金线莲离体快繁及植株再生

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1、江西林业科技2012年第1期金线莲离体快繁及植株再生戴小英，朱恒，宋晓琛-，江香梅(1．、江西省林业科学院·江西省植物生物技术重点实验室，江西南昌330013；2．上饶市林业科学研究所，江西上饶334000)摘要：以金线莲野生植株茎段为外植体，在无菌系建立、增殖和生根培养时进行了适宜培养基的筛选试验，结果表明：以Ms为诱导培养基建立无菌系效果较好；以MS+KT1．0mCL(单位下同)+IAA0．2mg／L+0．15％活性炭能有效增殖，匍匐茎节部白色芽点多，易生成片状丛生芽块；在1／2MS+IAA2．0+0．15％活性炭的培养基上生根率达9

2、5％以上。同时开展了组培苗移栽试验，以泥炭土：腐殖土：蛭石=1：1：1配比为组培苗移栽适宜基质，在可控的设施环境下或透光度50％左右的林下移栽，成活率达87．6％。关键词：金线莲；茎段；组培快繁；植株再生分类号：$567．239：Q813．12：Q949．718．43文献标识码：A文章编号：1006—2505(2012)01—0025—03金线莲noectochilusroxburghii)为兰科开唇兰属1．2试验方法多年生草本植物，别名金线兰、金丝草、树草莲、金钱仔1．2．1无菌系建立。将野生金线莲剪去叶片和顶端部草、金线虎头蕉、金线入

3、骨消等。通常生长在荫蔽阔叶位，用清洗液进行表面清洗后，剪成1～2cm长的带节林下的肥沃腐叶土中，是我国传统的珍贵药材，其全草茎段，流水冲洗2h左右，置超净工作台上，先用75％均可人药，有清凉解毒、滋阴降火、消炎止痛的功效，且的酒精消毒30s，再用0．1％的HgC1：(滴加1～2滴吐温无毒副作用，在民间素有“药王”的美誉『1-21。大量文献20)灭菌5～6min后，用无菌水冲洗5~6次后，待用。资料报道，金线莲中含有生物碱、皂甙、甾体、微量元1．2．2诱导培养基本培养基筛选。诱导培养采用MS、素、氨基酸、糖类及维生素等成分，为滋补养生良1／

4、2MS、B5、WPM为基本培养基进行筛选试验，每种培品。此外，金线莲植株高8～20cm，株型小巧，叶型优养基接种3O瓶，每瓶接种一个外植体，30d后统计诱美，叶脉金黄色、呈网状排列，又是观赏价值极高的室导培养结果。内观叶珍品[51。然而由于金线莲种子小，种胚发育不全，1．2．3增殖培养基筛选。以MS为基本培养基，以BA、自然繁殖率低，加之生长缓慢[6]而近年来市场需求却猛KT、IAA3种激素不同浓度及其配比进行增殖培养基增，大量人为采挖已使其野生资源日渐枯竭，自然生境设计，共设计了9种配方，分别为：①～③：BAO．5～2．0也受到严重破坏

5、同。以人工繁育促天然保护是既利用金+IAA0．21．0；④⑥：BA0．5～2．0+KT0．5～1．0+IAA线莲又保护金线莲的基本法则。研究表明，金线莲组培0．2—1．O；⑦一(：KT0．5～3．0+IAA0．2～0．5。苗提取物具有明显的降血糖作用罔，因此，采用组培繁1．2．4生根培养基筛选。当增殖苗无根植株长至3～4节育的方式进行金线莲的规模化快速繁育，对金线莲的(4～5片叶)高时，用于进行生根培养试验，生根培养基开发利用和资源保存都具有重要意义。本研究以金莲设计为：①～③：112MS+NAA0．1O．5；④一⑥：112线野生植株茎段

6、为外植体，建立了其组培高效繁育体MS+IAA0．5～3．0；⑦～⑨：112MS+IBAO．5～2．O；⑩一◎：系，为金线莲的组培规模化生产奠定了较好的物质和1／2MS+NAA0．1～0．5+IAA0．5—1．0；⑩一⑩：112MS+技术基础。NAA0．1～0．5+IBA0．1—1．0以上培养基均加入0．15％1试验材料与方法的活性炭，7．0g／L的卡拉胶，30g／L的蔗糖，培养温度1．1试验材料24—25℃，光照强度1200lx，光照时间12h／d。15d后本试验所用材料采自江西省九连山国家级自然保统计试验结果。护区野生金线莲。1．2．5

7、移栽。金线莲移栽基质要求疏松、透气、排水和保收稿日期：2011-11-07；2011-12—16修回基金项目：本研究为江西省财政重大科技专项“杏香兔耳风等森林药材GAP种植技术及产业化开发”的研发内容之一。作者简介：戴小英，女，工程师，从事植物组培繁育等工作。通信作者·25·水性能良好，因此选择以下4种基质进行复合筛选试素。验：①泥炭土：腐殖土：蛭石=l：1：l；②泥炭土：草木灰=3：观测还发现，金线莲增殖周期约为40d左右。时1；③蛭石：泥炭土=1：1；(蛭石：腐殖土=1：1。问过长，随着芽体不停地长大，植株生长空问不够，易移栽床设在鹅

8、掌楸林下，郁闭度约60％，树行间造成植株叶边缘出现黄化现象，基部丛生芽也会因生做床，将装好移栽基质的营养杯放置床上。移栽前，移长不良而发白死亡。栽基质用百菌清600倍稀释喷洒消毒后再用营养杯装