临床病原学检测与标本的正确留取

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1、临床病原学检测与标本的正确留取痰液标本采集与运送n痰液由气管、支气管和肺泡所分泌n正常情况下分泌物甚少，呼吸道粘膜受刺激时，分泌物增多，但多为清晰、水样，无临床意义。n病理情况下痰量增多，呈不透明并有性状改变采集目的一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。一般原则1采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。2宜采集清晨第二口痰液。3对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。不建议24小时内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。4怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。采集方法1、

2、自然咳痰与雾化倒痰法：无痰或痰量极少者可用3%～5%氯化钠溶液5ml雾化吸入约5min后留取痰液。如有可能，应在护理人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。2、支气管镜法：鼻或口腔插入支气管镜。常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。3、经人工气道吸引法：进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器置适宜负压（成人：40.0～53.3kpa;

3、小儿：＜40.0kpa）。将一次性吸痰管外包装取出，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离（使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，高浓度氧气1～2min）。将痰液注入无菌容器（试管）内，如痰液粘稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲入无菌容器（试管）内。标本运送n痰以深咳排出后，应装于有密封瓶盖的无菌塑料容器中，以免感染自己或他人。n标本应

4、及时送检，室温≤3h。n若不能及时处理，可选择运送培养基运送和保存标本，但不应≥48h。n痰标本要求白细胞（WBC）≥25/LPF。n鳞状上皮细胞（SEC）＜10/LPF。n如不符合上述指标，通知临床重新采样。血培养标本采集血培养指征：n患者出现寒战，体温超过38℃或低体温（≤36℃)■怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状，临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。n白细胞过多（≥10000/μl），并有核左移现象。n中性粒细胞过少（

5、≤1000/μl）。采血时机：一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养最好在抗菌药物治疗前或停用抗菌药物24h后，以寒战、发热时采集为宜。采血流程：消毒：1培养瓶消毒程序：用酒精消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。2皮肤消毒程序：用安尔碘消毒液从穿刺点向外划圈消毒，至消毒区域直达5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常须30s以上）穿刺采血。静脉穿刺和培养瓶接种：采用负压血培养瓶，将患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。先注于厌氧培养瓶，采血部位n采血部位通常为肘静脉。n对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶或髂前（后）上棘处消毒后抽取骨髓培养。n疑似细菌性心内

6、膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。采血量：以培养基与血液之比10:1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次每培养瓶采血8～10ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2ml。需要采集多少份血培养？每名患者应至少采集2份血培养，最好为3份（CLSI规定采集2～3份血培养）。在一名败血症患者初期诊断时，绝不能只采集1份血培养（CLSI强调了此观点）。注意：1“份”是指一次静脉穿刺。运送要求■所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h内。■如果不能及时送检，宜置于室温环境。切勿冷藏。■送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送

7、检时间。■安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。报告要求：■紧急口头（电话）报告：血培养出现阳性警报时，立即进行革兰氏染色、镜检，并在最短时间内将结果向临床主管医生进行紧急口头（电话）报告。■最终结果（书面）报告脑脊液采集和运送n穿刺腰椎获得，特殊情况可采用小脑延髓池或脑室穿刺n采集后置无菌管立即送检，不能超过1h，同时应避免凝固和混入血液n培养脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌等苛养菌时，应将标本置于25℃条件下保温送检，不可置冰箱保存n做病毒检查的脑脊液标本应放置冰块，可在4℃保存72小时。尿液采集和运送■正常人膀胱中的尿液是无菌→外尿

8、道排出时受外尿道中正常菌群污染→混有细菌。■采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