临床分离泛耐药菌的筛查及铜绿假单胞菌泛耐药机制研究

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中图分类号R446.5UDC610硕士学位论文学校代码!Q5三3密级公珏临床分离泛耐药菌的筛查及铜绿假单胞菌泛耐药机制研究Screeningoffinicalisolatedpan’resistntScreeningoIclinicalisolatedpan-drugresistant‘1‘‘■o■nl-·‘strainSandinvestigationoloan-drugresistantmechanismsofPseudomonasaeruginosa作者姓名:李军学科专业:临床医学研究方向:临床检验诊断学学院(系、所):湘雅医院指导教师:邹明祥副教授论文答辩日期巡.门答辩委贻拂盟中南大学湘雅医院二O一三年五月 原创性声明lIIIIIIIIIIIIIIIIIY2424510本人声明,所呈交的学位论文是本人在导师指导下进行的研究工作及取得的研究成果。尽我所知,除了论文中特别加以标注和致谢的地方外,论文中不包含其他人已经发表或撰写过的研究成果,也不包含为获得中南大学或其他单位的学位或证书而使用过的材料。与我共同工作的同志对本研究所作的贡献均已在论文中作了明确的说明。作者签名:乏查聋日期:j止年』月卑日学位论文版权使用授权书本人了解中南大学有关保留、使用学位论文的规定,即:学校有权保留学位论文并根据国家或湖南省有关部门规定送交学位论文,允许学位论文被查阅和借阅;学校可以公布学位论文的全部或部分内容,可以采用复印、缩印或其它手段保存学位论文。同时授权中国科学技术信息研究所将本学位论文收录到《中国学位论文全文数据库》,并通过网络向社会公众提供信息服务。日期:尘堕年』月望日 本课题受以下基金资助1.湖南省发改委研究基金:湖南地区临床主要泛耐药革兰阴性杆菌的流行病学及耐药机制研究。湘发改投资[20121305号。2.中南大学本科生自由探索研究创新基金:长沙地区产金属p.内酰胺酶铜绿假单胞菌的基因特征(ZYl1098) 临床分离泛耐药菌的筛查及铜绿假单胞菌泛耐药机制研究摘要目的:(1)Y解本院碳青霉烯类耐药鲍曼不动杆菌的临床分布、耐药特征及泛耐药现状。(2)探讨湖南地区临床分离泛耐药铜绿假单胞菌(PDR-PA)的主要耐药机制及分子流行病学特征。方法:(1)连续收集湘雅医院2011年9月1日.2012年6月30日临床分离非重复对碳青霉烯类耐药的鲍曼不动杆菌以及湖南地区15家医院2011年1月1日.2011年12月31日多重耐药铜绿假单胞菌。VITEK.2全自动微生物分析系统或API对病原菌进行鉴定;K.B法检测抗菌药物的敏感性、筛查泛耐药菌株;药敏结果以软件WHONET5.6进行分析。(2)对37株PDR-PA采用改良Hodge试验初筛碳青霉烯酶、双纸片协同试验和双纸片增效试验筛查金属p.内酰胺酶。(3)PCR坳I.[33种灭活酶基因(包括p.内酰胺酶基因、16SrRNA甲基化酶基因、氨基糖苷类修饰酶基因等)、13种可移动性元件基因、3种外排泵基因以及外膜蛋白基因,并对扩增产物进行测序及BLAST分析。(4)琼脂对倍稀释法进行外排泵抑制剂的抑制试验,观察抗生素的MIC变化。实时荧光定量PCR检测外排泵基因MexA以及外膜蛋白基因OprD2的相对表达量。(5)脉冲场凝胶电泳技术(PFGE)和聚类分析法进行菌株间同源性分析。结果:(1)205株碳青霉烯类耐药的鲍曼不动杆菌主要来源于呼吸道标本,占79.O%;科室分布以ICU(55.6%)为主。头孢哌酮/舒巴坦敏感率最高,为52.2%,对其他抗菌药物的耐药率达52.7%一100%,且监测到8株泛耐药鲍曼不动杆菌。(2)15家医院共分离到37株PDR-PA,改良Hodge实验阳性8株,阳性率为21.6%。金属p.内酰III 亟±堂僮论窒主塞擅墓胺酶初筛阳性5株,阳性率为13.5%。(3)37株PDR-PA中,其灭活酶基因阳性有TEM、armA、rmtB、VIM,IMP和CARB,阳性率分别是100.O%、22.O%、5.O%、19.O%、22.O%和37.8%。可移动性元件tnpU、tnp513、tnpA/tn21、merA和IntI等5种基因为阳性,阳性率分别为16.O%、81.O%、49.O%、100.O%和100.O%。所有阳性基因经BLAST分析证实,与Genbank中已知序列同源性均大于98.O%。(4)37株PDR-PA中,外排泵抑制试验阳性34株,阳性率为91.9%。对照组和实验组MexA基因的相对表达量分别为O.704-O.13以及1.95±O.48(P=0.018),而OprD2基因的相对表达量分别为3.18±O.60以及O.94±O.08(e=-o.002)。(5)37株PDR-PA可分为21个型,A型最多,共5株。A1亚型同时出现在湘雅医院和湘雅三医院,E1亚型分别出现在湖南省第二人民医院和湘雅三医院。结论:(1)本院碳青霉烯耐药鲍曼不动杆菌呈严重的多重耐药性;(2)湖南地区已出现泛耐药鲍曼不动杆菌和铜绿假单胞菌。(3)IMP、VIM、TEM、CARB、armA、rmtB等灭活酶以及外排泵MexAB.OprM的高表达和外膜蛋白OprD2的表达下降是导致本地区铜绿假单胞菌泛耐药的重要原因。(4)tnpU、tnp513、tnpA/tn21、merA和ImI等可移动性元件在耐药性传播方面发挥了重要作用。(5)本地区PDR-PA呈散发形式存在,但在不同医院以及同一医院不同病区之间有克隆传播。图23张,表18张,参考文献45篇。关键词:泛耐药;铜绿假单胞菌;耐药机制;分子流行病学分类号:R446.5IV Screeningofclinicalisolatedpan—drugresistantstrainsandinvestigationofpan—drugresistantmechanismsofAbstractPseudomonasaeruginosaObjective:(1)Tounderstandtheclinicaldistribution,antibioticsresistancecharacteristicsandpan-drugresistancestatusofcarbapenem-resistantA.baumannii(CR-AB)inourhospital.(2)Toinvestigatetheantibioticresistantmechanismsandmolecularepidemiologicalcharacteristicsofclinicalisolatedpan-drugresistantPaeruginosa(PDR-PA)inHunan.Methods:(1)Non—duplicatedclinicalisolatesofCR-ABinXiangyahospitalwerecollectedfromSeptember1,2011toJune30,2012.Whilenon-·duplicatedclinicalisolatesofpan·-drugresistantPaeruginosafrom15hospitalsinHunanareawerecollectedfromJanuary1,201toDecember31,2011.IdentificationofisolateswascarriedoutbyautomaticmicroorganismanalyticalsystemVitek-2orAPI.Antimicrobialsusceptibilitytestsandscreeningofpan—drugresistantstrainswereperformedbyKirby·BauermethodandthedatawereanalyzedbyWHONET5.6software.(2)ModifiedHodgetestwasusedforthescreeningofcarbapenemase.EDTA-synergytestandcombinationdiskdiffusionwereusedforphenotypicscreeningofmetallo-beta-lactamase(MBL).(3)PCRwereperformedin37strainsofPDR-PAfortheV detectingof3inactivatedenzymegenes(includingthegenesofthe13-1actam,16SrRNAmethylaseandaminoglycosidemodifyingenzymes),13movableelementsgenes,3effiuxpumpgenesandoutermembraneproteingenes.TheamplifiedproductsweresequencedandBLASTanalyseswereperformed.(4)MICsofantibioticcombinedwitheffiuxpumpinhibitors(CCCP)againstpan—drugresistantstrainsweredeterminedbyagardilutionmethod,andchangesofMICswereobserved.Real—TimePCRwasusedfordetectionoftheexpressionofeffiuxpumpgeneMexAandoutermembraneproteingeneOprD2.(5)HomologyofPDR-PAwasanalyzedbyPFGEandclusteranalysismethod.Results:(1)TwohundredandfivestrainsofCR-ABweremainlyisolatedfromrespiratorysamples(accountedfor79.O%)andICU(55.6%)wasthemaindepartment.Cefoperazone/sulbactamwithasensitiverateof52.2%wasthemostsensitiveantibioticstested,andtheresistantratetootherantibioticsrangedfrom52.7%to100%.Therewere8PDR-ABstrains.(2)EightstrainsshowedpositiveinmodifiedHodgetest,andthepositiveratewas21.6%.FivestrainsshowedpositiveinMBLscreeningtest,andthepositiveratewas13.5%.(3)Totally37strainsofPDR-PAwereisolatedfrom15hospitals.TheirinactivatedenzymegenesincludedTEM一1,armA,rmtB,VIM,IMPandCARB,withthepositiverateof100.O%,22.O%,5.O%,19.O%,22.O%and37.8%,respectively.Fivemovableelementsgenes,tnpU,tnp513,tnpA/tn21,merAandIntI,werepositive,withthepositiveratesof16.O%,81.O%,49.O%,100.O%and100.O%,respectively.AllthepositivegeneswereidentifiedbyBLASTVI analyze,andthesequencehomologywasallabove98.O%comparedwithknowngenesinGenbank.(4)Amongthe37PDR-PAstrains,34hadapositiveresultineffiuxpumpinhibittests,andthepositiveratewas91.9%.TherelativeexpressionlevelsofMexAgeneincontrolandexperimentalgroupwere0.70士0.13and1.95士0.48俨O.018),respectively,whiletherelativeexpressionlevelsofOprD2geneincontrolandexperimentalgroupwere3.18士0.60and0.94土0.08俨O.002),respectively.(5)Thirty—sevenPDR-PAstrainscouldbedividedinto21types,andtypeA(included5strains)wasthemaintype.SubtypeA1andE1appearedintwoteachinghospitalsatthesametime.Conclusions:(1)CR-ABinourhospitalpresentedwithseveremulti—drugresistance.(2)PDR-ABandPDR-PAwereemergedinHunanarea.