清。3.用250山的SolutionI(含RNaseAl)充分悬浮细菌沉淀。?4.加入250i的SoII56次Hlution控轻地上下翻转混合,使菌体充分裂解,形一3m成透明溶液。此步骤时间不宜过长,般不超过in。‘?5.加入400^U4C预冷的So山tion田,轻轻上下翻转混合68次,直至形成现白色凝集块12000rm离也10min。,然后室温静置2min。然后室温p,取上清6.将试剂盒中的SpinColumn安置于CollectionTube上。上述操作5的上清液转移至SpinColumn中,12000rpm离也1min,弃滤液。7.将500叫的RinseA加入SpinColumn中,12000rpm离也30s,弃滤液。8.将700jil的RinseB加入SpinColumn中,12000rpm离也30s,弃滤液。注意确认RseB一in中已经加入了指定体积100%无水乙醇。此步骤重复次。9.将SpinColumn安置于CollectionTube上,12000rpm离也1min。10.将SpinColumn安置于新的1.5ml的离也管上,在SpinColumn膜的中央处加60叫的ElutionBufer或灭茵蒸馈水,室温静置1min。将加入的灭菌蒸馈水加热’C60使用有利于提高洗脱效率。11.口000rpm离也1min洗脱DNA。59 荷花ATBGCy基因克巧、表达及功能验证y附录五质粒DNA的金汾包埋及基因枪轰击技术(1)在1.5ml离也管中加入5mg^粉,加入1ml70%乙醇,祸旋5min,静置15min;(2)10000rm离也5min,去除上清;pin-(3)加入1ml无菌水,锅旋1m,离也1min,去上清,重复步骤34化金粉预处理完成;(4)在1.51111离也管中加入拭下试剂20片1金粉,41质粒,202.5MCaCl2(现^£叫配现用),SulO.lMSE精胺。一?-(注:DNA浓度控制在lug/叫左右因亚精胺容易降解,般在20r冰箱中冻存。)(5)冰浴20min,间歇祸蔽加入80pi无水乙醇,13000g离也20s,去上清;-m离也20(6)加2030i无水己醇,剧烈锅旋,加无水立醇至2001,13000rs,p片p去上清-3,重复此步骤2次;(7)加811无水乙醇重悬后吸至载物片上,使乙醇挥发后进行基因枪轰击洋葱表^皮细胞;816-24h()基因枪轰击后暗培养,于巧光体视显微镜下寻找含有炎光信号的细施,然后再在激光共聚焦显微镜拍摄。饼 附录附录六农巧菌感受态制备方法(1)从含50/mlRif的YEB平板上挑取农杆菌单菌落,接种于5mlYEB液体Mg-培养基(含SOpg/mlRif),200rpm,28C倒置培养l2d。(2)取2ml过夜培养菌液接种到YEB培养液中,200rpm,28C培养至OD6000-为.50.6。(3)农杆菌菌液冰浴30min,转移到50ml离也管中预先冷却。"(4)4C,5000rpm离也10min,细菌用2ml20mmol/L的氯化巧溶液重新悬-80浮。将菌液分装至每个离也管200阵在液氮中速冻1分钟,r保存。附录毛DNA提取方法1.,1.5I。取巧南芥缴叶于玻巧研体中加入ml提取液,研磨充分2.将研磨充分的混合物转移到1.5ml离也管,离也12000ipm,4。5min。3.倒去上清蔽加入提取液1300pi,提取液11300^1,振荡悬浮,牵入5%+二?换基肌氨酸巧120叫,水浴(65。10min)。4.加入氯仿异戊醇(24:1)600pi,振荡抽提15min,离也12000rpm,室温,5min。5.吸取上清液600pi至新的1.5ml离也管中,加入异丙醇600阵用手轻轻振荡,DNA开始沉淀,静置5min,离也12000im,4。5min。p6-1.倒去上清液,在超净工作台吹干50%1£溶解,2〇〇保存。