细胞培养试剂及操作流程.doc

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1、实验规范化流程一、细胞培养所需1、10%FBS1640培养液。2、10%FBSDMEF/12培养液。3、10%FBSDMEM/HighGlucose培养液。4、PBS:商品化的粉末,一袋溶于2L去离子水中,高压后4℃保存。5、胰酶6、冻存液:10%DMSO、>10%FBS,其余成分为16407、真核抗生素:G418:50mg/mlMDA-MB-231800ug/ml药筛浓度MCF-7800ug/mlSK-BR3100ug/mlT47D400ug/ml)嘌呤霉素(Puromycin):10mg/mL、药筛浓度MCF-74ug/mlT47D1ug/mlMD

2、A-MB-2315ug/ml潮霉素(HygromycinB):50mg/mL药筛浓度T47D200ug/mlMDA-MB-231800ug/mlMCF-750ug/ml8、原核抗生素:双抗(抗青霉素、链霉素)(使用浓度:1%原液)环丙沙星左氧氟沙星(储存浓度5mg/ml,使用浓度5ug/ml)9、细胞因子:IL-6、EGF(10ug/ml)10、抗肿瘤药物:阿霉素(储存浓度50Mm,使用浓度0.01mM)一、细胞培养相关技术1、细胞复苏准备:37℃水浴锅、培养液、15ml离心管、滴管、培养瓶或培养皿试验流程:(1)将细胞从-80℃或液氮取出,遵”慢冻速

3、溶“的原则,迅速在37℃下使其液化。(2)将融化的细胞悬液加入适量新鲜培养液稀释吹匀,转移到15ml离心管内。(3)将离心管以1000rpm转速离心5min。(4)小心弃去上清,最好用枪头除尽,加入新鲜的培养液6ml,重选吹匀后转移到细胞培养瓶或培养皿,放入37℃、5%CO2细胞培养箱内培养。2、细胞传代准备:胰酶、培养液、培养瓶或培养皿、15ml离心管、滴管实验流程:(1)将覆盖率达80-90%的对数生长期细胞弃去培养液,尽量将培养液洗净,必要时加PBS冲洗,以防止培养液对胰酶的终止作用。(2)加入适量胰酶(一般25cm2培养瓶加0.5ml,10cm

4、dish加1ml),并且晃动几下使胰酶在平底分布均匀,放入37℃培养箱孵育。(3)适当时间后(231、SK-BR3用1min,MCF-7、T47D用2min,依据细胞不同时间不同)将培养瓶从培养箱拿出来,显微镜下观察细胞形态变圆、粘附性变弱后加入培养液终止酶反应。(4)用培养液冲洗瓶底,然后吹打细胞悬液使其均匀单个分布。(5)将悬液1000r离心5min后重悬,安装实际需要将悬液平分到培养瓶内,一般按1:3传代较好。3、细胞冻存准备:培养液、胰酶、15ml离心管、滴管、冻存管、冻存盒试验流程:(1)将已经长满的细胞取出,弃去培养液后加入适量胰酶,放入3

5、7℃孵育适当时间后,观察细胞变化。(2)用培养液终止反应后,吹匀,将悬液转移到15ml离心管内。(3)以1000r的速度离心5min(4)弃去上清,加入1-1.5ml冻存液,重悬,加入冻存管内(冻存管注意做好标记)。(5)将冻存管放入冻存盒内。盖好,放入-80℃冰箱冻存。4、细胞计数准备:胰酶、培养液、滴管、15ml离心管、计数板、移液器实验流程:(1)取对数生长期细胞,用适量胰酶消化后,1000r离心5min,重悬。(2)用微量移液器取10μL悬液,沿计数板一侧缓慢加入,确保悬液均匀充满计数池。(3)显微镜下计数四角大方格内的细胞数目,求平均值。(4

6、)根据公式n=四角大方格内细胞数/4*104(个)/ml

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