(3)Produceofinactivatedenzymes,likeIMP,VIM,TEM.1,CARB,almAandrmtB,highexpressionofeffiUXpumpMexAB-OprM,anddecreasedexpressionofoutermembraneproteinOprD2werethemainmechanismsthatleadtothepan-drugresistanceofPAinthisarea.(4)Themovableelements,tnpU,tnp513,tnpA/tn21,merAandIntIplayedimportantrolesinthedisseminationofdrugresistance.(5)PrevalenceofPDR-PAinthisareawassporadic,buttherewereclonedisseminationsbetweendifferenthospitalsordifferentdepartmentswithinonehospital.Keywords:Pan-drugresistant;Pseudomonasaeruginosa;Resistancemechanism;MolecularepidemiologyClassification:R446.5VII 亟±堂焦论室目基目录原创性声明⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..I摘要⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯.⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..IIIAbstract⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯.V英汉缩写词对照表⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..IX1绪论⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..12湘雅医院碳青霉烯耐药鲍曼不动杆菌的临床分布及耐药特征⋯⋯⋯⋯⋯⋯..32.1材料和方法⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯32.2结果⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..52.3讨论⋯⋯⋯⋯⋯..⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯73铜绿假单胞菌泛耐药机制研究⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..93.1灭活酶和可移动性元件检测⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯93.1.1材料和方法⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯.⋯⋯⋯93.1.2结果⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯163.1.3讨论⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯283.2外排泵和外膜蛋白分析⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯.293.2.1材料和方法⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..293.2.2结果⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..323.2.3讨论⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..354湖南地区泛耐药铜绿假单胞菌的分子流行病学研究⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯374.1材料与方法⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯.374.2结果⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯.384.3讨论⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯415结论⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯42参考文献⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯43综述⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯47攻读硕士学位期间研究成果⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯..58致谢⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯...⋯⋯⋯⋯60VIII 英汉缩写词对照表IX 亟±堂僮i金塞!绪i金1绪论随着抗菌药物在临床上的广泛使用,细菌耐药现象日趋严重。近年来,临床分离病原菌中,多重耐药菌株比例不断上升,甚至出现了泛耐药菌株,给临床抗感染治疗带来了极大的挑战。泛耐药(Pan-drugresistant,PDR)菌是指对临床常用抗菌药物(除多粘菌素和/或替加环素之外)均耐药的病原菌,这些药物包括青霉素类、头孢菌素类、碳青霉烯类、B.内酰胺酶抑制剂复合药物、氨基糖苷类以及喹诺酮类等。近年来,泛耐药革兰阴性杆菌已在多个国家及地区报道,并且部分地区甚至出现暴发流行。据台湾的一项调查研究显示【lJ,泛耐药鲍曼不动杆菌已从1998年前的O.O%骤升到2000年的6.5%。随后,在希腊、法国、美国等畔1多个国家均有检出报道。CHlNET监测结果显示15J,我国临床分离鲍曼不动杆菌、铜绿假单胞菌以及肺炎克雷伯菌均出现了泛耐药菌株,且有上升趋势。由于泛耐药菌株具有严重的耐药性,使得临床治疗极为困难。Falagas等【6J研究发现,泛耐药革兰阴性菌感染的死亡率为33.3%,而台湾的一项研究却高达60.0%f71。随着泛耐药菌株的出现,甚至流行,现已成为全球严重的公共卫生问题,引起了国内外学者的广泛关注。本课题组在日常工作中发现,临床常见泛耐药菌主要以非发酵菌为主。鲍曼不动杆菌(Acinetobacterbaumannii,AB)和铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa,PA)是临床分离率最高的两类非发酵菌,分别位居所有革兰阴性杆菌的第三和第四位,仅次于大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌【5,8】。由于这两类细菌广泛分布于自然界、医院环境及人体的皮肤等桫J。当机体免疫力低下时,可引起医院获得性肺炎、菌血症、术后伤口感染和泌尿系统感染等,是引起医院感染重要的病原菌【10】。为了解临床常见泛耐药菌的现状,本研究拟对这两类临床分离菌株进行筛查。碳青霉烯类抗生素(包括亚胺培南、美罗培南、厄他培南等)是抗菌谱最广的一类p.内酰胺类抗生素,曾是治疗革兰阴性杆菌感染,尤其是鲍曼不动杆菌严重感染时的重要武器。然而,近年来,随着该类药物在临床上的广泛应用,国内外均有检出对其耐药的报道[11-131,且呈上升的趋势‘5,14,151。2010年卫生部全国细菌耐药监测网数据显示,我国临床分离鲍曼不动杆菌对亚胺培南和美罗培南耐药率分别高达53.O%和53.3%t16j。由于碳青霉烯类抗生素抗菌活性强,一旦分离菌对其耐药则意味着对其他多种抗菌药物可能均耐药。为此,本研究通过对本院临床分离的耐碳青霉烯类药物鲍曼不动杆菌以及湖南地区15家医院常规工作中药敏结果显示严重耐药的铜绿假单胞菌,采用K.B法检测临床常用的抗菌药物敏感性,以筛查泛耐药菌株。 亟±堂焦论塞!绪论细菌耐药机制十分复杂,包括产生各种灭活酶(如KPC酶、金属酶、ESBLs、AmpC酶、16SrRNA甲基化酶基因、氨基糖苷类修饰酶等)、外排泵的过度表达、膜通透性降低、药物作用靶位的改变以及生物膜的形成等多种因素。希腊【r7】学者研究发现,产KPC.2的肺炎克雷伯菌同时检测到携带TEM.1、SHV.11、SHV.12、CTX.M.15和LEN.19等多种耐药基因。而Deplano等【2】的研究发现,染色体介导的AmpC酶、外膜蛋白OprD2的缺失和外排泵MexXY的高表达三种耐药机制同时存在并且相互影响。国内,沈继录等【18】在对临床分离的19株泛耐药菌株耐药机制的研究中发现,VEB.3型ESBL、aac(3).II和ant(3”).I氨基糖苷类钝化酶、DNA螺旋酶gyrA和拓扑异构酶ParC基因突变以及OprD2蛋白缺失和外排泵高表达等均参与其耐药。另有研究发现,耐药基因的分布情况存在地区差异,如金属酶中,IMP多见于东南亚国家,而VIM多见于南欧和东南亚。同时,耐药基因可以借助整合子、插入序列、接合性质粒以及转座子等可移动性元件水平传播,甚至导致耐药菌株的暴发性流行。如VIM在质粒的介导下可传播到肠杆菌科中的其它多个菌属和菌种,包括肺炎克雷伯菌、阴沟肠杆菌、产气肠杆菌、大肠埃希菌等【19l。Goren等【20】研究发现,携带KPC.3的肺炎克雷伯菌可将其耐药基因通过质粒传播到大肠埃希菌。可见,多种耐药机制同时存在,并通过可移动元件进行传递,导致了细菌的广泛耐药及流行。为了解湖南地区临床分离泛耐药铜绿假单胞菌的主要耐药机制以及菌株之间的亲缘性,本研究采用分子生物学技术对湖南地区分离的37株泛耐药铜绿假单胞菌进行各种灭活酶基因(包括13.内酰胺酶基因、16SrRNA甲基化酶基因、氨基糖苷类修饰酶基因等)、可移动性元件基因、外排泵以及外膜蛋白的表达情况检测;同时采用脉冲场凝胶电泳技术(PFGE)探讨其分子流行病学特征,以期为临床预防和控制泛耐药菌株的流行提供重要实验依据。 2湘雅医院碳青霉烯耐药鲍曼不动杆菌的临床分布及耐药特征2.1材料和方法2.1.1实验菌株205株非重复碳青霉烯类耐药的鲍曼不动杆菌来源于2011年9月1日。2012年6月30日湘雅医院临床标本。所有实验菌株均经法国生物梅里埃公司VITEK-2全自动细菌鉴定/药敏分析系统进行鉴定。质控菌株大肠埃希菌(ATCC25922)和铜绿假单胞菌(ATCC27853)购自卫生部临床检验中心。改良Hodge试验标准菌株ATCCBAA.1705(阳性)和ATCCBAA-1706(阴性)由北京大学临床药理研究所李耘教授惠赠。2.1.2主要试剂和仪器哌拉西林(PRL),哌拉西林/他唑巴坦(TZP),四环素(TCY),复方新诺明(SXT),多西环素(DO),米诺环素(MH),氨苄西林/舒巴坦(SAM),头孢噻肟(CTX),头孢他啶(CAZ),头孢吡肟(FEP),妥布霉素(TOB),亚胺培南(IPM),美罗培南(MEM),庆大霉素(CN),阿米卡星(AK),环丙沙星(CIP),左氧氟沙星(LEV),头孢哌酮/舒巴坦(SCF),多粘菌素B(PB)等药敏纸片购自英国OXOID公司,MH琼脂购自杭州天和微生物试剂有限公司。VITEK.2全自动微生物鉴定分析系统及API试纸条购白法国梅里埃公司。2.1.3实验方法2.1.3.1碳青霉烯酶表型检测(改良Hodge试验)采用改良Hodge试验对CR-AB进行碳青霉烯酶的表型初筛,具体步骤如下:挑取过夜纯培养的大肠埃希菌ATCC25922(指示菌),用生理盐水调制成0.5麦氏浊度的菌液后,将其用生理盐水按1:10稀释,用无菌棉签蘸取并涂布于MH平板上,待完全吸收后,在平板中间贴上厄他培南(10txg),用接种环挑取单个待测菌或质控菌,并从平板中间离厄他培南5mm~10mm处向平板边缘划线,长度为20mm"-'25mm,35。C过夜培养。以肺炎克雷伯菌ATCCBAA.1705/1706作为质控菌株。结果判断:观察待测菌或质控菌划线与抑菌圈边缘交叉部分有无增强生长现象,若有则为阳性,反之,阴性。2.1.3.2药敏试验采用K.B法检测菌株对19种抗菌药物的敏感性。将临床收集的标本接种于相应的培养基上,35。C培养18"-'20h,根据菌落的形态、氧化酶试验及涂片镜检 的结果,取单个疑似菌菌落用全自动微生物分析系统VITEK.2和(或)API进行鉴定。经鉴定后的纯菌落以脱脂牛奶.80。C保存备用。菌株复苏,用接种环挑取35℃过夜培养的单个纯菌落,用生理盐水将其调成0.5麦氏浊度的菌液,用无菌棉签蘸取并均匀涂布于MH平板上,待菌液完全被吸收后,用分配器将药敏纸片贴于其上,35℃培养16"--18h后测量其抑菌圈的直径。每批次均用大肠埃希菌(ATCC25922)和铜绿假单胞菌(ATCC27853)作同步质控。2.1.3.3数据处理将患者资料及药物抑菌环直径输入WHONET5.6进行处理及分析,结果按2012年CLSIM100-$22有关不动杆菌的折点判定为敏感(S)、中介(I)或耐药(R)。判断标准见表2.1。表2-1鲍曼不动杆菌的抑菌圈直径判断折点注:“.”表示CLSI无判断折点。 