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时间:2018-07-06
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1、温莪术蛋白双向电泳技术的建立【关键词】蛋白提取;双向电泳;TCA/丙酮沉降法;超速离心 Abstract:Objective:Toestablishthesystemof2-DgelelectrophoresisproteomeoftheleafofCurcumaethodandultracentrifugation,andthenseparatedbytensionalelectrophoresis(2-DE),mobilepHgradientstripsusedinandtheEttanTMDaltⅡsysteminSDS-PAGE.The2-Dgelethod.Conclusion:
2、 Asystemoftensionalelectrophoresisofcurcumaensionalelectrophoresis(2-DE);trichloroaceticacid(TCA)/acetoneprecipitationmethod;ultracentrifugation O’Farrell于1995年创立的聚丙烯酰胺双向电泳技术(tensionalelectrophoresis,2-DE)是目前分析组分复杂蛋白质分辨率最高的工具之一。近年来,双向电泳技术在植物中应用日多,但主要集中在拟南芥、水稻、小麦等典型植物上,而在药材中的应用报道较少[1-3]。温州的地道药材——温郁金
3、(Curcumaasham公司);丙烯酰胺、甲基双丙烯酰胺、甘氨酸、SDS、尿素、硫尿、低分子量标准蛋白均购自Sigma公司;DTT、碘乙酰胺进口分装,其他为国产试剂。样品提取液(25mmol/LTrisHCl,10mmol/LKCl,20mmol/LMgCl2,1mmol/LPMSF,2mmol/LEDTA,10mmol/LDTT);蛋白裂解液(7mol/L尿素,2mol/L硫尿,2%CHAPS,40mmol/LTris-base);水化液(7mol/L尿素,2mol/L硫尿,2%CHAPS);平衡缓冲液(储存液)[50mol/LTrisHCl(pH8.8),6mol/L尿素,30%甘油,2
4、%SDS,0.25%溴酚蓝溶液];平衡液I(1%DTT的储存液);平衡液II(2.5%碘乙酰胺的储存液);染色液:经典银染法中的各种溶液(固定液,增敏液,银染液,显影液,终止液);琼脂糖封胶液(0.5%琼脂糖/0.002%溴酚兰的电极液)。 1.1.3主要仪器:IPGphorTMIII等电聚焦仪器(美国GE公司);冷冻台式高速离心机(德国eppendorf公司);SDS-PAGE垂直电泳仪(美国Bio-Rad公司);超速离心机(美国贝克曼库尔特有限公司,型号:ProteomeLabXL-A/XL-I);Tytoon9100扫描仪(美国GE公司)。 1.2方法 1.2.1蛋白提取:取新鲜莪
5、术,在液氮中研磨成粉末,称取莪术粉末0.4g,加入3mL提取液,DTT在PMSF加入5min后加入,混匀,超声破碎5min;4℃放置2h,每半小时混匀一次。离心(12000r/min,15min,4℃),取上清再离心一次。取上清,加10倍体积的TCA/丙酮溶液沉淀过夜,离心(12000r/min,10min,4℃),用2mL乙醇洗两次,再用2mL丙酮/0.07%DTT溶液洗2次,离心后,沉淀自然干燥,加裂解液200μL,室温放置5h,离心取上清备用。 1.2.2蛋白浓度测定:采用Bradford法,取10只0.5mL的EP管,依次编号1至10,编号10加入的蛋白为样品溶液,按照表1依次加入各
6、试剂并且测量595nm下的吸光度值制作标准曲线,并画出BSA标准曲线图并计算出待测样品蛋白浓度为:1.053mg/mL。 1.2.3等电聚焦:取出一根7cm的IPG胶条室温解冻。然后取50μL样品溶液加入60μL水化液,再加入20μL1mol/L的DTT储液、1μLIPGbuffer(pH4~7)和1μL0.5%的溴酚兰溶液。混匀后,12000r/min离心10min,取125μL上清加入胶条槽中,去掉胶条的保护模,胶面朝下,将IPG胶条尖端(+端)朝标准型胶条槽的尖端方向放入胶条槽中,慢慢下压胶条,并前后移动,避免生成气泡,使水化液浸湿整个胶条。最后加入适量的覆盖油。按表2所列参数进行IP
7、G胶条的泡涨和等电聚焦电泳,并且最大电流为50mA/根胶条;温度为20℃。 1.2.4胶条的平衡及SDS-PAGE:等电聚焦结束后用去离子水冲洗掉胶条表面的矿物油,进行第一次平衡:将IPG胶条放置在事先盛有5mL平衡液I的平衡管中平衡15min,再用去离子水冲洗掉胶条表面,用镊子夹住胶条的一端,使胶条的侧边接触滤纸,吸干多余的液体,然后进行第二次平衡:在平衡液II中平衡15min,最后用去离子水
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