《标本采集和送检》PPT课件

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1、标本采集和送检规范化要求2013.6正确的标本采集、运送、保存的重要性“对质量不合格的标本进行检测不如不进行检测。”这是一条非常重要的原则。对于保证实验室的工作质量至关重要。保持标本自然状态，才能保证检验质量。它是分析前的重要质量指标，只有高度重视标本质量（标本采集的每个环节），才能实现得到及时的、准确的检验结果和缩短诊治周期的目的(TATturnaroundtime).标本的采集通常是由医生和护士执行的。临床标本的正确采集在检验的全部过程中是最重要的一环，它涉及病人的准备、标本的采集、选用、处理、运送等，这

2、样一个分析前过程。患者准备：1.患者的年龄、性别、种族称之为固定生物因素，通过建立相应参考区间加以解决；2.患者的状态、饮食、药物称之为非固定生物因素，对这些可变的生物因素不加以控制，结果可能会出现很大偏差，从而导致错误的判断。3.采血前，患者应处于平静状态，不能运动，不能处于激动或恐惧状态，不能受过冷或过热刺激。4.采血前禁食8-12h，但禁食不能超过24h；例如胆红素空腹48h可增加240%，血糖偏低；一般要求晚饭后禁食，次日清晨采血。5.吸烟饮酒对检验结果都有影响；6.药物的药理学或毒理学的作用引起生理、

3、生化、病理的变化，从而影响检验结果；有些药物的物理化学性质与标本中某些成分作用，或者与试剂发生反应，或者药物本身带有颜色影响比色反应，从而影响检验结果。7.体位变化也影响检验结果。从卧位到坐位或站位时，水分从血液向组织间隙移动，导致大分子物质蛋白质假性增高。标本采集1.把握时机：血液中许多成分在一天中会出现周期性生理变化，如胆红素、铁清晨最高；生长激素入睡后出现短时高峰；血浆蛋白在夜间降低；心肌标志物cTnT、cTnI在发病后3h开始升高，1-2周逐渐恢复，采血时机4-6h为宜。此外，还应考虑到饮食、患者状态、

4、用药、输液等情况，一般在早晨空腹、安静状态、用药和输液前采集标本。2.选择适当容器：根据项目需要选择相应的促凝管或抗凝管，适当的混匀等；3.止血带时间：不宜超过2min，禁止用力在采血部位拍打，穿刺后患者不要握拳，皮肤消毒后，用干棉签擦干再行穿刺，静脉穿刺要求一次成功，避免同一部位反复穿刺。4.唯一性标志：建立申请单与标本容器的唯一对应标识。5.送检：要及时、避免污染。细菌培养标本采集和送检标本管理的安全提示标本的采集、运送和处理应在无菌操作和/或防止污染的原则下进行。已采集的原始标本都应置于防漏、密封的容器中

5、运送，并有条形码标识。带针头的注射器运送标本时，用无菌试管或其他防护装置套住注射针，再置于防漏塑料袋中运送。一、血培养标本的采集和送检1.采血时机：最好在发热期间，以正在发冷发热时为宜，最佳条件是在抗菌治疗前。2.采血次数及间隔：在急性发热性疾病和急性化脓性疾病时，需要马上用抗菌素治疗或需要紧急手术治疗的患者，应立即从两臂分别取1份标本。对感染性心内膜炎患者24h内取血3次，每次间隔≥30分钟，必要时次日在做2次。对发热不明的两次抽血间隔≥60min，必要时24~48h后再抽血2次。据统计1次抽血阳性率10.8

6、%，2此抽血阳性率14.8%。3.采血部位：多次采血应在不同部位，一是避免污染，二是在不同部位取血，2次分离出同样菌种才是确定病原菌的有力证据。4.采血量：成人10ml；儿童5ml；婴幼儿2ml；5.无菌操作：从皮肤消毒、标本采集、运送、分离各环节都要严格无菌操作，避免污染。用头皮针抽血时，应更换针头再将血注入培养瓶。6.送检：在20℃室温下存放不应超过2小时，要求在低室温下要及时送检。二、痰培养标本的采集和送检1.标本采集：要求患者清晨留取，先用清水漱口三次，之后用力自然咳出。2.标本运送：标本直接吐在专用痰

7、盒内立即送检，最好在20min内送达细菌室。3.标本质量：显微镜涂片检查1~3类为唾液不做培养，重留标本；4~5类为合格标本；6类为气管穿刺液，如未见到WBC，而扁平上皮>10/LP，也应重新留取标本。分类白细胞/扁平上皮细胞白细胞扁平上皮细胞6<25<255>25<104>2510~253>25>25210~25>251<10>254.显微镜检查初步报告：在对标本质量检查的同时，可以作出初步病原学参考诊断，如革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌、球菌或杆菌等。5.分离培养：最好接种三种培养基，即血琼脂培养基、巧克力琼脂

8、培养基、麦康凯琼脂培养基（中国篮）。6.特殊要求的作特殊处理：如抗酸染色等。三、尿培养标本的采集和送检1.标本采集的基本要求：在应用抗菌素之前或停药5d以上；尿液应在膀胱停留6—8h以上；留取标本次数不能少于3次；留取标本必须保持清洁，不能有任何外部污染；留尿的方法：清洁排尿法、膀胱穿刺法、导尿法、肾盂穿刺法等。（1）清洁排尿法：是最常用的方法，也是最易造成假阳性的方法，有很多注意事项