2.2结果2.2.1标本来源205株碳青霉烯耐药的鲍曼不动杆菌中,其标本来源以痰及支气管灌洗液等呼吸道标本为主,占79.0%,其次为创面分泌物(6.3%)和血液(3.9%)。结果见表2。2。表2-2205株碳青霉烯类药物耐药鲍曼不动杆菌的标本分布2.2.2科室分布205株碳青霉烯类药物耐药鲍曼不动杆菌以ICU所占比例最高,占55.6%,其次为神经外科(11.2%)和急诊科(4.4%)。结果见表2—3。 表2.3205株碳青霉烯类药物耐药鲍曼不动杆菌的科室分布2.2.3碳青霉烯酶表型检测(改良Hodge试验)结果205株耐碳青霉烯类药物耐药(IPM或MEM至少1种耐药)鲍曼不动杆菌中,改良Hodge试验阳性27株(13.2呦,阴性178株(86.8呦。改良Hodge试验部分结果见图2—1。图2-1改良Hodge试验结果1:l‘fJ性对照;2:I‘EI性对照;3,4:临床样本。6 2.2.4药敏试验结果205株碳青霉烯耐药鲍曼不动杆菌中,亚胺培南和美罗培南的耐药模式有三种:亚胺培南和美罗培南均耐药,即IRMR有203株;亚胺培南中介且美罗培南耐药,即IIMR有1株;亚胺培南敏感而美罗培南耐药,即IsMR有1株。药敏结果显示,在被监测的19种抗菌药物中,敏感率最高的是头孢哌酮/舒巴坦(52.2%),其余药物的敏感率均<28.0%。共检出8株泛耐药鲍曼不动杆菌。结果见表2.4。表2.4205株碳青霉烯类药物耐药鲍曼不动杆菌对19种抗茵药物的敏感性(%)}:对于鲍曼不动杆菌,多粘菌素B没有K.B法药敏试验判断折点,监测中仅仅记录抑菌圈直径。2.3讨论鲍曼不动杆菌是院内感染的重要条件致病菌。在非发酵革兰阴性杆菌中,鲍 曼不动杆菌的临床分离率仅次于铜绿假单胞菌,且呈上升的趋势【211。该菌在医院环境中的分布广且可长期存活,所致感染部位十分广泛,包括呼吸系统、胸腹腔、伤口、血液、皮肤等,其中以呼吸系统最为常见【221。本次检测中发现,鲍曼不动杆菌的标本来源主要是痰及支气管灌洗液,与饶蓉等【23】的报道一致。205株碳青霉烯类药物耐药的鲍曼不动杆菌主要来自ICU,分析可能与ICU患者多接受插管治疗、长期使用过抗菌药物、住院时间长、多伴有基础性疾病等有关【24J。碳青霉烯类抗生素(包括亚胺培南、美罗培南等)是抗菌谱最广的一类p.内酰胺类抗生素,是治疗革兰阴性杆菌,尤其是鲍曼不动杆菌严重感染的重要药物。然而,随着该类药物在临床上的广泛应用,鲍曼不动杆菌对其耐药率不断增加,现已成为全球严重的公共卫生问题,引起了国内外学者的广泛关注【25。27J。据中国2011年CHINET细菌耐药监测网数据显示,我国住院患者分离的鲍曼不动杆菌对亚胺培南和美罗培南耐药率分别为60.4%和61.4%,比2010年的敏感率下降了5.0%。本次监测共收集到205株碳青霉烯耐药的鲍曼不动杆菌。改良Hodge显示阳性为27株(13.2%),明显低于本课题组前期长沙地区的相关报道(61.7%1,【281,提示可能本院碳青霉烯类药物耐药鲍曼不动杆菌耐药机制不以产生碳青霉烯酶为主,具体原因有待进一步研究。药敏结果显示,在被监测的19种抗菌药物中,敏感率最高的是头孢哌酮/舒巴坦(52.2%),其余药物的敏感率均<28.0%。提示本院碳青霉烯类药物耐药鲍曼不动杆菌耐药形势已十分严重,可供临床选用的治疗药物十分有限。本研究中共发现3种亚胺培南和美罗培南的耐药模式,包括IRMR203株,IIMR1株以及IsMR1株,以IRMR耐药模式为主。文献报道,亚胺培南敏感或中介而美罗培南耐药的现象较少见。本次监测中发现IIMR和IsMR各1株,其耐药机制有待进一步研究。泛耐药鲍曼不动杆菌(Pan-drugresistantA.baumannii,PDR.AB)已在世界上多个地区出现【29‘311。本研究共检出8株对所有监测药物均耐药(多粘菌素B除外)的PDR.AB。结合病史资料发现,这些病人大多来自ICU,且多伴有基础性疾病(包括高血压、糖尿病、慢性支气管炎、肺结核等)、经插入性治疗、多处损伤、年龄较大等。目前,对于泛耐药菌治疗有效的药物非常有限。多粘菌素曾因其肾毒性及神经毒性等原因而被迫暂停使用,近年来,因其对泛耐药菌株的治疗有效而被重新启用。然而,已有对其耐药的报道【3弱41,应引起高度警惕。可见,本院碳青霉烯耐药鲍曼不动杆菌呈严重的多重耐药性,且出现了泛耐药菌株。采取合理的措施预防和控制其暴发流行已势在必行。监测鲍曼不动杆菌的耐药性,了解其耐药性变迁,是一项长期的工作,对临床合理使用抗菌药物具有十分重要的指导意义。 亟±堂僮途塞三锢堡遐皇胞菌泛耐垫扭剑班究3铜绿假单胞菌泛耐药机制研究3.1灭活酶和可移动性元件检测3.1.1材料和方法3.1.1.1实验菌株收集湖南地区15家医院(湘雅医院、湘雅三医院、湖南省人民医院、湖南省第二人民医院、长沙市第一医院、长沙市第三医院、郴州市第一人民医院、益阳市中心医院、南华大学附属一医院、湘潭市中心医院、湘潭市第一人民医院、湘潭市第二人民医院、宁乡县人民医院、浏阳市人民医院、浏阳市中医院)2011年1月1日.2011年12月31日门诊及住院病人分离的铜绿假单胞菌。对这些医院经仪器或手工方法检测均耐药的菌株,进一步采用K.B法进行系统检测。检测药物包括哌拉西林、哌拉西林/他唑巴坦、头孢他啶、头孢吡肟、头孢噻肟、氨曲南、亚胺培南、美罗培南、多粘菌素B、庆大霉素、妥布霉素、阿米卡星、环丙沙星、左旋氧氟沙星、头孢哌酮/舒巴坦等共计15种。按2012年CLSIM100.$22有关铜绿假单胞菌的折点判定,除多粘菌素B外,其余全部耐药者为泛耐药铜绿假单胞菌(PDR.PA)。共计37株,来源于其中9家医院。具体分布见表3.1、表3.2、表3.3。表3.1泛耐药铜绿假单胞菌的菌株来源 亟±堂僮诠塞3塑堡偃整胞菌泛耐药扭剑研究表3.2泛耐药铜绿假单胞菌的科室分布表3-3泛耐药铜绿假单胞茵的标本来源质控菌株:大肠埃希菌ATCC25922和肺炎克雷伯菌ATCC700603均购自卫生部临床检验中心,改良Hodge试验标准菌株ATCCBAA.1705(阳性)和ATCCBAA.1706(阴性)由北京大学临床药理研究所李耘教授惠赠。3.1.1.2主要试剂和仪器水解酪蛋白琼脂(MH)、所有药敏纸片均购自英国OXOID公司;0.5mmol/L的EDTA溶液为本室保存;2xTaqMasterMix、DNAMarker(D2000)等均购自北京百泰克生物技术有限公司;所有引物均由上海生工生物工程公司合成。VITEK.2全自动微生物分析系统(法国梅里埃生物公司);ABl2720PCR扩增仪(美国ABI公司);InGenius凝胶成像分析系统(英国Syngene公司);DYY-7型电泳仪(北京六一仪器厂);.80℃超低温冰箱(中国海尔集团);高速冷冻离心机(Eppendorf公司)。 亟±堂焦途塞三锢堡遐皇胞菌泛耐荭扭盔』婴究3.1.1.3试剂及培养基配制①LB液体培养基:准确称量10.09胰化蛋白胨,5.09酵母提取物和10.09Nacl,量筒量取水1000mL,调PH值至7.4~7.6,121℃高压灭菌15min即可。②LB固体培养基:准确称量10.09胰化蛋白胨,5.09酵母提取物,10.09Nacl和15.09琼脂,量筒量取水1000mL,调PH值至7.4~7.6,121℃高压灭菌15min即可。③0.5MEDTA(PH8.0):准确称量EDTA-Na2·2H20(分子量为372.24)186.19溶于800mL已灭菌的双蒸水中,NaOH调PH值至8.O,定容至1000mL,121℃高压灭菌。4。C保存。④含100}tg/mL叠氮钠的麦康凯培养基:准确称量16.59麦康凯干粉加入300mL蒸馏水中,盖好,放入高压锅中,121℃高压灭菌20min,待高压锅气压为零时将其拿出,待冷却至60。C左右时,然后准确称量30.0mg叠氮钠加入15mL无菌蒸馏水中完全溶解,之后,将其加入到麦康凯培养基中,摇匀,用移液管移取20mL加入到已消毒的平板中,待其冷却放入4。C冰箱备用。⑤0.25l-tg/mL美罗培南的麦康凯培养基:具体的步骤同④,准确称量75.099美罗培南溶于15mL二甲基亚砜(DMSO)。3.1.1.4引物原液浓度按上海生工生物工程公司说明配制成10btmol/L,-20。C冰箱保存备用。使用时用无菌去离子水10倍稀释。3.1.1.5碳青霉烯酶初筛采用改良I-Iodge试验具体步骤同2.1.3.1。3.1.1.6金属酶表型初筛IPM双纸片增效法取0.5此EDTA加于亚胺培南纸片,待完全吸收后,将含有EDTA及未含有EDTA的亚胺培南纸片贴于涂有待测菌的MH平板上,二者间距2.0cm--一3.0cm,35℃过夜培养。结果观察与判断:含有EDTA与未含有EDTA的亚胺培南纸片的抑菌直径相差>=6mm为阳性。EDTA.亚胺培南协同法挑取35℃过夜培养的单个待检菌菌落,用生理盐水调成O.5麦氏浊度菌液,涂布于MH平板上,待完全吸收后,吸取5此EDTA于已消毒的空白纸片,待完全吸收后,将亚胺培南纸片和已加EDTA的纸片贴于MH平板上,二者间距1.5cm'~2.0era,35。C过夜培养。结果观察:出现靠近EDTA侧抑菌圈增大者为阳性。3.1.1.7接合试验①以待检菌作为供体菌,受体菌为耐叠氮钠的E.coliJ53,并将二者分别接种于血琼脂平板上,35℃培养16--一18h。②次日,挑取单个供体菌和受体菌分别接种于5mL新鲜LB液体培养基中, 亟±堂僮论塞3塑堡偃望胞菌泛耐药扭剑研究37℃,180rpm,摇床16~18h。③第三天,各取供体菌和受体菌0.5mL分别接种于4.5mL新鲜LB液体培养基中,受体菌37。C,180rpm,摇床培养4h,而供体菌放入培养箱35。C静置培养4h。④取供体菌和受体菌各0.5mL同时加入4mL新鲜LB液体培养基中,放入培养箱35℃过夜培养。⑤第四天,取过夜培养的混合菌lmL放入无菌离心管中,2500rpm离心5min,用加样枪吸弃大部分上清液,至剩余100I.tL上清液并悬浮沉淀,将悬浮液均匀涂布于含有100I.tg/mL叠氮钠和0.2599/mL美罗培南的麦康凯培养基上,培养箱中35℃过夜培养。⑥第五天,挑取单个红色的菌落接种于同批次含药平板上连续传代3次,直至性状稳定。同时,对可疑的接合子进行生化鉴定、药敏分析及相关的耐药基因检测,以判断接合是否成功。3.1.1.8基因检测DNA提取待测菌株35。C过夜培养。用接种环挑取单个纯的菌落于装有1009L无菌双蒸水的EP管中,盖上盖子,95。C水浴10min,.20。C静置5min,4。C,5,0009,5min,上清液即为DNA模板,置于.20℃冰箱保存备用。PCR按表3.4中的引物序列合成引物,PCR反应体系(25“L):12.59L2xTaqPCRMasterMix,DNA模板l此,上、下游引物各IIxL和无菌双蒸水9.5此。PCR反应条件:预变性94。C,5min,94。C变性30s_÷退火(目的片段=lkb时60℃,lmin)_÷72℃延伸30s,共30个循环;最后72℃再延伸5min。扩增产物经1%的琼脂糖凝胶电泳100V、30min后,用凝胶成像系统观察结果并拍照分析。表3.4PCR扩增和RT-PCR所用引物情况基因类型引物名称引物序列(5’_÷3’)退火温度(℃)p-内酰胺酶基因TEMSHVPERGESP1:AGGAAGAGTATGATTCAACAP2:CTCGTCGTTTGGTATGGCP1:GGTTATGCGTTATATTCGCCP2:TCCCGCAGATAAATCACCAP1:AGTCAGCGGCTTAGATAP2:CGTAFGAAAAGGACAATCP1:ATGCGCTTCATTCACGCACP2:C1:ATTTGTCCGTGCTCAGG弱甾鼹 亟±堂僮论塞三绳缝偃皇超萱泛醴药扭剑婴究VIMSPMSIMNDM-1(1)NDM-1(2)GIMCTX.MI(PCCARBVEBOXA.230XA.24OXA.51OXA.58DHAMOXP1:C1’ACCGCAGCAGAGTCTTTGP2:AACCAGTTTTGCCTTACCATP1:AAAGlTATGCCGCACTCACCP2:TGCAACTTCATGTTATGCCGP1:GCGTTTTGTTTGTTGCTCP2:TTGGGGATGTGACTACP1:TACAAGGGATTCGGCATCGP2:TAATGGCCTGTTCCCATGTGP1:GGCGGAATGGCTCATCACGAP2:CGCAACACAGCCTGACTTTCP1:GAATGTCTGGCAGCACACTTP2:TTGGCCTTGCTGTCCTTGATP1:CTrGTAGCGTTGCCAGCTTTAP2:CAGCCCAAGAGCTAATTGAGGP1:ATGATGACTCAGAGCATTCGCCGCTP2:TCAGAAACCGTGGGTTACGATTTTCGP1:GCTACACCTAGCTCCACCTTCP2:TCAGTGCTCTACAGAAAACCP1:AAAGCAGATCTTGTGACCTATTCP2:TCAGCGCGACTGTGATGTATAAACP1:GCGGTAATTl=AACCAGAP2:GCCTATGAGCCAGTGTTP1:TGTGCTGGTTATTCAAACP2:ATGGCTTCTCCTAGTGTCP1:TGACTTTAGGTGAGGCAATGP2:AAAGGTAATCGGTTATGTGCP1:ATAAGGCAACCACCACAGP2:眦GGGAGAACGCTACAAP1:,I:ATGGCACGCATTTAGACP2:AAACCCACATACCAACCCP1:AACITTCACAGGTGTGCTGGGTP2:CCGTACGCAI.ACTGGCTITGCP1:GCTGCTCAAGGAGCACAGGATP2:CACATTGACAIAGGTGTGGTGC13555755585649515258 