磷脂脂肪酸提取.doc

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1、磷脂脂肪酸分析实验原理:磷脂脂肪酸是几乎所有活体细胞膜的主要成分,周转速率快且随细胞死亡而迅速降解,脂肪酸结构与种类多样,对环境因素敏感,分析结果重复性较好。目前已发现的磷脂物质有1000多种。依据极性有强到弱,磷脂可分为磷脂脂肪酸、糖脂脂肪酸和中性脂肪酸。脂肪酸通常被分为6类,直链顺单烯(cis-)、直链反单烯(tran-)、支链饱和、环状及多烯脂肪酸。脂肪酸经甲酯化后形成脂肪酸甲酯(FAMEs),它们又可分为:羟基取代的FAMEs;酯连接羟基取代的FAMEs;非酯连接羟基取代FAMEs;饱和FAMEs;单不饱和FAMEs;酯

2、连接多聚不饱和FAMEs;非酯连接不饱和FAMEs。仪器及设备气相色谱、MIDI软件数据库、氮吹仪、固相萃取装置、通风橱、离心机、离心管(Teflon盖子),试管(Teflon衬垫)、移液管、SPE硅胶柱(6ml),高纯氮气,一次性吸管,水浴锅试剂柠檬酸缓冲液:柠檬酸3.75g,柠檬酸钠4.41g,用蒸馏水定容至100ml。甲醇、氯仿、盐酸、丙酮、氢氧化钠、正己烷、甲基叔丁基醚(HPLC级)试剂1皂化试剂氢氧化钠45.0gm甲醇(HPLC级)150.0ml蒸馏水150.0ml试剂2甲基化作用试剂:6N盐酸325.0ml甲醇275

3、.0ml试剂3抽提溶剂:正己烷(HPLC级)200.0ml甲基特丁醚(HPLC级)200.0ml试剂4洗脱液氢氧化钠10.80gm蒸馏水900.00ml实验步骤:1、称取2g新鲜土壤于50ml离心管,加入12ml提取液(甲醇:氯仿:柠檬酸缓冲液=2:1:0.8=6.3:3.2:2.5ml)(在加入过程中会有机无机发生分层,建议分别加入),涡旋振荡1min,然后室温下往复式振荡2h,静止10min。2、室温下5000rpm离心10min,上清转入分液漏斗。3、再加10ml提取液于离心管(甲醇:氯仿:柠檬酸缓冲液=2:1:0.8=5

4、.3:2.6:2.1ml),涡旋振荡1min,然后室温下往复式振荡30min,静止10min。4、室温下5000rpm离心10min,上清转入分液漏斗,两次上清合并。5、分液漏斗中加入氯仿5.8ml和柠檬酸缓冲液5.8ml,振荡1min,静止约1h,将下层转入另一收集管,置于50℃水浴,用氮气吹干。然后再加入2ml氯仿,在50℃水浴中用氮气吹干。样品置于-20℃保存。6、把硅胶柱放置在固相萃取装置上,用5ml氯仿预洗脱柱子后,用收集管中加3×0.5ml氯仿溶解样品,并转移到SPE萃取,然后分三次加入20ml丙酮,弃掉洗脱液。再分

5、两次加入甲醇12ml,收集含PLFA的洗脱液。在50℃水浴中用氮气吹干。6、皂化:加入1ml试剂1(NaOH:甲醇:蒸馏水=45g:150ml:150ml)。涡旋振荡5-10秒,盖紧盖子,置沸水浴中5min,然后振荡5-10s,再置于沸水浴中25min。取出后用自来水冷却。8、甲基化:加入2ml试剂2(6NHCl:甲醇=325ml:275ml),涡旋振荡5-10秒。盖紧盖子于80±1℃加热保温10±1min。用自来水冷却。9、萃取:分三次加入9ml试剂3(正己烷:甲基叔丁基醚=200ml:200ml),振荡以提取PLFA甲酯(振

6、荡时间稍长10min)。用滴管吸取上层正己烷相于另一干净试管,注意不要吸入杂质层和下层水相。10、基本洗涤:加入3.0±0.21ml试剂4(NaOH:水=10.8g:900ml),盖紧盖子温和地旋转振荡试管5min,2000rpm离心3min。转移上层溶液。11、浓缩收集液至适当体积,将PLFA甲酯转移到自动上样器小瓶。备注:1)各溶剂沸点:氯仿61.3℃;甲醇64.7℃;正己烷68.7℃;甲基叔丁基醚55.2℃。2)酯化样品中加入13:0与19:0甲基酯或者16:0与24:0甲基酯作内标。影响PLFA提取效率的因素:1)甲醇与

7、土壤比例至关重要2)缓冲液与相应pH值。如用酸性柠檬酸代替中性磷酸盐缓冲液提取酸性有机质土壤,可提高磷脂回收率且避免无机磷污染;又如,C14-C20PLFAs在没有其他成分保护时会氧化而迅速降解,提高酸度可延迟酸败。3)盛放磷脂的玻璃器皿应用10%HCl浸泡后,于450℃烘4h或400℃过夜去除磷脂污染。4)硅胶应绝对避免与水等强极性介质接触,使用前应在120℃活化2h。5)整个提取过程应尽量在避光、低温(<35℃)条件下完成。19:0脂肪酸甲醋为内标,在甲基化之前加入表1表征微生物的PLFA:微生物类型磷脂脂肪酸标记细菌含有以

8、酯链与甘油相连的饱和或单不饱和脂肪酸(如15:0、i15:0、a15:0、16:0、i16:0、16:1ω5、16:1ω9、16:1ω7t、17:0、i17:0、a17:0、cy17:0、18:1ω5、18:1ω7、18:1ω7t、i19:0、a19:0、cy1

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