玻璃粘连蛋白对大鼠骨髓间充质干细胞成骨分化影响

玻璃粘连蛋白对大鼠骨髓间充质干细胞成骨分化影响

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1、玻璃粘连蛋白对大鼠骨髓间充质干细胞成骨分化影响:王明明叶发刚葛银林【摘要】目的体外分离纯化培养大鼠骨髓间充质干细胞(rMSC),研究玻璃粘连蛋白(VN)在rMSC向成骨方向分化过程中的作用。方法贴壁分离培养法分离纯化rMSC,观察第1、3、5、8、10代细胞的增殖情况,并绘制出生长曲线。选第3代细胞用以VN包被的培养板培养,每4d检测碱性磷酸酶活性及钙结节的形成。结果经贴壁筛选法分离的rMSC生长曲线呈S形,第3、4、5代细胞排列具有典型的漩涡状结构;细胞表达CD44、CD90,而不表达CD34。用以VN包被的培养板培养12d,碱性磷酸酶染色呈阳性,硝酸银染色显示有钙结节形成。结论VN

2、有诱导rMSC向成骨方向分化的作用。【关键词】骨髓;间质干细胞;玻璃粘连蛋白;细胞分化  [ABSTRACT]ObjectiveToisolate,purifyandcultivatetheratmesenehymalstemcells(rMSCs)invitro,andstudytheeffectofvitronectin(VN)onosteogenicdifferentiationofrMSCs.MethodsrMSCs,and3rd,4thand5thgenerationmanifestedastypicalarroesenchymalstemcells;vitronectin;

3、celldifferentiation骨髓间充质干细胞(MSC)为骨髓中一群多能干细胞,在不同的因素诱导下可以分化为不同的细胞。启动MSC分化的确切因素尚不十分清楚,周围环境中某些可溶性诱导因子已被成功鉴定,而周围不可溶性成分对成骨诱导的作用相对关注较少。本实验主要研究构成细胞外基质主要成分的玻璃粘连蛋白(VN)在MSC向成骨分化过程中的作用,以探讨MSC成骨分化的确切因素。  1材料和方法  1.1实验材料EM低糖培养基(GIBCO公司),胎牛血清(兰州民海生物工程有限公司),胰蛋白酶(SIGMA公司),羊抗大鼠CD34FITC、CD44FITC、CD90FITC(北京中山生物

4、公司)。  1.2实验方法  1.2.1大鼠骨髓间充质干细胞(rMSC)的体外分离培养  取2月龄EM冲出骨髓,离心去除上清及脂肪,所得细胞悬液以1.0×108/L的细胞密度接种于75mL培养瓶中,在含体积分数0.15胎牛血清LDMEM完全培养液中,37℃、体积分数0.05CO2、饱和湿度条件下培养,3d后首次换液,去除未贴壁细胞。以后每2~3d换液1次,待贴壁细胞融合90%时,以2.5g/L胰蛋白酶消化、传代。贴壁细胞融合90%时即传代1次,传至第3代时进行实验。  1.2.2rMSC的生长曲线绘制  分别取第1、3、5、8、10代细胞,用2.5g/L胰蛋白酶消化后加入LDMEM

5、完全培养液,调整细胞密度至1.0×107/L,接种于5个24孔板,每孔加细胞悬液1.0mL。每天每板取3孔消化,制成细胞悬液,混匀,计数并取平均值,连续9d,以时间为横坐标,细胞数为纵坐标绘制生长曲线。  1.2.3rMSC的鉴定  ①形态学观察:在倒置显微镜下定期观察细胞生长情况。②细胞表面标志鉴定:取第3代细胞消化、计数、离心,加入200μLPBS制成细胞悬液。设置阴性对照,加入羊IgG1FITC;其他管分别加羊抗大鼠CD34FITC、CD44FITC、CD90FITC以及细胞与荧光素共轭抗体抗CD29、CD34、CD90,在黑暗中孵化15min。流式细胞仪检测细胞表面抗

6、原表达情况。  1.2.4rMSC与VN共培养及相关指标检测  在rMSC传代3次后,将指数生长期细胞用LDMEM调细胞的密度为3.0×103/cm2,接种于用纯化的VN包被的24孔培养板中,以成骨诱导液为阳性对照,以含体积分数0.15胎牛血清LDMEM完全培养液为阴性对照,每3d换液1次,在培养至4、8、12和16d时分别进行碱性磷酸酶染色和钙离子沉淀测定。碱性磷酸酶染色:向培养板中加入双蒸水配制的萘酚ASMX磷酸盐和FastblueRR溶液,孵育,显微镜下测定染料沉积情况。钙离子沉淀的测定:用30g/L的多聚甲醛固定细胞30min,双蒸水洗2次,暗处与50g/L的硝酸银溶液孵

7、育10min,双蒸水洗后暴露于强光下1h,计数染色细胞沉积颗粒的数目和大小。  2结果原代培养细胞12h可见细胞贴壁,3d后大部分细胞贴壁,第1次换液后细胞4h贴壁,细胞呈多角形、菱形,可见集落形成;9~10d细胞间相互融合达90%。传代后细胞4h贴壁,生长迅速,细胞呈较为均一的梭形、多角形,并呈漩涡状排布。rMSC生长曲线呈S形,第3~5代增殖迅速,1代和8代次之,10代生长明显减慢(图1)。分离纯化的细胞不表达造血细胞表面标志CD34,而强

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