亟±堂僮诠窒三锢堡偃皇胞菌泛耐荭扭剑研究CNf■2ACCACTlADC16S“斟A甲基armA化酶基因rmtArmtBrmtCrmtDNpmA氨基糖苷修饰酶基因撇(6伽aac(3)一IIant(3”)-I可移动性元件IntI基因IntIIP1:TGGCCAGAACTGACAGGCAAAP2:TTTCTCCTGAACGTGGCTGGCP1:AACAGCCTCAGCAGCCGGl’TAP2:TCGCCGCAATCATCCCTAGCP1:TCGGTAAAGCCGATGTTGCGGP2:CTTCCACTGCGGCTGCCAGTTP1:TAAACACCACATATGTTCCGP2:ACTTACTTCAACTCGCGACGP1:AGGTTGTTTCCATTTCTGAGP2:TCTCTTCCATTCCCTTCTCCP1:CTAGCGTCCATCCTTTCCTCP2:TTTGCTTCCATGCCCTTGCCP1:ATGAACATCAACGATGCCCTP2:CCTTCTGATTGGCTTATCCAP1:CAGCCTCCGTAAAGAATGP2:CGAAGAAGT久ACAGCCAAGP1:ATGAGCGAACTGAAGGAAAAACTGCP2:GCTCCAAAAGCGGCAGCACCTlAP1:CGAAGCACTTTCATACTGACGP2:CGCAATTTGTTCTTATTAGCP1:TTCATGTCCGCGAGCACCCCP2:GACTCTTCCGCCATCGCTCTP1:ACTGTGATGGGATACGCGTCP2:CTCCGTCAGCGTTTCAGCTAP1:TGATTTGCTGGTlACGGTGACP2:CGCTATGTTCTCTTGCTTTTGP1:P1:CCGAGGATGCGAACCACTTCP2:CCGCCACTGCGCCGTlACCAP1:P1:CACGGATATGCGACAAAAGGTP2:GTAGCAAACGAGTGACGAAATGP1:P1:GCCTCCGGCAGCGACTTTCAGP2:GATGCTGCCCAGGGCGCTCGPl:AAGTGTTCAGGGTGCTTCTGCGCP2:GTCATGTACATGATGACCATTT145455625558 亟±堂僮诠塞三鱼堡偃皇胞董泛耐药扭剑硒塞外排泵基因外膜蛋白基因TmCtnp513ISpa7ISEcplTnpUTnpA/Tn21TnsAMerAMexAmexBOprMOprD2ImPCRPse.16SrRNAPse—OprD2Pse.MexAP1:CGGTGATGATTTGCGAACGAP2:AGCATTCCGGTCGGCCTGTAP1:CGGYATWCCGSCSACRCTGCGP2:GCCACCTGYSBGCAGTCMCCP1:ATGTCGCTGGCAAGGAACGCP2:GGGTTCGCTGCGAG(讼TTGTP1:TCAGGCCTTCATCGCTGCCATCAGGP2:TAGGCGlACAGTGCTCTTTCAACGCAP1:CTTCATTGGCATTGATAAGTTAGP2:TGTAGCATCGGTTTCCCAGTTTCP1:CCAACTGATGGCGGTGCCTTP2:CGGlATGGTGGCTTTCGCP1:ATGCCACGTCGTTCCATCCTGTCCP2:CCGGGTCTGCTCCCGCTGGCCP1:GCAGCAGCCTTACAAGACGAGP2:GCCACATAGCGCAACTCCTCCP1:GACCAGCCGCAGTTCGTCTAP2:GCAGCASGAAAGCTGCTTCAP1:CGACCAGGCCGTGAGCAAGCAGCP2:GGAGACCTTCGCCGCGTTGTCGCP1:GGCCGGAACCAGTACACGP2:AATATCCTCAAGCGGTTGCP1:CTGAACGTCGAGGCCTTCP2:CTGGATCTTCGCGTAGTCCP1:ATGAAAGTGATGAAGTGGAGCGP2:TTACAGGATCGACAGCGGATAGP1:CCTACGGGAGGCAGCAGP2:ATTACCGCGGCTGCTGGP1:CGGCGACATCAGCAACACCP2:GGGCCGTTGAAGTCGGAGl:AP1:GGCGACAACGCGGCGAAGGP2:CCTTCTGCTTGACGCCTTCCTGC6062586215 3.1.1.9PCR扩增产物测序分析PCR产物送上海铂尚公司完成测序,结果采用BLAST软件进行分析,与Genbank上已公布的基因序列比对。3.1.2结果3.1.2.1碳青霉烯酶初筛采用改良Hodge试验改良Hodge试验阳性的有8株,阳性率为21.6%,阴性的有29株,占78.4%。图3-1改良Hodge实验结果1:阴性对照;2:阳性对照:3:临床标本。3.1.2.2金属酶表型初筛37株PDR-PA中,EDTA+IPM协同法阳性的菌株有5株,占13.5%;IPM双纸片增效法阳性的菌株有5株,阳性率13.5%;二种方法均阳性的有5株,均阴性的有32株。详见表3.5。表3.5不同方法金属酶初筛结果 亟±堂僮诠塞3缉堡偃皇胞菌湮耐药扭剑班究表3-6灭活酶基因检出情况表3.7灭活酶阳性基因的组合模式表3.837株泛耐药铜绿假单胞菌中可移动元件检测结果18 表3—931鲞兰堕垫塑塑兰堕堕主!塑垄垄笪!!丝垄查—————一阳性基因模式株数构成比(%)IntI+meLA+mp513+mpA/tn21+协pU25.4hltI+nlerA+tnp513+恤pA触l1129.7IntI+merA+娜513+nlpU38.1IntI+merA+呻5131437·8IntI+m融+缸l州12·7IIltI+merA+缸lpA舵1513·6IntI+merA12·7:盒i!———————————————————三7一—————丝型L—一20001000750500250100bpMPN356图3-3TEM-1基因PCR部分结果M:Mad(erD2000;P:阳性对照;N:阴性对照;3,5,6:临床菌株。19 20001000750500250100bpMPN图3-4PCR检测IMP基因凝胶电泳图谱M:MarkerD2000;P:阳性对照;N:阴性对照;3,13,14:临床菌株。1000750500250100bpMPN353637图3.5PCR检测VIM基因凝胶电泳图谱M:MarkerD2000;P:阳性对照;N:阴性对照;35,36,37:临床菌株。 20001000750500250100bpMPN31l131415图3-6annA基因PCR部分结果M:MarkerD2000;P:阳性对照;N:阴性对照;3,11,13,14,15:临床菌株。1000750500250100bpMPN123图3—7IntI基因PCR部分结果M:MarkerD2000;P:阳性对照;N:阴性对照;1,2,3,5:临床菌株。21 20001000750500250100bpMPN123图3.8merA基因PCR部分结果M:MarkerD2000;P:阳性对照;N:阴性对照;1,2,3:临床菌株。1000750500250100bpMPN12356图3-9mexB基因PCR部分结果M:MarkerD2000;P:阳性对照;N:阴性对照;1,2,3,5,6:临床菌株。 i苫ji:::i。2j0ci:::3:O:i;::4:0::::::::辈::::::50:::::::7:O:::::8:0:::::麓!::::1100:::::::1:10:::::::“。。i::::1i。:::::1:4。:i。:!。i:1:5。:!:::::1÷。::::”。::::i。:::2:00::::::12201:::::2艮。i::::”!::::::2:40::::::嚣o.::::2:60:。i:::2i。:。i。I:::涪。::::::290_:::310:i。。i:::”。:::l。。i3:30:::。i:嚣:::;1350I;:II:3乳;:;;::3融:::::3;80;::{:;;硝。::5::;:‘!。::::;‘÷。:。i:!:::‘争:!:‘b;;。i雠;!;:一i。:::;;a:S0;;:::::。I。i“:;:;!‘8j:,i。i;;嚣5:;:;;::S00;:::;;:.510-----.5:o........5:o...-.-5:o-..GTGTCTCGTGCTGTCTCGC::Z20:::i。n.::1魏:n。n。:i。⋯::n。。n撑::::1如::::;;1i。;::1笋:;;;;:榉!:;;。i!:200;:::::2:1。::::;::”o::r。}:;.i!!::2S01:{;::群}:;;r;:!汀翳;:2SO!::;::}300!:!;3妒};: 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。。iiijii:::::”:;-::::3:0::::::4-8CC:::s:GC^GCGCGCGCAGCA^GGcGu^L6b^60---.--●70●--_-●-G6TCGCTCG∈芎:::::::最:::::1巍GG:::疟溉::::::⋯:::::一。:::-G1÷。::·h:::::1融L:::CGCGCGCGCGCGCGACGG^G自^GGcGL^L06b4oo“o。。1j0::!:::。11i。::::1笋:::::-G:砖。:::::::2乳:::::2撕:::::2托:-G:::2魏GCGCAGCcG^GA^CGcGCGG^C^GG^GeGC^^c6cG6LA6ALbb^...240.-.----2jo---.----2j。----..2:o---_.-2:o--..__-_-29flm---.---300.-----.-310GTCeGCcGTrT!GTGCGCGCTCGTCGCcTGTGTCcGCTGc3”⋯⋯..420.⋯⋯4{o⋯⋯.4:o⋯⋯-.-‘”⋯⋯-“~-⋯-4”⋯..4:o⋯⋯CG^CGCG^GCGG^^G^CGCGCGCGC^CGCGCGCGC^GC^C^CG----.-1490m.-_._520--------5io-520一一.GG^GCGCGCGCGCC^C^CG^GCG^^^CCC^图3.14IntI基因测序图G^GGTG^G 2:o--.._.--2;0---..-.2.90-----,3_oQ-._-..3:o-。.--..-320-..._---.3.311-G^CG^CGecGCcGCC^CGC^^CCGjGCGeC^eG二^CG6CGjCC^^G3:o⋯⋯350......TCTGCTGTCG.3jo.......3:o⋯⋯.32气⋯..3:0-.....‘20....⋯‘!o⋯GCTGCTCGCGCGCGCTCGCGCGrGCGCTCCGGTGCTG出心。一k出如一b地一。图3.15MerA基因测序图一一10一一⋯..眢.........智...⋯.訾.......50.......磐⋯....70....GCGTGCTCG-fTCGCGTGCGCGCTCGTCGCGTCGCGCGTCTCG.智!.....印-...,.1笋,..:⋯.1.10.......1:0I.。....13.o.,.....1:o.⋯....1s。...-...^G^GTG^GT^GTGAG^G^GG^^TTG^^GGG-fG^TG^GG^6G^TT“^G^GGG^^1jo-.--.1:ol-..-_-110...-.i.-1:o.i.1.-.220GG^GG^^GT。^^^TG:GTGG’G^^TT^TG^_.-..≈o-.-_-..2:o-.---.2:o.-.__-.2}TCGCGCGCGCGCGCGTCTG-_.::..-。._2io-..-.-][2jo-.._=i-.-2:o。-,-:GGeT^Gi/tT^’G^T^iTlGT-2=o........2:o。....30%......能.....3;0-.TGTCGCGCGCrCGCTCTCGCGTCTG.-.330...._.3:o_-I-._-3:o...---320...----__3:o.----.380-.---.-3:。---I{oo...CGCTCTCTGCTCGCTCGCTGeTCGTCTCTCGCGTGC570S80CGCC^ACG-5:oI.....-6:o-.--GTCTCGCTCG6“....6:o........6:o...。...6:o.....。TGCGTCTGCGG[TCGCTCGCrGcCT27 16:o......6jo.-.....6:o.I...610-...-.6:o....-.7.D0..I.....已o......-.7:o...---710^GCAGCGCGCG^CCA6CGC^ACA^GGCAEGAC^CGAG6C^CC^AG^GCG^C.....710.....75i......710_......7:~.....78。_...7:o.......800.......81i.CGTCGCTGCTCGCTCGCG6GTGCGCGCTCGCGTCGTGGTC850860870880B90.---●-_‘■_--__●■。