后,加入111[DNA提取试剂配制:提取液I(100ml):0.35M山梨醇山梨醇6.巧g-0-l.1MTrisHClIMTrisHCl10m0.005MEDIA0.25MEDTA2ml■-lOmMP琉基乙醇P琉基乙醇70叫加化2〇至1〇〇1111提取液n(100ml):Tris-HC-l(0.2M)TrisHCl(IM)20mlEDTA(5mM)EDTA(0.25M)20mlNaCl(2.0M)NaCl11.7gCTAB(2%)CTAB2.0gPH7.5withHCl加姐必至100ml5%十二烧基肌気巧钥:5g十二烧基肌気觀+100ml姐2〇61 发表论文发表论文-GCS的克)荷花Y谷氨巧半脫氨酸合成庚Wwy隆及表法分析.(审稿阶段的 致谢致谢本论文在导师悉也指导下完成,衷必感谢刘兆磊教授。转眼间我己完成了S年了硕±学习生活,。感谢H年中刘老师对我的淳淳教诲做人做事的道理。对我学习、试验的认真指导。导师严谨的治学态度、敏捷的科研思维、渊博的学术知识、谦逊的人格魅力都深巧地感染着我,令我获益匪浅,终身受用。导师先做人再做事的教导尤在耳畔。在此答辩之际,特向导师表示最崇髙的!敬意和由衷的感谢特别感谢植物园顾春笑师兄对我极大的帮助,从最初实验入手到投稿论文的修改,顾师兄认真指导,关屯实验进展,并给予帮助和建议。感谢陈发様、房伟民、蒋甲福、陈素梅、滕年军、管志勇、张飞、赵爽和廖园等各位老师,恩师们严谨的科研态度和极大的工作热情都感染了我,受益匪浅,感谢老师们H年里对我的关必和帮助,我才能顺利完成学业。一一感谢菊花实验室这个大家庭,不仅教会了我系列实验技能和专业知识,更营造了个积极、团结、快乐的氛围,让我深感亲切和温馨。感谢王海滨、宋爱萍、高日、董斌、孙海楠,张壞、李样志、李会云、任丽萍、孙静、李佩玲、高妓妓、齐香玉、王银杰、李丕譬、王宏辉、王楚楚、朱巧!、赵瑞霜等师兄师姐们的实验指导和生活上给予的帮助和照顾特别感谢王海滨师兄、高曰师兄、齐香玉师姐、任丽萍师姐、高娇娇师姐在实验上的耐也指导和帮助。感谢李针针、刘凉琴、张乃元、谭素娥、刘亚楠、种昕冉、盛丽萍、吴丹、程培蕾、曹沛沛、王凯能、费江松、赵楠、一封统等师弟师妹们共同陪伴的欢乐实验过程,你们的到来给实验室这个大家庭注入了新的活力。感谢金诗媛、卢媛、施晓梦、施旭丽、何臻、张晓雪、刘晨、郑晨、王萃钻、展妍丽、开玉莖、陈晓婷,张婷、许冰冰、陈攀红、张兆和等同届同学和舍友黄谣巧、王凡、陈丹丹在实验和一生活中给予的帮助和支持,特别感谢张婷,起、刘晨、张晓雪、王凡对我实验的特别帮助我们努力奋斗的日子将成为我最美好的回忆。感谢艺莲苑T跃生老师在荷花种桂方面给予指导和帮助,锁石村菊花基地的各位叔叔阿姨,感谢你们在实验过程中给我的帮助。一最后深深的感谢我最亲爱的家人,感谢你们直W来对我的支持、理解W及关也,是你们给!予我物质上和精神上的支持,从而给我无限的力量和勇气,这是我最大的人生财富,谢谢你们在我求学路上,,我很感激,很幸福这么多人帮助我、关也我。张阿慧2015年5月于南京农业大学.65

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文

此文档下载收益归作者所有

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文
温馨提示:
1. 部分包含数学公式或PPT动画的文件,查看预览时可能会显示错乱或异常,文件下载后无此问题,请放心下载。
2. 本文档由用户上传,版权归属用户,天天文库负责整理代发布。如果您对本文档版权有争议请及时联系客服。
3. 下载前请仔细阅读文档内容,确认文档内容符合您的需求后进行下载,若出现内容与标题不符可向本站投诉处理。
4. 下载文档时可能由于网络波动等原因无法下载或下载错误,付费完成后未能成功下载的用户请联系客服处理。
关闭