大鼠心梗模型 good.ppt

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1、大鼠心梗模型沿左侧胸骨旁斜行切口，上界为两前肢后缘连线，下界为第5肋间，依次切开皮肤、浅筋膜和深筋膜，并用止血钳钝性分离胸大肌和前锯肌交界处，在靠胸骨缘处用止血钳钝性分离第3、4肋间进胸，用专用开胸器撑开3、4肋间暴露心脏，将棉纱放置在肺组织旁边，防止损伤肺组织。，潮气量约3ml/100g，频率为70次/min待大鼠出现吞咽动作时，拔除气管插管。术毕肌肉注射青霉素10活体取出心脏，迅速取材，去除左、右心房及右心室，冲洗后4%多聚甲醛溶液固定，沿左室长轴由心尖至心底做厚切片，将左室分为6片，石蜡包埋切片用6一OProlene线缝针在距左心耳下缘1mm处，

2、左冠状静脉主干附近的室间沟内，将LAD连同少量心肌组织一起缝扎，进针深度控制在1~2mm，宽度为2~3mm关胸过程中于切口内放置排气管(用小儿头皮针的软管自制)，关胸毕，抽空胸腔积气后拨除。试停呼吸机，大鼠恢复自主呼吸后，拨出气管插管，充分清除气管内分泌物。根据文献[l”一]和本实验室条件建立模型:健康成年雄性sD大鼠，体重200一2509，术前禁食12h，不禁饮。3%戊巴比妥钠30m叭g腹腔注射麻醉大鼠，起效后仰卧位固定于鼠板。用0号婴儿喉镜片经口气管插管，插入16G静脉留置针，接小动物呼吸机控制呼吸。确定插管位置深度正确后，口角挂线固定导管，根据血

3、气结果，呼吸参数设定为潮气量4一6ml，频率60一70次/分，吸呼比1:1。备皮，消毒，铺单后，在左侧腋下和剑突连线偏上Icm做一斜切口，长度约为2.scm，以心脏搏动最强点为中心。依次钝性分离深浅筋膜、胸大肌、前锯肌，显露肋骨，可见心脏暗影。将皮肤与各层肌肉做一个荷包缝合备用。充分止血后，由第3、4肋间入胸(心搏最强点偏上一肋)，钝性分离肋间肌，分离肋间肌范围应适当，不能太接近胸骨以免造成大出血。开胸一定要钝性分离从心跳最明显处开胸没有什么大血管，一些小的血管可以把组织先用止血钳夹一下再剪开，那样不会出血。呼吸机→浅麻醉→右侧卧位→胀肺引流管→缝合肋

4、间→对合胸大肌与前锯肌→缝合皮肤→抽吸胸腔积气、积液→拔除引流管→碘附消毒术野，对合肌肉及皮下1.用套管针气管插管的话，消毒后剪开皮肤，钝性分离皮下组织及肌肉暴露气管，插套管针，只会留下一个针眼，术后缝合皮肤就行了，不会有什么危险，你的问题可能出在大鼠自主呼吸还不平稳就拔管缝合了，这时候大鼠会窒息死亡。2.开胸一定要钝性分离从心跳最明显处开胸没有什么大血管，一些小的血管可以把组织先用止血钳夹一下再剪开，那样不会出血。3.心脏挤出后用棉签翻过来就看到很明显的一条血管，是冠状静脉前降支，考下还有一条旋支。前降支起始处就在肺动脉圆锥和左心耳之间，具体结扎的高

5、低还要看你需要的心梗面积是多大，自己要摸索。左心室的壁还是很厚的，差不多有2~3毫米，你可以解剖一只大鼠看看，我用的就是普通持针器，进针深度尽可能深一点吧，〉1毫米。4.关胸的时候捏一下胸部排气就行了，也有人说拿针管抽气，但我觉得这种方法力度不好掌握。5.没有二次开胸过，请其他高人给你指点吧。祝你早日成功动物的选则：健康雄性SD大鼠，建议使用250g左右体重的，耐受力强。而且小一点的胸壁较薄，开胸容易。麻醉：我用的是10%水合氯醛，感觉效果还不错，20分钟左右待大鼠呼吸平稳即可手术，2~3个小时后苏醒。剂量0.4~0.45ml/100g体重，这个也有

6、个体差异，要大家自己摸索一下。这里给大家一些建议：1.麻药刚发挥作用的时候大鼠状态不平稳，这时候不要急于作手术，多观察一会儿。2.麻醉程度宜浅不易深，如果麻药打浅了，只要大鼠没有过分挣扎，可适当局麻，千万不可反复补麻药，我的经验这样的情况即使手术成功大鼠也活不长。关于呼吸：这是关系到手术成功与否的最主要因素。麻醉药会使大鼠呼吸道产生分泌物，我一般都是在麻醉大鼠后腹腔注射阿托品0.1mg/只，但据我观察我们学校动物中心的大鼠分泌物不多，不用药也行，曾经买过河南一批大鼠，分泌物极多，必须用药。气管插管我用的是临床上的静脉输液套管针，创伤小，目前术后没发

7、生过呼吸道感染情况。关于呼吸机：我也用过江西特力公司的小动物呼吸机，但发现不太适用于大鼠这样的小动物，潮气量的调节非常粗略，不好控制。现在我用的是我们学校自己生产的呼吸机，其实就是一个简易的空气泵，我自己又改装了一下，现在是医用氧和空气的混合气，呼吸频率60/分钟，潮气量3ml/100g。这里由于条件限制，所以潮气量是比较粗略的，而且氧气含量也无法测量，但是据我的经验，给纯氧对大鼠的损伤比不上呼吸机还大，只要有呼吸肌支持，适当给些氧气辅助一下，大鼠成活不成问题。关于手术切口：我是在胸壁正中剪开皮肤，然后在胸骨左侧1CM左右钝性分离皮下组织和肌肉，最后用

8、血管钳撑开胸腔，助手用自制小拉钩拉开胸壁。这样的好处是每一层的开口不在一个位置，关胸后胸腔自然