-_●-■-一--■1●_-⋯一-GCGCTGCGTGCGCGCGGGCGGCGCG图3.16OprD2基因测序图3.1.3讨论铜绿假单胞菌是临床上重要的条件致病菌,常引起免疫力低下患者的感染。近年来,随着广谱抗菌药物的广泛应用,多重耐药菌不断增多,甚至出现对碳青霉烯类、头孢菌素类、氨基糖苷类、肛内酰胺酶抑制剂以及喹诺酮类等均耐药(多粘菌素B除外)的泛耐药菌。泛耐药菌株的出现给抗感染治疗带来了极大的困难,使临床陷入无药可用的境地。文献报道,产生p.内酰胺酶(ESBLs、AmpC酶、碳青霉烯酶等)是PA对p.内酰胺类抗菌药物耐药的主要原因。p.内酰胺酶能水解青霉素类、头孢菌素类以及头霉素类等p一内酰胺类抗菌药物,Ambler分类法将其分为A~D四类:A类包括多种质粒编码的青霉素酶,如KPC、TEM.1、PSE.1、PER、SHVl;B类为金属酶,主要有IMP、GIM、SPM、ⅥM、GES以及新近发现的NDM.1等等;C类主要是染色体或质粒编码和amp复合操纵子调控的头孢菌素酶(AmpC酶);D类为苯唑西林酶,主要有OXA型。本研究对KPC、TEMl、PSE.1、PER、IMP、GIM、SPM、ⅥM、GES、OXA等多种耐药基因进行检测,结果发现IMP、ⅥM、TEM.1及CARB基因为阳性,阳性率分别为22.O%、19.0%、100.0%、37.8%。推测IMP、ⅥM、TEM.1及CARB基因可能是本地区PDR-PA对6.内酰胺类抗菌药物耐药的重要机制。氨基糖苷类抗菌药物因其具有抗菌谱广、疗效显著等优点,在临床上得到了广泛应用。然而,和其他抗菌药物一样,铜绿假单胞菌对其耐药率也不断增高。文献报道,导致其耐药的机制主要有产生氨基糖苷类修饰酶、16SrRNA甲基化28 酶等等。本研究中,所有菌株氨基糖苷修饰酶基因均为阴性,说明这些铜绿假单胞菌对其耐药可能与该机制无关。16SrRNA甲基化酶基因检测结果显示,8株携带armA基因和2株携带rmtB基因,提示16SrRNA甲基化酶在PDR-PA对氨基糖苷类耐药中可能起了十分重要的的作用。文献报道,16SrRNA甲基化酶基因主要存在于质粒上【351,并且能通过质粒进行传播。然而,本研究中的PDR-PA经反复多次质粒接合性试验均为阴性,说明本研究中菌株16SrRNA甲基化酶基因可能不存在于接合性质粒上,但具体的原因尚不清楚,有待进一步研究。可移动性元件包括整合子、质粒、转座子以及插入序列等,在耐药基因的水平转移方面起了十分重要的作用。本研究对13种可移动性元件进行了检测,结果发现,13种可移动性元件中,共检出tnpU、tnp513、tnpA/tn21、merA和IntI等5种,检出率依次为16.O%、81.0%、49.0%、100.O%和100.0%,其余8种基因均为阴性。这5种阳性基因共有7种组合,其中又以IntI+merA+tnp513模式为主(37.8%)。说明tnpU、tnp513、tnpA/tn21、merA和IntI等5种基因,尤其是IntI+merA+tnp513这几个基因的组合,在本地区PDR-PA的形成或传播方面发挥了十分重要的作用。3.2外排泵和外膜蛋白3.2.1材料和方法3.2.1.1实验菌株实验菌株同3.1.1.13.2.1.2仪器设备实验中仪器和设备见下表。设备与试剂厂商型号/货号超净台通风橱立式压力锅电热鼓风干燥箱分析天平组织匀浆器EP管移液枪涡旋振荡器高速冷冻离心机紫外光度仪苏州净化,中国苏州亿达,中国上海博讯,中国上海圣欣,中国Sartorius,Germany海门市爱苯德,中国AXYGEN,AmericaEppendorf,Germany海门其林贝尔,中国eppendorf,GermanySHIMADZU,JapanSW二CF.1FD单柜型YXQ--LS·-50101AS.3BL310,BL21S2mLPCR.02D.CMCT.150.ClmL/200沮m江|10皿}2.5rtLXW-80ACentrifuge5804RUV.2450 亟±堂僮论塞3铜堡偃堕胞菌泛耐药扭剑研究PCR循环仪荧光定量PCR循环仪核酸电泳仪凝胶成像仪TR/zolcDNA第一链合成试剂盒TaqDNAPolymeraseRealltimePCRMasterMix(SYBRGreen)RegularAgaroseG1050×TAE电泳缓冲液氯仿异丙醇70%乙醇(DEPC处理)0.1%DEPCWaterLabnet,America中山达安,中国北京六一,中国BIO.RAD,AmericaInvitrogen,AmericaKeyGen,ChinaFermentas,LithuaniaTOYOBO,JapanBiowest,SpainKeyGen,China南京化试,中国KeyGen,ChinaMultiGeneGradientDA7600DYY:6BGelDoeXR15596.026KGAl313EP0405QPK201111860KGM020500mLKGDN6KGDN45003.2.2.3外排泵的初筛琼脂稀释法测试加入CCCP前各菌株的MIC值及单独加入CCCP后各菌株的MIC值,配制亚胺培南和美罗培南的原液浓度分别为5,120p.g/mL和2,56099/mL及CCCP(10,000}tg/mL)。含抗菌药物平板的制备:将亚胺培南和美罗培南倍比稀释浓度分别为5,120I-tg/mL、2,560}tg/mL、1,280I-tg/mL、640txg/mL、320叫mL、160¨g/mL、80p.g/mL、401xg/mL、20I_tg/mL和2,56099/mL、1,280p.g/mL、64099/mL、320肛g/mL、1601.tg/mL、8099/mL、401.tg/mL、20]xg/mL,CCCP稀释为5,000txg/mL、4,00099/mL、3,00099/mL、2,0001.tg/mL、1,00099/mL,分别吸取lmL亚胺培南和美罗培南加入对应的已消毒的平板中,并用移液管移取19mL的MH置入其中,使其对应平板中含亚胺培南的终浓度分别为25699/mL、12899/mL、641xg/mL、3299/mL、16txg/mL、8}tg/mL、499/mL、2p.g/mL,美罗培南的终浓度分别为1281xg/mL、641xg/mL、321ag/mL、1699/mL,899/mL、499/mL、299/mL,边加边摇匀,待干,放入4"C冰箱备用。吸取不同浓度的CCCP2mL分另03rl入对应的平板中,并用移液管移取18mL的MH置入其中,使其对应平板中含CCCP的终浓度分别为500p.g/mL、400肛g/mL、30099/mL、20099/mL、1001.tg/mL,边加边摇匀,待干,放入4。C冰箱备用。经过初筛将CCCP的最佳浓度定为10099/mL。IMP+CCCP和MEM+CCCP平板的配制方法与上类同。 3.2.1.4基因检测PCR法检测MexA、MexB、OprM和OprD2基因,引物序列见表3-4,具体的步骤同3.1.1.8。3.2.1.5Real.TimePCR检测基因表达随机选取5株PDR-PA(实验组)和4株同期临床分离的敏感型PA(对照组),按表3-4合成引物,以各自的16SrRNA作为内参9采用RT-PCR的方法检测各自的MexA和OprD2基因。实验结果采用2。“CT的数据统计方法得出各自的相对表达量。3.2.1.5.1RNA的提取向已放菌的EP管中加lmLTRIzol试剂将其分解,室温静置5min,待核酸蛋白复合物完全分离;然后向其中加入氯仿0.2mL,混匀至无分层,室温静置3min;12,0009,4。C离心15min;取出离心管,用加样枪吸取上清转移至另一离心管,并向其中加入相同体积的异丙醇,混匀,室温静置10min;12,0009,4。C离心10min;弃上清,加入lmL75%的乙醇,混匀。12,0009,4。C离心10min;将上清完全吸尽;沉淀室温干燥2min--一5min,加入20N351xL的无RNase水将RNA沉淀完全溶解,.70℃保存备用。3.2.1.5.2RNA浓度和纯度的测定样本测定:用1xTEBuffer将样本稀释适当的倍数,测定稀释之后的样本分别在260nm和280nm的吸收值。浓度计算:浓度=--OD260x稀释倍数x0.041xg/I-tL。质量判断:OD260/2s0在1.8~2.1视为抽提的RNA的纯度很高,即符合实验要求。3.2.1.5.3eDNA第一链合成(25}tL体系):a)混匀各组分,然后2,000rpm离心20s;b)向0.2mlPCR管中,依次加入如下组份:RNA(2rtg)n此Random(9)(509M)2lxL无核酸酶的双蒸水至总体积159Lc)75。C保温5min,然后冰浴5min;d)随后,依次加入如下组份:RNase抑制剂(40u/gL)0.5此10xAMVReactionBuffer2.59LdNTPs(10mM)1.5此DTT(200mM)lgL逆转录酶(AMV)19L无核酸酶的双蒸水至总体积259Le)混匀之后2,000rpm离心20s; f)先在42*C保温1h,然后85。C保温10min,然后置于冰上5min;g)产物进行下一步实验。3.2.1.5.4Realtime.PCR试验a)上样:每个样本基因做3个复孔。b1反应体系:2XRealtimePCRMasterMix(SYBRGreen)模板(cDNA稀释10倍)引物MIX(F/R各为109M)DEPC水Totalc)PCR程序温度109L1gL21xL7“L20}tL95℃5min40cycle忽℃40see95℃95"C15se\/_{{\/\/沙升高o.I℃60℃20see45时间3.2.2结果3.2.2.1外排泵初筛的结果37株PDR-PA中,IPM在加入CCCP前后MIC值相差>-4倍的有13株,检出率为35.0%;MEM在加入CCCP前后MIC值相差>=4倍的有34株,检出率为91.9%。详见下表3.10。32 亟±堂僮途塞三锢堡偃望胞菌泛耐药扭剑研究表3—10外排泵初筛结果3.2.2.2RNA提取结果OD26/280均在1.8~2.I之间,抽提的RNA的纯度很高,符合实验要求。详见表3.11。表3.11RNA提取结果3.2.2.3MexA和OprD2基因mRNA表达量实验组MexA基因的相对表达量比对照组的明显上升畔0.018),实验组的OprD2基因的相对表达量比对照组明显下降(P=0.002)。结果见表3.12及图3.17。表3-12MexA和OprD2基因相对表达量(X士SD)组别MexAOprD2对照组0.70+0.133.18+0.60实验组1.95±0.480.94±0.08 MexAOprD2图3-17MexA和OprD2基因相对表达情况纩一『ij|图3-20RT-PCR检测OprD2的表达图34543210相对表达水平 亟±堂僮途塞当纲堡堰篁照菌泛盟药狃劐硒蕴3.2.3讨论外排泵系统自20世纪80年代发现其与细菌耐药有关以来[36】,越来越受到人们的重视。目前,在铜绿假单胞菌中已发现的外排泵系统至少有7种,包括MexAB—OprM、MexCD—OprJ、MexEF—OprN、MexX—OprM,MexJK·OprM,MexGHI.OpmD和MexVW-OprM等。其中MexAB.OprM系统是PA中最早被发现,且是迄今为止最具有临床意义的外排泵系统。它具有广泛的底物,不仅能介导多种抗生素耐药,包括喹诺酮类、氨基糖苷类、四环素、大环内酯类等,而且还能介导一些消毒剂耐受。因此,外排泵一旦所引起耐药能导致多重耐药甚至泛耐药。研究发现,外排泵的高表达可导致对多种抗菌药物耐药。本次研究用PCR法对MexAB.OprM外排系统中的mexA、mexB和OprM基因进行了检测,结果发现均为阳性,提示这些菌株存在外排基因系统。RT-PCR进一步研究发现,泛耐药菌mexA基因的相对表达量与敏感菌之间的存在统计学差异俨=O.018)。说明外排泵的高表达是这些菌株泛耐药的重要原因。文献报道,导致外排泵高表达的原因可能与mexR基因突变、表达量下降,产生生物膜等相关,但本次研究中导致外排泵高表达的具体机制尚不清楚,有待于进一步的研究。已有研究表明,外膜蛋白OprD2基因的缺失是导致其对亚胺培南耐药的主要原因【37】。Yoneyama等【381在对外膜蛋白OprD2基因突变的研究中发现,主要存在以下2种突变类型:一种为编码区395位到405位11bpDNA片段的小缺失;另一种为启动子上游519位到编码区685位的1204bpDNA片段的大缺失。国内,宋诗铎等【39】的研究也发现了以上两种突变。而沈晓强等【40】发现一株菌的目的基因OprD2反向插入了1328bp大小的片段导致OprD2基因缺失。本研究中所测PDR-PA菌株未发现OprD2基因的缺失、突变。铜绿假单胞菌的外膜蛋白是半渗透性的,可作为分子筛允许亲水性的小分子量物质通过。完整的外膜蛋白的渗透性依赖于孔蛋白的数量及特性,多数亲水性的小分子可利用该非特异性的通道渗入胞质,而一些渗透性不充分或渗透性较小的分子则通过特异的孔蛋白进入胞质。碳青霉烯类抗菌药物是一类分子量较小的亲水性13-内酰胺类抗菌药物,可经细菌外膜上具有通透性的孔蛋白OprC、OprD2、OprE等扩散,而OprD2孔通道为亚胺培南的特异性通道。近年来,有研究发现OprD2基因mRNA的表达量下降甚至缺失可以导致其对亚胺培南耐药Ⅲ,42l。为进一步研究铜绿假单胞菌对亚胺培南耐药的具体机制,本研究随机选取了5株PDR-PA和4株敏感菌株,并用RT-PCR的方法对其OprD2基因mRNA的表达量进行了检测,以16SrRNA作为内参。