2019家兔失血性休克实验报告

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1、家兔失血性休克实验报告　　病理生理实验报告——　　家兔失血性休克　　——20XX302280083潘晴　　【实验目的】　　1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型；2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变；3、了解失血性休克的治疗，探讨失血性休克的发病机理及救治措施。　　【实验原理】　　休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。　　休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组

2、织有效血液灌流量不足，即休克的发生。　　根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期；休克期；休克晚期。但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。　　对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。　　【实验对象】　　家兔　　【实验器材】　　BL-420生物机能实验系统手术器械、输液装置、尿量测定装置、量筒、注射器、针头、20%乌拉坦、1%肝素、1%NA、生理盐水。　　【观察指标】　　动脉血压　　mmHg中心静脉压　　c

3、mH2O呼吸　　频率、幅度尿量　　ml/10min　　【实验步骤】　　1、称重麻醉:;　　2、固定备皮:仰卧固定，颈部和腹部剪毛备皮;　　3、血管分离:颈部正中切口，分离右侧颈外V和左侧颈总A，穿双线备用;4、荷包缝合:切口部位：下腹部耻骨联合上方3-5cm内，正中切口;5、肝素抗凝:排净空气，尽量靠近远心端，回抽有血;了6、血管插管:结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同;　　7、呼吸装置:胸腹部正中皮肤呼吸最明显处，穿单线固定，并连于张力传感器;8、　　第一次记录9、复制休克　　第二次记录10、注射NA　　第三次记录11、静脉补液　　第四次记录　　【注意事项】　　

4、1、麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛，可致神经源性休克；过深则抑制呼吸。2、牵拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。　　3、动、静脉导管，事先用肝素充盈，排除空气。导管插入后，再推入少量的肝素抗凝，防止导管前端堵塞；静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。　　4、血管插管时，结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同：颈外V：先夹闭近心端，后结扎远心端，插入4-5cm；颈总A：先结扎远心端，后夹闭近心端，插入2-4cm。剪口部位尽量靠近远心端，成45度角朝向近心端剪开小口，约为管径的1/3-2/3，插管方向朝向近心端。　　5、输液时应

5、注意三通管的使用，输液装置只能单向与静脉导管相通，不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时，需关闭输液通道，使换能器与静脉导管单向相通。　　6、第一次实验记录：动物稳定10min后，记录正常状态下；　　7、第二次实验记录：颈总A插管的三通开关处断续放血，血压维持于40mmHg左右20-30min，建立失血性休克模型。每放血10ml即关闭开关，监测BP变化；血压维持于40mmHg时，观察并记录上述指标变化。　　8、第三次实验记录：休克动物的抢救措施一：耳缘V缓注1%NA，观察并记录上述指标变化　　9、第四次实验记录：休克动物的抢救二：静脉输入生理盐水，输液速度-

6、--40-60滴/分，输液总量---约为失血量的2-3倍，每输液50ml即观察并记录各项指标的变化。　　【实验记录】　　结果一：　　正常剂量___BP100下降　　结果二：　　BP(mmHg)失血前休克期注射NA输生理盐水下降下降__CVP(cmH2O)下降下降__R(频率幅度)加快加深加快加深_减慢U(ml/10min)下降下降_增加　　【理想结果】　　BP(mmHg)总体呈下降趋势多次有轻微上升休克期注射NA输生理盐水进行性下降短暂上升后下降缓慢上升CVP(cmH2O)早起变化不明显晚期可下降下降短暂上升后下降缓慢上升至正常R(频率幅度)加快加深加快加深加快加深逐

7、渐恢复正常U(ml/10min)下降少尿/无尿进一步下降逐渐上升　　【注】实验并没有很成功：其中没有进行抢救措施一，所以注射NA后的变化没有记录；抢　　救措施二中的生理盐水错误地沿着耳缘静脉输入了，BP,CVP变化不明显。　　【思考讨论】　　1、说明各实验因素引起动脉血压变化的机制？　　答：①注射乙酰胆碱后：乙酰胆碱与心肌细胞膜上的M受体结合，使细胞膜对K离子通透性增加，对Ca的通透性降低，心率减慢，方式传导速度减慢，心房肌收缩力减弱，心　　输出量减少，血压降低，　　②注射去甲肾上腺素后：MA与血管平滑肌细胞膜上的ɑ受体结合，血管强烈收缩。　　外周阻