家兔胃酸分泌的调节

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1、家兔胃液分泌的调节一、实验目的本实验采用麻醉状态下家兔灌流方法，测定胃酸排除量，观察各种因素对胃酸分泌的影响并掌握其作用途径。二、实验原理胃粘膜有许多腺体。胃底和胃体粘膜的腺体分泌胃蛋白酶和盐酸，一般所称的胃液，就是指这部分液体。在一般情况下，胃液的分泌受神经与体液的调节。胃液中主要成分是盐酸（胃酸）和胃蛋白酶，进行胃酸测量，可以了解胃的消化腺的分泌情况。在正常生理情况下，胃酸的分泌处于相对稳定的状态。这是神经和体液多种因素中促进分泌的因素与抑制分泌的因素之间协同作用的结果。胃受交感神经和副交感神经的共同支配。交感神经的作用是抑制胃的兴奋，减少胃酸的分泌，抑制胃的运动。副交感神

2、经对胃的运动和胃酸的分泌起兴奋作用。交感神经来自腹腔神经节，去甲肾上腺素是支配胃的交感神经节后纤维释放的神经递质。乙酰胆碱是支配胃的迷走神经节后纤维释放的神经递质，可直接作用于壁细胞上的M3受体，引起胃酸的分泌，还可以促进释放组胺和促胃泌素间接增加胃酸的分泌。去甲肾上腺素、乙酰胆碱都是通过与其特异性受体结合而进行胃酸分泌调节。阿托品能竞争性拮抗M胆碱受体，酚妥拉明能竞争性地阻断α受体。本实验通过阻断相应的受体，观察胃液分泌的变化。三、实验器材与药品兔手术台，哺乳动物手术器械1套，食管插管，气管插管，幽门插管，静脉插管，三通管，输液架，输液瓶及输液管，微量滴管，三角瓶，棉签，缝合

3、针及缝合线，有色丝线，注射器（20ml）及针头，一次性使用外周神经丛刺激针，生理盐水，1g/L阿托品，10g/L酚妥拉明，20%乌拉坦，0.01mol/LNaOH溶液，1%酚红。四、实验对象取经12h禁食不禁水的家兔一只，体重2.0～3.0kg，雌雄不拘。五、实验步骤与观察项目1、手术操作（1）麻醉与固定：家兔称重，耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦溶液5ml/kg，注射时应密切观察动物的肌张力、心跳、呼吸、瞳孔大小和角膜反射、皮肤夹捏的疼痛反应等。麻醉完将动物仰卧固定于手术台上，注意颈部要放正。（2）气管插管：剪去颈部的毛，自甲状软骨到胸骨上方沿正中线切开皮肤及皮下组织（切口长5～

4、7cm），分离皮下组织和肌肉，暴露气管，气管下方穿线，在甲状软骨下方的气管上做一倒“T”形切口，插入气管插管后结扎固定。（3）右颈外静脉插管：将气管两旁的肌肉拉开，用左手拇指和食指捏住颈部左侧缘皮肤切口，其余三指从皮肤外向上顶起外翻，可清晰的看见位于颈部皮下，胸骨乳突肌外缘的颈外静脉。沿血管走向，用玻璃分针钝性分离颈外静脉二侧的皮下筋膜，仔细分离3～5cm长，在血管的远心端穿丝线，在靠近锁骨端用动脉夹夹闭颈外静脉的近心端，待血管内血液充盈后用手术线结扎颈外静脉的远心端。靠远心端结扎线处用眼科剪向心方向呈45o角在静脉上剪一“V”型小口（约为管径的1/3或1/2），用弯型眼科镊挑

5、起血管切口，向心插入导管2.5cm。用线将血管和插管结扎在一起，此线在导管固定处打一活结，绕导管二圈打结固定。缓慢输生理盐水，以维持体液量。注意插管前应排空管道中气泡，插管前端须安置三通管供注射药物。（4）食管插管：钝性分离气管下方的食管（切勿损伤颈部神经），剪开食管并插入食管插管至胃，用丝线固定食管插管。（5）幽门插管：沿剑突下方正中线切开腹部皮肤肌肉（切口长约2cm，打开腹腔，轻轻拉出十二指肠），在距胃幽门约1.5cm处结扎十二指肠幽门端的丝线，打一个松结备用。在两线之间剪开十二指肠，并将幽门插管插入胃内，立即结扎固定，尽量不要用插管刺激胃壁。（6）用手指轻轻触摸胃，检查胃

6、内是否有食物残渣，若胃内有固体物，则要在胃大弯侧切开胃体，取出胃内食物团，并用蘸有温热生理盐水的棉签将胃内食物残渣清除干净，然后缝合胃切口。（7）用少许37℃生理盐水从食管插管注入胃内，用手指轻压胃体，观察幽门插管出口是否通畅、流出液有无食物残渣和血液，如出口通畅即手术成功。（8）分离腹腔神经节和迷走神经，分离后分别在各神经节下方穿不同颜色的线以备用。（9）将家兔体位由仰卧位改为侧卧位，在手术后20～30min后开始测定胃酸分泌情况。2、观察项目（1）用注射器将37℃生理盐水10ml从食管插管注入胃内，同时用三角瓶收集幽门插管流出的液体，每10min注入一次并收集样品。在每个样

7、品中加入酚红1~2滴，用0.01mol/LNaOH溶液滴定至刚好变色，按下式即可计算出每10min胃酸排出量：10min胃酸排出量（μmol/10min）=中和胃酸用去NaOH量（ml）×浓度（mol/L）×10（2）基础胃酸分泌量测定：收集并测定3个以上胃酸样品，待连续3个样品数值接近后，即可进行下列实验。（3）连续收集5个样品并测定其排酸量作为实验对照，再静脉推注1g/L的阿托品0.1ml/kg，连续收集5个样品，测定其胃酸排出量。（4）在收集对照样品后，静脉推注10g/L酚妥拉明0.1