结果发现,实验组的OprD2基因相对表达量明显低于对照组(P=O.002)。说明外膜蛋白OprD2基因mRNA的表达量下降是 亟±堂僮诠塞3塑堡偃墼胞菌泛醴药扭剑砑窥铜绿假单胞菌对对亚胺培南耐药的重要原因。综上所述,本研究通过对外排泵系统表型初筛,外排系统和外膜蛋白基因的扩增以及mRNA的相对表达水平的研究,证实本地区泛耐药铜绿假单胞菌外排泵的高表达以及外膜蛋白表达下降是其泛耐药的重要分子基础。 4湖南地区泛耐药铜绿假单胞菌的分子流行病学研究4.1材料与方法4.1.1实验菌株实验菌株同3.1.1.1。4.1.2试剂与仪器苯甲基磺酞氟(PMSF)、低熔点琼脂糖购于sangon公司;限制性内切酶XbaI、蛋白酶K、SDS.TE缓冲液、TE缓冲液、TBE液均购自Promega公司。PFGE所用Marker菌株(沙门菌H9812)为中国CDC传染病所呼吸道实验室所赠。脉冲场凝胶电泳仪为Bio.RadCHEFMapperXA系统;凝胶成像仪为VL(ViberLourmat)系统;PCR扩增仪为MJ公司的PTC200型;测定培养细菌浓度(A值)的光度计为bioMerieuxViteColorimeter公司产品;4.1.3方法4.1.3.1实验步骤以沙f-J]蓊H9812作质控菌,主要通过菌落收集、凝胶包埋、溶菌酶与蛋白酶K消化、限制性内切酶内切、电泳、成像等步骤处理,然后进行软件分析4.1.3.1.1细菌处理菌株35℃过夜培养,挑取单个菌落连续3代进行纯培养,用接种环刮取血平板培养基上生长良好的菌落3~5环,置于2.5mL圆底塑料离心管底部,力H1509L细胞悬浮缓冲液,洗脱,振荡混匀,12,0009高速离。t∑,2min,收集菌块。4.1.3.1.2样本制备取0.5麦氏浊度的菌液于2.5mL塑料离心管底部,12,0009离,t],2min,弃上清,加150止TE缓冲液将其重悬。取重悬液751xL与等体积的1.5%低熔点琼脂糖(用前微波炉熔化,并水浴平衡至55。C)混匀。准确量取混合液100pL注入PFGE模(1mmx5mmxlOmm)中,4"C静置至其凝固硬化。用模上配备的梳齿将低熔点琼脂糖块轻轻推入2。5mL塑料离心管中,加500此TE缓冲液,209L溶菌酶(终浓度为lmg/100mL),37℃水浴至少6h。弃溶菌酶液,用TE缓冲液清洗1次,加0.5%SDS—TE缓冲液500斗L、蛋白酶K液20此,55。C消化至少18ho弃蛋白酶K液,加PMSF液5009L灭活蛋白酶K30min。弃PMSF液,用TE缓冲液清洗5次,每次30min。加500“LTE缓冲液,贮于4"C待用。4.1.3.1.3限制性内切酶消化用无菌手术刀将经蛋白酶K消化后的细菌.琼脂糖凝胶块切成 lmmx5mmxlmm的薄片,取l片置于0。5mL塑料离心管的底部,加入0.5U/pLXbaI。200pL限制性内切酶缓冲液,37。C酶切至少12h。弃缓冲液,加500此TE缓冲液清洗,洗2次,4℃贮存备用。4.1.3.1.4脉冲场凝胶电泳将酶切后的琼脂薄片载入1%PFGE琼脂糖凝胶(O.5xTBE配制,WⅣ)中,以沙门菌H9812作质控菌,电泳在BIO.RADGenePathTM系统中进行,电泳条件:O.5xTBE缓冲液、温度12。C、电场夹角120。,电压5.5V/cm、脉冲时间O.5~12s16h,20--一30s7h,30~70s2h。电泳后,EB染色30min,以GelDoc2000凝胶成像系统成像。4.1.3.1.5PFGE模式分析参照文献的标准,PFGE图谱用BioNumerics2数据分析软件进行分析,应用算术平均数的非加权成组配对法(unweightedpair-groupmethodwitharithmeticmeans,UPGMA)对各菌株进行聚类分析并绘制数值分类树状图。4.1.3.2结果判定PFGE结果解释按照美国疾病和预防控制中心(CDC)推荐的标准【43】和参考文献【441,结合BioNumerics2软件的UPGMA方法进行。4.2结果37株泛耐药铜绿假单胞菌可分为21个PFGE型。A型最多(5株),分别来源于湘雅医院(3株)和湘雅三医院(2株),其中带型完全相同的A1亚型在这两所医院同时存在,分别为1株;B型和C型各3株,均来自湘雅医院;D型3株分别来源于长沙市第三人民医院(2株)和浏阳市中医院(1株);E型3株分别来源于湖南省第二人民医院(2株)和湘雅三医院(1株),其中带型完全相同的E1亚型在这两所医院同时存在,分别为1株;F型3株全部来自浏阳市人民医院;G型2株均来源于湘雅三医院;H型2株分别来源于湘雅医院和湘潭市中心医院;其余型别:I、J、K、L、M、N、O、P、Q、R、S、T、U等均为1株,分别为湘雅医院(8株)、郴州市第一人民医院(1株)、长沙市第一人民医院(1株)、浏阳市中医院(1株)、湘雅三医院(I株)、长沙市第三人民医院(1株)。结果见表4.1、4.2,图4.1、4.2。 表4-137株泛耐药铜绿假单胞茵PFGE型别及亚型分布注:xy(湘雅医院),f3(湘雅三医院),YY(浏阳市人民医院),CS(长沙市第三人民医院),Se(湖南省第二人民医院),xt(湘潭市中心医院),lz(浏阳市中医院)。表4.237株泛耐药铜绿假单胞菌PFGE型别在各医院中的分布医院名称型别湘雅医院湘雅三医院长沙市第三人民医院浏阳市人民医院省第二人民医院浏阳市中医院长沙市第一人民医院湘潭市中心医院郴州市人民医院A1、A2、。B、C1、C2、H1、I、L、N、P、Q、R、T、UA1、A3、E1、G1、G2、OD1、SF1、F2E1、E2D2、MKH2J39 亟±堂僮途塞垒塑直丝区逢随药塑堡篮堕照萱盟佥王遂堑瘟麴123M5678M9101112部分)f33lf332xy37xy39xyZ6xy2x't25Xy3czl7cy23xy38Iz2lxy35se27f329se28f330yyl83,3,19yy20xy8xylOxy7xy40f333f334csl3csl5iz22xy5xy6xy9xylCSl4xyl2Ixyl1Ixy36图4-237株泛耐药铜绿假单胞菌UPGMA方法分析结果¨Ⅲ¨盯●●●●⋯⋯⋯¨¨⋯川¨茎兰川茎三三二一一㈣⋯三三㈣⋯l●l●1¨●Hi¨m●¨¨m¨¨川¨●●l●l●Im川¨¨—ⅢⅢ—¨¨.=。.。●。。¨●¨U⋯¨●●●●●mⅢ洲Ⅲ叫川●¨一懈¨¨¨¨¨-一¨t㈨川⋯⋯㈨¨⋯¨n¨¨11Imm-■●I¨i¨●仆lnl¨盯1●10●●●l●¨●⋯川⋯址⋯⋯“㈨吣 4.3讨论了解一个地区流行菌株的耐药特征,遗传背景,明确流行环节,切断传播途径,是预防和减少耐药菌感染的重要策略。PFGE分型技术是研究细菌分子流行病学特征的重要手段。铜绿假单胞菌的全基因组DNA经过限制性内切酶酶切后,酶切片段在特定的电泳系统中通过电场方向不断交替变换及合适的脉冲时间等条件下而得到良好的分离,得到特定的PFGE图谱。PFGE分辨力很高,仅次于测序技术,并且在重复性、分辨率、特异性以及准确度上均较理想而被誉为细菌分子分型的“金标准”【45】。本研究显示,37株PDR.PA分布在21个不同的PFGE型别中。其中A型最多,为5株,仅占13.5%。说明本地区泛耐药铜绿假单胞菌没有非常集中的流行克隆,仅以散发形式存在。值得注意的是,A型出现在湘雅医院和湘雅三医院组成,D型出现在长沙市第三人民医院和浏阳市中医医院组成,E型在湖南省第二人民医院和湘雅三医院均存在,而H型在湘雅医院和湘潭市中心医院同时存在。说明本地区不同医院之间的PDR.PA存在较强的亲缘关系。A1亚型同时出现在湘雅医院和湘雅三医院,E1亚型分别出现在湖南省第二人民医院和湘雅三医院。同时,部分医院不同病区之间存在相同的亚型。由于同一亚型具有完全相同的PFGE指纹,说明这些菌株之间具有完全形同的遗传背景,提示PDR-PA在医院之间以及医院内部不同病区之间存在克隆传播,应引起临床和感染控制部门的高度重视。铜绿假单胞菌广泛存在于自然界,且常见于医务人员的手、医院空气、医疗器械(如雾化器、各种插管)和工具设备(如厕所门柄、拖布)等处,可通过多种途径,包括内源性和外源性(医源性感染,环境感染、交叉感染)等途径引发感染;此次研究未能对医护人员和环境中分离的泛耐药菌株与来自患者的菌株进行比较,值得以后进一步研究。41 亟±堂焦论窒5结论5.1本院碳青霉烯耐药鲍曼不动杆菌呈严重的多重耐药性,可供选择的抗菌药物十分有限。5.2本研究共筛选出8株PDR.AB和37株PDR-PA,说明本地区已出现泛耐药菌株。5.3IMP、VIM、TEM、CARB、armA、rmtB等灭活酶以及外排泵MexAB.OprM的高表J抑OprD2的表达下降是导致本地区铜绿假单胞菌泛耐药的重要原因。5.4tnpU、tnp513、tnpA/tn21、merA和IntI等可移动性元件可能在铜绿假单胞菌耐药性传播方面发挥了重要作用。5.5本地区泛耐药铜绿假单胞茵呈散发形式存在,但在不同医院以及同一医院不同病区之间有克隆传播。42 殛±堂僮途塞叁耋窒越参考文献HsuehPR,TengLJ,ChenCY,eta1.Pandrug.resistantAcinetobacterbaumanniicausingnosocomialinfectionsinauniversityhospital,Taiwan[J].EmergInfectDis,2002,8(8):827—832.DeptanoA,DenisO,PoirelL,eta1.Molecularcharacterizationofanepidemiccloneofpanantibiotic—resistantPseudomonasaeruginosa[J].JClinMicrobiol,2005,43(3):1198-1204.FalagasME,BliziotisIA,KasiakouSK,eta1.Outcomeofinfectionsduetopandrug‘resistant(PDR)Gram-negativebacteria[J].BMCInfectDis,2005,5:24.UrbanC,TiruvuryH,MarianoN,eta1.Polymyxin.resistantclinicalisolatesofEscherichiacoli[J].AntimicrobAgentsChemother,2011,55(1):388.389.胡付品,朱德妹,汪复,等.2011年中国CHINET细菌耐药性监测[J】.中国感染与化疗杂志,2012,12(5):321.329.FalagasME,RafailidisPI,MatthaiouDK,eta1.Pandrug.resistantKlebsiellapneumoniae,PseudomonasaeruginosaandAcinetobacterbaumanniiinfections:characteristicsandoutcomeinaseriesof28patients[J].IntJAntimicrobAgents,2008,32(5):450—454.KuoLC,YuCJ,LeeLN,eta1.Clinicalfeaturesofpandrug.resistantAcinetobacterbaumanniibacteremiaatauniversityhospitalinTaiwan[J].JFormosMedAssoc,2003,102(9):601—606.肖永红,沈萍,魏泽庆,等.Mohnarin2011年度全国细菌耐药监、狈IJEj].中华医院感染学杂志,2012,22(22):4946.4952.ThomKA,JohnsonJK,LeeMS,eta1.Environmentalcontaminationbecauseofmultidrug-resistantAcinetobacterbaumanniisurroundingcolonizedorinfectedpatients[J].AmJInfectControl,2011,39(9):711-715.HeC,XieY,ZhangL,eta1.IncreasingimipenemresistanceanddisseminationoftheISAbal—associatedblaOXA-23geneamongAcinetobacterbaumanniiisolatesinanintensivecareunit[J].JMedMicrobiol,2011,60(Pt3):337.341.SardelicS,BedenicB,Colinon—DupuichC,eta1.Infrequentfindingofmetallo.beta-lactamaseVIM--2incarbapenem.-resistantPseudomonasaeruginosastrainsfromCroatia[J].AntimicrobAgentsChemother,2012,56(5):2746.2749.Garcia—CastilloM,DelCR,MorosiniMI,eta1.WidedispersionofSTl75clonedespitehighgeneticdiversityofcarbapenem.nonsusceptiblePseudomonas431JD1)_Ⅲ园吲刚阿嘲网嘲网m 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综述泛耐药铜绿假单胞菌耐药机李军邹明祥制研究进展审校摘要:铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa,PA)是临床上最重要的院内获得性感染的条件致病菌之一。