western blot操作步骤

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1、WESTERNBLOTTING过程图解图中绿色的是夹玻璃片的架子玻璃板对齐后放入架中，把两侧的夹子卡紧。要使短玻璃靠外，长玻璃靠内。然后垂直卡在架子上准备灌胶。操作时要使两玻璃对齐，以免漏胶。图示两块玻璃板放在一个架子上。配10％分离胶，加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌胶时，可用10ml枪吸取5ml胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。然后胶上加一层水，液封后的胶凝的更快。（灌胶时开始可快一些，胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气泡。加水液封时要很慢，否则胶会被冲变型。）当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了。再等3min使胶

2、充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。按前面方法配4％的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。均匀插入梳子梳子已经插好。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收缩减小，从而使加样孔的上样体积减小，所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。浓缩胶干后，用手拿住梳子的两边均匀用力，拔起梳子将玻璃板从夹子上取下，用水冲一下将玻璃板放入电泳槽中。小玻璃板面向内，大玻璃板面向外插入另一块玻璃板，也是小玻璃板面向内，大玻璃板面向外。若只跑一块胶，那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外

3、两块玻璃板都放好后夹紧（拇指按下夹子）放入电泳槽中向内槽中加电泳缓冲液，如果不漏，在向外槽中加，如果漏，就要重新把玻板查好，使内外不交通。电泳液至少要漫过内侧的小玻璃板。测完蛋白含量后，所有蛋白样品调至等浓度后上样。取出上样样品至0.5ml离心管中，加入5×SDS上样缓冲液至终浓度为1×。（上样总体积一般不超过15l，加样孔的最大限度可加20l样品。）上样前要将样品于沸水中煮5min使蛋白变性。加足够的电泳液后开始准备上样。用微量进样器贴壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。（加样太快可使样品冲出加样孔，若有气泡也可能使样品溢出。加入下一个

4、样品时，进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤3次，以免交叉污染电泳时间一般1-2h，电压为100V较好，也可用60V。电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳。取出转移槽取下玻璃板两块玻璃板都已经取下要先将玻璃板撬掉才可剥胶，撬的时候动作要轻，要在两个边上轻轻的反复撬。撬一会儿玻璃板便开始松动，直到撬去玻板。（撬时一定要小心，玻板很易裂。）将浓缩胶（浓缩胶影响操作）和分离胶上不用的部分切去在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和浸过的膜，将夹子打开使白的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫，用玻棒来回擀几遍以擀走里面的气泡。在垫子上垫三层滤纸（可三张纸先叠在一起在垫于垫子

5、上），一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。依次加膜、加胶，再在膜上盖3张滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海绵垫，擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行，要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触，接触后会发生短路。转移液含甲醇，操作时要戴手套，实验室要开门以使空气流通。合起夹子将夹子放入转移槽中，要使夹的黑面对槽的黑面，夹的白面对槽的红面。电转移时会产热，在槽的一边放一块冰来降温。加上转移缓冲液盖上盖子,放入乘有水的水槽中,水槽中加冰袋电转移200mA2-3h后，打开盖子，取出夹子打开夹子，取出膜，如果所用marker是预染marker,可见marker已经转移到膜上,如果不

6、是预染marker，可以把膜转完后将膜用1×丽春红染液染5min，于脱色摇床上摇，然后用水冲洗掉没染上的染液就可看到膜上的蛋白。将膜晾干备用。将膜用TBS从下向上浸湿后，移至含有封闭液的平皿中室温下脱色摇床上摇动封闭1h。按所需稀释浓度滴加一抗（直接加在封闭液里）4℃过夜或37℃3h。第二天取出膜，用TBST洗三次每次10min，然后加入TBS液中，按稀释浓度滴加二抗。室温孵育1h,再用TBST洗三次每次10min。最后DAB显色或者化学发光法显影。