近年来,随着广谱抗菌药物的广泛使用,PA的耐药率不断上升,出现了多重耐药(Multi.drugresistant,MDR)甚至泛耐药(Pan-drugresistant,PDR)菌株。泛耐药菌几乎对临床常用抗菌药物均耐药,极大的增加了临床抗感染治疗的难度和患者的住院费用。PA的耐药机制十分复杂,本文将从产生灭活酶、作用靶位的改变、膜渗透性降低、外排泵系统以及生物膜等方面对PDR-PA的主要耐药机制作一综述。关键词:铜绿假单胞菌;泛耐药;耐药机制1h●n●·●■n’IFrogresslonoIreslstancemecnanismsotDan-drugresistantPseudomonasAbstract:Pseudomonasaeruginosa(PA)wasoneofthemostimportantclinicalopportunisticpathogens.Inrecentyears,alongwiththewideapplicationofbroad-spectrumantimicrobialagents,resistantrateofPaeruginosaelevatedalot.What’Smore,itledtotheemergenceofmulti—drugresistant(MDR)andevenpan—drugresistant(PDR)strains.ThesePDRstrainswerealmostresistanttoallofcommonlyusedantibiotics,thusgreatlyincreasedthedifficultyoftreatmentandinpatientcosts.TheresistantmechanismsofPDR-PAwereextremelycomplicated.Thisreviewwilldiscussfivemechanisms,includingproducingofmactlvatorenzymes,claanglngotettecttarget,decreasingofmembrane●n』一●^。47 permeability,earningofeffiuxpumpsystemsandformationofbiofilm.Keywords:Pseudomonasaeruginosa;Pan—drugresistantbacteria;Resistantmechanism泛耐药(Pan.drugresistant,PDR)菌是指对目前临床上所有常用抗菌药物均耐药(多粘菌素和/或替加环素除外)的一类病原菌。这些药物包括青霉素类、头孢菌素类、碳青霉烯类、B.内酰胺酶抑制剂复合药物、氨基糖苷类以及喹诺酮类等。近年来,PDR细菌已在多个国家被检出,并且在部分地区出现了暴发性流行【l训。Falagas等【5J。人的研究表明,泛耐药革兰阴性菌(Pan.drugresistantgram.negativebacteria,PDR.GNB)感染的死亡率为33.3%,而台湾16J的一项研究竟高达60.0%。国内,2011年CHINET的监测结果显示【_71,我国临床分离鲍曼不动杆菌、铜绿假单胞菌(Pseudomonasaeruginosa,PA)以及肺炎克雷伯菌均出现了泛耐药菌株,且有上升趋势,其中PDR.PA检出率为1.8%,比2010年的有所增长。PDR.PA具有极广的耐药谱,其感染后的死亡率高,一旦感染,临床治疗将十分棘手。而PDR-PA的耐药机制十分复杂,几乎目前所知的细菌主要耐药机制均可参与其耐药过程。归纳起来可分为以下5类:①产生灭活酶,包括B.内酰胺酶(比如ESBLs、AmpC酶和碳青霉烯酶等)、氨基糖苷类修饰酶以及16SrRNA甲基化酶等;②药物作用靶位的改变;③膜渗透性降低;④外排泵系统;⑤产生生物膜。鉴于此,现将有关PA的耐药机制做一综述。1产生灭活酶1.1B一内酰胺酶产生p.内酰胺酶是导致PA获得性耐药的主要机制之一。p.内酰胺酶具有较强的水解活性,能够破坏已渗透入菌体内的B.内酰胺类抗菌药物的活性。按分子生物学分类可将其分为A~D4类,其中A、C、D类以丝氨酸为基础的机制发挥作用,而B类作用时需要锌等金属离子的参与,故又称为金属酶(MBL)t引。Bush等【9】按照p.内酰胺酶的功能不同将其分为四群:第一群为头孢菌素酶,不被克拉维酸抑制,属于分子生物学分类中的C类;第二群为青霉素酶、头孢菌素,相对应的分子生物学类型为A类和D类;第三群是以锌为基础的酶或称金属B.内酰胺酶,所对应的分子生物学类型为B类;第四群是不能被克拉维酸抑制的青霉素酶,目前尚无相对应的分子生物学类型。近年来,随着广谱抗菌药物在临床上的广泛应用,PA中出现了多种针对抗 菌药物的3-内酰胺酶,主要有AmpC酶、ESBLs、金属13-内酰胺酶等。1.1.1AmpC酶AmpC酶主要是由革兰阴性杆菌产生的染色体介导的头孢菌素酶,其编码基因是ampC。AmpC酶属于Bush分类中的第一群,分子结构分类法的C类,因其能被多种B.内酰胺类抗菌药物诱导而产生,故又被称作诱导酶。AmpC酶的表达受复合操纵子amp的调控。Amp主要由ampC,ampD,ampE,ampG和ampR基因构成【l01。其中ampC是结构基因,负责编码产生AmpC酶。ampR与ampC相邻排列,能反向编码AmpC酶的转录调节因子AmpR,属于LysR调节家族。ampD位于染色体的远端,编码AmpD,能负性调节AmpC酶的表达。ampE位于ampD的下游,编码的AmpE蛋白能感受外界的信号。ampD基因的突变是导致诱导性AmpC酶高表达的主要原因。但是,近年来有研究发现AmpR基因的突变频率虽然低于ampD,但同样能导致AmpC酶的高表达,当二者同时突变时,AmpC酶的表达量进一步增加。最近,Balasubramanian等【ll】研究发现调节因子AmpR在PA中还可作为一个广泛的调节因子,不仅能调节AmpC酶的表达,而且还能调节信号分子AlgT/U和监控群体感应系统(Quorumsensing,QS)介导的毒力因子的表达,进而影响PA所引起的慢性感染和生物膜的形成;不仅如此,AmpR还能通过影响外排泵MexAB.OprM、MexEF.OprN和MexGHI.OpmD的表达导致对其它非D。内酰胺类抗菌药物耐药。因此,Balasubramanian认为调节因子AmpR可能作为抗菌药物的一个潜在作用靶点。AmpG作为D.内酰胺酶诱导表达的一个信号转导蛋白,与AmpC酶表达存在密切关系。Zamorano等【12】研究发现,AmpG基因功能受到抑制,可以恢复菌株因OprD缺失且AmpC酶高表达导致耐药的活性。自美国学者在1988年发现了第一个质粒介导的AmpC酶(pAmpC酶)后,质粒型AmpC酶引起了广泛关注。pAmpC酶与染色体型AmpC酶的不同之处在于,它可持续高水平表达,且可通过接合、转化等方式在同种菌间或不同种菌间转移,造成耐药性的广泛传播。目前已发现的质粒介导的AmpC酶主要存在于沙门菌、肺炎克雷伯菌、弗劳地枸橼酸杆菌、奇异变形杆菌、产气肠杆菌、大肠埃希菌等。尽管PA中的AmpC酶主要为染色体型,但是,近年来,也有在PA中检出质粒型AmpC酶的报道。Zhu等【13】首次在PA中检出CMY-7型质粒介导的AmpC酶。李智山等【14】和金保富等【l5】从PA中检出了质粒型AmpC酶DHA基因。AmpC酶对第三代头孢菌素、头霉素和单胺类耐药,3-内酰胺酶抑制剂具有活性,但对碳青酶烯类和第四代头孢菌素没有作用【161。1.1.2ESBLsESBLs包括A、D类p.内酰胺酶,能水解氧亚氨基D.内酰胺类抗菌药物和 单环p.内酰胺类抗菌药物,并可被p.内酰胺酶抑制剂所抑制的一类D.内酰胺酶u¨。临床表现为对脲基青霉素、羧基青霉素、氨曲南和第一~四代头孢菌素等耐药。ESBLs由质粒介导,多由普通的D.内酰胺酶基因(TEM、SHV等)突变而来。到目前为止,在全世界范围内已经发现的ESBLs有200多种[18】。A类ESBLs主要包括TEM、PER、SHV、VEB、BEL和GES/IBC等6型,BEL.1是比利时于2005年从一临床PA菌株中发现的,该基因由染色体编码,位于I类整合子Inl20上。D类ESBLs,即苯唑西林酶(oxacillinases,OXA),种类繁多,大约有60多种突变衍生物。Sanschagrin等将PA中发现的OXA型酶分为I~V5种类型。1.1.3碳青霉烯酶碳青霉烯酶包括A、B、D类D.内酰胺酶,能水解碳青霉烯类抗菌药物,如亚胺培南、美罗培南等。PA中A类和B类B.内酰胺酶均有所发现,但是,D类p.内酰胺酶至今并没有被检出的报道。A类p.内酰胺酶并不多见,存在于染色体上或质粒上,主要包括GES、IMI、KPC、NMC.A和SME等,其中以KPC多见,至今,在PA中只发现了KPC、GES两种D.内酰胺酶【l91。B类金属酶是至今导致PA对碳青霉烯类抗菌药物耐药的主要原因。迄今为止,在PA中已发现的金属酶有VIM、IMP、SPM、GIM、NDM、AIM和SIM等,其中以VIM和IMP为多见【20J。VIM和IMP的分布存在地区差异,IMP主要分布在亚洲,而VIM主要在欧洲,但是VIM.2却在五大洲均有其分布【l9|。NDM.1是近年来新发现的一种金属D.内酰胺酶。Yong等【2lJ于2009年在肺炎克雷伯菌中首次发现了NDM.1基因。随后,Kumarasamy等【22】研究发现NDM.1存在于接合性质粒上,并且可以在同种及不同种菌间转移,受到了广泛关注。NDM.1最早发现于肺炎克雷伯菌,现已在大肠埃希菌、鲍曼不动杆菌、阴沟肠杆菌、粪肠球菌等多种菌中有其检出的报道,包括铜绿假单胞菌【2引。1.2氨基糖苷类修饰酶和16SrRNA甲基化酶1.2.1氨基糖甙类修饰酶(AMEsl通过对药物的基团进行修饰,使药物失活。根据AMEs类型不同将其分为氨基糖苷乙酰转移酶(AAC)由、氨基糖苷核苷转移酶(ANT)和氨基糖苷磷酸转移酶(APH)等3种类型,分别由aac基因、ant基因以及aph基因编码。经修饰酶修饰后的氨基糖甙类抗菌药物可通过与未经修饰的氨基糖甙类竞争进入菌体内的转运系统、使氨基糖甙类抗菌药物不能与核糖体结合以及失去了干扰核糖体功能的作用等方式影响氨基糖苷类抗菌药物的抗菌活性。目前已发现的AMEs超过50多种,且其编码基因序列多已被测定。在PA中已报道的类型有:AAC(3).I、AAC(3).II、AAC(3).III、AAC(3).IV、AAC(6’).I、AAC(67).II、ANT(27).I、 ANT(37)-I、ANT(4’)-II、ANT(4’)-IIa、ANT(47)一IIb、APH(3’)-I、APH(3')一II、APH(37).IIb、APH(3’).Ⅵ及APH(2’),其中以AAC(6’).II和ANT(2’)一I最为常见【24J。1.2.216SrRNA甲基化酶近年来,研究发现,质粒介导的16SrRNA甲基化酶是导致氨基糖苷类抗菌药物耐药的另一重要机制,通过与30S核糖体结合,干扰了与该部位结合的氨基糖苷类抗菌药物,导致其耐药,能介导对庆大霉素、阿米卡星、妥布霉素等耐药。目前,已发现的16SrRNA甲基化酶基因有armA、rmtA、rmtB、rmtC、rmtD、rmtE、Nmph等7种,但是,在PA中仅检出ArmA、RmtA、RmtB和RmtD四种。近年来研究发现16SrRNA甲基化酶基因多与其它耐药基因共同介导细菌耐药。Castanheira掣251发现RmtD与SPM.1金属酶共存,Gurung等【261发现ArmA与IMP.1同时参与PA对抗菌药物耐药。2改变药物的作用靶点抗菌药物作用靶点在细菌生长与存活中起非常重要的作用。它的减少或缺失,抗生素压力等引起其突变均可导致药物与细菌的亲和力下降甚至丧失,从而使细菌逃避抗菌药物的作用。2.1青霉素结合蛋I兰t(penicillin.bindingproteins.PBPs)PBPs是位于细菌内膜的一组膜蛋白质,参与细菌细胞壁肽聚糖的合成,并保持细菌细胞壁正常形态及功能。其本质上是羧肽酶、转肽酶或糖基转移酶。p.内酰胺类抗菌药物能专一性地与其结合,干扰细菌细胞壁的合成,从而达到杀灭细菌的作用。目前认为基因突变使细菌上PBPs的数量减少,或者PBP的结构改变或产生一种新的PBPs,从而导致细菌对抗菌药物耐药。Leqaree等【27】发现在PA上诱导编码PBP2的基因pbpA突变可以使PA对B.内酰胺类抗菌药物产生耐药。Moya等【28J发现PBP还可与AmpC酶、外排泵、OprD一同介导广谱耐药PA的出现。2.2DNA促旋酶和DNA拓扑异构酶IVDNA促旋酶和DNA拓扑异构酶IV是氟喹诺酮类抗菌药物的主要作用靶点。DNA促旋酶是由两对GyrA和GyrB亚基组成的四聚体,其编码基因分别是gyrA和gyrB,主要参与DNA超螺旋的形成。gyrA基因突变是导致PA对氟喹诺酮类药物耐药的主要原因,以rn卅83_Ile位点的突变【291多见。DNA拓扑异构酶Ⅳ是由两对亚基ParC和ParE组成的四聚体,其编码基因分别是parC和parE,主要参与细菌子代染色质分配到子代细菌中。parC基因突变以Ser-87---,Leu最为多 亟±堂僮论文绽述见,值得注意的是,parC突变常发生在gyrA突变的基础上。DNA促旋酶和DNA拓扑异构酶Ⅳ结构的改变可引起空间上的障碍,阻止氟喹诺酮类药物进入作用区,从而产生耐药。gyrA基因的突变是PA对氟喹诺酮类药物耐药的主要机制,而parC基因突变主要是在此基础上使其耐药性进一步上升。此外,有研究表明,氟喹诺酮类药物、酶及DNA三者的相互作用也可受物理、化学变化的干扰产生耐药。3主动外排机制与药物渗透障碍3.1外膜通透性下降细菌的耐药与其外膜的通透性关系十分密切。而PA的外膜由许多微孔蛋白孔道组成,仅允许分子量小于(350~400)×103的糖类通过[30】,故其通透性低,仅为大肠埃希菌的1%~8%左右,这也是导致PA对大多数抗菌药物存在固有耐药的主要原因。PA外膜上有多种外膜蛋白,包括OprC、OprD2和OprEl等,这些蛋白可形成小孔通道,抗菌药物须经这些外膜通道进入菌体内与其作用靶位结合发挥抗菌作用。Quinn等【3lJ在1986年首次报道了外膜蛋白在PA对碳青霉烯耐药中的作用。现已证实,OprD2是亚胺培南为代表的碳青霉烯类抗菌药物(美罗培南除外)进入PA体内的特异性通道【321。研究发现外膜蛋白基因OprD2的缺失是导致PA对亚胺培南耐药的主要机制之一。Yoneyama等【30】研究发现外膜蛋白OprD2基因突变主要存在2种类型:一种为编码区395位到405位11bpDNA片段的小缺失;另一种为启动子上游519位到编码区685位的1204bpDNA片段的大缺失。国内,宋诗铎等【33】的研究也发现了以上两种突变,并且有5株菌虽然对亚胺培南耐药,但是均未发现以上两种突变,推测可能存在其它类型的耐药机制,如产生p.内酰胺酶或者其它的耐药机制。近年来有研究发现外膜蛋白OprD2的表达下降甚至缺失同样也能导致亚胺培南耐药,但是Ocampo.Sosa等【34】研究发现,当IPM的MIC值为0.06"-'4}tg/ml时同样存在外膜蛋白OprD2的表达下降的现象。具体的原因尚不清楚,可能与外排泵或者其它耐药机制有关系。3.2主动外排系统外排泵系统自20世纪80年代发现其与细菌耐药有关以来13引,越来越受到人们的重视。PA的主动外排系统主要由外膜通道蛋白(如OprM、OprJ和OprN等)、内膜蛋白(如MexB、MexD和MexF等)和连结蛋白或辅助蛋白(如MexA、MexC和MexE等)三部分构成,共同形成一个复合体,并开口于细菌的外膜,使药物直接泵出到菌体外。 近年来,随着分子生物学的不断发展,新的外排泵系统不断被发现,到目前为止,在PA中已发现的外排泵系统有MexAB.OprM、MexCD-OprJ、MexEF.OprN、MexX—OprM、MexJK.OprM、MexGHI-OpmD和MexVW-OprM等。其中MexAB.OprM系统是PA中最早被发现的,并且是迄今为止最具有临床意义的外排泵系统。它具有广泛的底物,不仅能介导多种抗生素耐药,包括喹诺酮类、氨基糖苷类、四环素类、大环内酯类等,而且还能介导一些消毒剂耐受。MexAB.OprM系统是唯一能在野生型PA中能表达的外排泵系统。研究发现,MexAB.OprM的高表达能介导细菌耐药,而MexR基因突变被认为是其高表达的主要原因。近年来有研究发现即使MexR基因发生了突变,但是并不介导MexAB.OprM高表达的现象,可能与QS系统有关系【36】。Minagawa等【37】的研究发现MexAB.OprM能通过外排信号分子3-oxo.Cn-HSLs与QS系统相互影响,二者共同作用导致细菌耐药。近年有研究还发现一些抗菌药物,如阿奇霉素等能使MexAB.OprM的表达下泽弱1。一般的实验室条件中,MexCD.OprJ、MexEF.OprN和MexXY-OprM并不表达或表达量很低,需要通过诱导才能表达。MexCD.OprJ型外排泵只在nfxB型突变株中表达,对氯霉素、新生霉素、大环内酯类抗生素、四环素类、喹诺酮类和头孢菌素类耐药,但对大量B.内酰胺类抗菌药物高度敏感。MexEF.OprN型外排泵仅在nfxC型突变株中表达,对氯霉素、喹诺酮类、甲氧苄啶及头孢菌素类产生耐药性。表达MexXY-OprM型外排泵的菌株对氨基糖苷类、氟喹诺酮类和红霉素耐药。虽然MexXY-OprM是近来研究最多的一类主动外排泵系统,且可介导PA的固有耐药和获性耐药,但是大量的资料显示MexAB.OprM仍然是PA中最重要的外排系统。4生物被膜(Biofilm,Br)的形成随着生物材料在临床上的广泛应用,尤其是在ICU中气管插管和静脉置管的增多,PA极易形成生物被膜以逃避机体的免疫系统和抗菌药物的杀菌作用。生物被膜是指细菌粘附于生物材料或机体腔道表面,分泌胞外多糖(exopolysacchride,EPS)、脂蛋白、纤维蛋白等,并将自身包裹其中而形成的膜样物质,又称胞外多糖(或多糖蛋白)复合物【391。在PA生物被膜相关的感染性疾病中,生物被膜内细菌表现出极强耐药性的机制尚不十分清楚。目前有表型(phnotype)推断、渗透限制(penetrationlimitation)和营养限制(nutrientlimitation)3种学说。表型推断学说认为,PA生物被膜表现出的抗药性可能是生物被膜内细菌,至少某些细菌采用一种与浮游细菌不同的具有保护作用的生物被膜表型。PA生物被膜的形成周期可分为可逆性黏附期、不可逆性黏附期、成熟期以及消散期 亟±堂僮论窒综述等阶段,而在每个阶段的细菌都有其独特的表型。比如在不可逆性黏附期PA渗透限制学说认为EPS能阻止抗菌药物进入菌体,导致生物被膜内细菌对其耐药。营养限制学说认为,PA生物被膜表层菌容易获得养分和氧气,其代谢产物也可顺利排除,因此代谢比较旺盛细菌生长快。而深层菌因被EPS所包围,不易获得养分和氧气,其代谢产物也不能顺利排除,因此代谢低细菌生长缓慢,甚至部分菌处于“休眠状态”。大部分抗菌药物所针对的是代谢活跃的细菌,因此缓慢生长或处于休眠状态中的细菌在很大程度上增强了PA生物被膜的耐药性。另外,大部分抗菌药物发挥其抗菌活性需要在中性的理化环境中进行,而局部代谢产物的堆积导致生物被膜深层菌处于偏酸环境,影响了其抗菌活性。5小结综上所述,铜绿假单胞菌的耐药机制极其复杂,涉及到灭活酶、作用靶位的改变、膜渗透性降低、外排泵系统以及生物膜等多个因素。多种耐药机制共同作用,使耐药范围和耐药程度进一步增强,最终导致细菌表现出泛耐药特征。因此,深入研究PDR-PA的耐药机制不仅对于指导临床合理使用抗菌药物具有十分重要的意义,而且有望为新一代抗菌药物的研发提供新的思路。参考文献[1]HsuehPR,TengLJ,ChenCY,eta1.Pandrug—resistantAcinetobacterbaumanniicausingnosocomialinfectionsinauniversityhospital,Taiwan[J].EmergInfectDis,2002,8(8):827-832.[2]FalagasME,BliziotisIA,KasiakouSK,eta1.Outcomeofinfectionsduetopandrug-resistant(PDR)Gram-negmivebacteria[J].BMCInfectDis,2005,5:24.【3]3DeplanoA,DenisO,PoirelL,eta1.Molecularcharacterizationofallepidemiccloneofpanantibiotic—resistantPseudomonasaeruginosa[J].JClinMicrobiol,2005,43(3):1198-1204.[4]4UrbanC,TiruvuryH,MarianoN,eta1.Polymyxin-resistantclinicalisolatesofEscherichiacoli[J].AntimicrobAgentsChemother,2011,55(1):388—389.[5】FalagasME,RafailidisPI,MatthaiouDK,eta1.Pandrug—resistantKlebsiellapneumoniae,PseudomonasaeruginosaandAcinetobacterbaumanniiinfections:characteristicsandoutcomeinaseriesof28patients[J].IntJAntimicrobAgents,2008,32(5):450—454. 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亟±堂僮途塞堕读亟±堂位期间班蕴盛墨攻读硕士学位期间研究成果发表论文情况[1]邹明祥,李军,邬国军,武文君,张宁杰,刘文恩,范学工.His-FamA融合蛋白表达载体的构建及其在原核细菌中的表达[J].中国微生态学杂志,2012,24(10):878—882.[2]邹明祥,李军,邬靖敏,梁伟,张宁杰,李虹玲,刘文恩.2010年湘雅医院细菌耐药性监测[J].中国现代医学杂志,2012,22(i0):33-37.[3]MingxiangZou,JunLi,JingmingWu,QingyaDou,YongmeiHu,WenenLiu.IdentificationandmolecularcharacterizationofNDM一1metallo。‘f3——lactamase——producinginEnterobactercloacaeandKlebsiellapneumoniae(待发表).[4]邹明祥,李军,干运,豆清娅,胡咏梅,刘文恩.可移动元件在泛耐药菌中的研究(待发表).[5]邹明祥,李军,干运,豆清娅,胡咏梅,李菲凡,刘文恩.首次从一株泛耐药恶臭假单胞菌中同时检hUlMP-1、VIM-2和armA基因(待发表).[6]晏群,李军,李虹玲,邬靖敏,邹明祥,刘文恩.2011年湘雅医院临床分离病原菌分布及耐药性分析[J].中国病原生物学杂志,2012,7(7):539-543.[7]ZouM,TangL,ZhaoS,ZhaoZ,ChenL,ChenP,HuangZ,LiJ,ChenL,FanX.Systematicreviewandmeta—analysisofdetectinggalactomannaninbronchoalve01arlavagefluidfordiagnosinginvasiveaspergillosis[J].PLoSOne,2012:7(8):e43347.[8]邹明祥,邬靖敏,李军,豆清娅,周蓉蓉,黄螈,刘文恩.产NDM—l肺炎克雷伯菌中国分离株的初步研究[J].中国当代儿科杂志,2012,14(8):616—621.[9]邹明祥,邬靖敏,李军,梁伟,李虹玲,刘文恩,廖经忠.湘雅医院细菌耐药性监测[J].实用预防医学,201l,18(10):1823-1826.[10]邹明祥,武文君,李军,邬国军,张宁洁,刘文恩,范学工.金黄色葡萄 球菌甲氧西林耐药辅助基因femB的克隆和原核表达[J].生命科学研究,2012,16(3):223—227.[11]晏群,邬靖敏,李军,张宁洁,刘文恩,邹明祥.6种检测耐甲氧西林金黄色葡萄球菌方法的应用评价[J].中国现代医学杂志,2012,22(26):65—69.[12]邹明祥,武文君,邬靖敏,李军,张宁洁,刘文恩,范学工.长沙地区临床分离金黄色葡萄球菌的耐药监测[J].中国微生态学杂志,2012,24(5):415—418.[13]梁伟,邹明祥,邬靖敏,邬国军,李军,豆清娅,刘文恩.长沙地区临床分离碳青霉烯类耐药鲍曼不动杆菌的分子流行病学特征[J].中南大学学报(医学版),2012,37(5).521—526.参与的课题[1]湖南省发改委课题:湖南地区临床主要泛耐药革兰阴性杆菌的流行病学及耐药机制研究。湘发改投资[2012]305号。[2]中南大学自由探索研究创新基金:长沙地区产金属B一内酰胺酶铜绿假单胞菌的基因特征(ZYl1098) 致谢三年的研究生生活转瞬即逝,回首过去,感慨良多。在三年的成长过程中,虽有挫折、失败和困惑,但感受更多的是导师的殷切关怀和同学问的友情。在毕业论文完成之际,我要深深的感谢三年来指导我,帮助和支持过我的老师,同学和亲人。衷心感谢我的导师邹明祥副教授,感谢他三年来在学习、科研、生活方面对我的悉心培养和谆谆教诲。本课题从选题、设计、实施到论文的撰写,都凝结着导师的心血。邹明祥老师严谨的治学态度,求实创新的科研精神,谦虚谨慎,求真求实的工作态度使我终身受益,能成为他的学生,我深感荣幸。在导师的影响下,我改掉了很多粗枝大叶的习惯,也懂得了很多为人处世的道理。我会在以后的人生道路上以导师为榜样,踏踏实实的走好每一步。在此向敬爱的导师致以学生最诚挚的谢意!衷心感谢检验科刘文恩主任、易斌副主任、钟白云副主任、李艳明老师以及细菌室郭思建老师、张晋湘老师、李宪老师、晏群老师和李虹玲老师,感谢他们三年来的悉心指导和大力支持。衷心感谢检验科的全体老师对我的无私帮助!衷心感谢中南大学微生物学教研室邬国军副教授,湖南省疾控中心夏听老师。感谢他们在实验过程中提供的专业指导和帮助。感谢微生物教研室的所有老师对我的帮助和支持!感谢我的师姐邬靖敏,师兄梁伟,师妹豆清娅、胡咏梅、干运、张瑞雪及黄螈对我的帮助和支持,是您们热情的帮助才使我的实验得以顺利进行。最后真挚地感谢所有关心和帮助过我的朋友和亲人们160

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