细菌总数检测.doc

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1、细菌总数检测1定义食品检样经过处理,在一定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后,所得每g(ml)检样中形成的微生物菌落总数。2设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2.1恒温培养箱:36°C±1°C,3O°C±1°C。2.2冰箱:2°C〜5°C。2.3恒温水浴箱:46°C±1°C。2.4天平:感量为0.lgo2.5均质器。2.6振荡器。2.7无菌吸管:1ml(具0.01ml刻度)、10ml(具0.1ml刻度)或微量移液器及吸头。2.8无菌锥形瓶:容量250ml、500mlo2.9无菌培养皿:直径90mmo

2、2.10pH计或pH比色管或精密pH试纸。2.11放大镜或/和菌落计数器。3培养基和试剂3.1平板计数琼脂培养基:见附录中1。3.2磷酸盐缓冲液:见附录中2。3.3无菌生理盐水:见附录中3。4操作方法4.1试验前准备4.1.1将供试品及所有已灭菌的平皿、锥形瓶、匀浆杯、试管、量筒、吸管(1ml、10ml)、稀释剂等移至操作室内。准备好足够用量,避免操作中出入操作间。4.1.2开启无菌室紫外杀菌灯和洁净工作台的空气过滤装置30mino4.1.3操作人员用肥皂洗手,关闭紫外杀菌灯,进入缓冲间,换工作鞋,用消毒液洗手或用乙醇棉球擦手,穿戴好无菌衣、

3、相、口罩、手套等。4.1.4操作前先用乙醇棉球擦手、工作台而,再用乙醇棉球擦拭供试品瓶、盒、袋等的开口处周围,待干后用灭菌剪刀或银了将供试品启封。4.2样品稀释液的制备根据供试品的理化特性与生物学特性,采取适宜的方法制备样品稀释液。样品稀释液制备若需用水浴加温时,温度不应超过45°Co样品稀释液从制备至加入检验用培养基,不得超过1小时。4.2.1固体和半固体样品称取25g样品置盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000r/min〜10000r/min均质Imin〜2min,或放入盛有225ml稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均

4、质器拍打1min~2min,制成1:10的样品匀液。4.2.2液体样品以无菌吸管吸取25ml样品置盛寺*225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10的样品匀液。4.3菌落总数测定4.3.1用1ml无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1ml,沿管壁缓慢注于盛有9ml稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1:100的样品匀液。4.3.2按4.3.1操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换用1次1ml

5、无菌吸管或吸头。4.3.3根据对样品污染状况的估计,选择2个〜3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释时,吸取1ml样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。同时,分别吸取1ml空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。4.3.4及时将15ml〜20ml冷却至46°C的平板计数琼脂培养基(可放置于46°C±1°C恒温水浴箱中保温)倾注平.皿,并转动平.皿使其混合均匀。4.4培养4.4.1待琼脂凝固后,将平板翻转,36°C±1°C培养48h±2h。水产品3O°C±1°C培养72h±3ho4.4.2如果样品中可能含有在

6、琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表而覆盖一薄层琼脂培养基(约4ml),凝固后翻转平板,按4.4.1条件进行培养。4.5菌落计数可用肉眼观察,必要时用放大镜或菌落计数器,记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位(colony-formingunits,CFU)表示。4.5.1选取菌落数在30CFU-300CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30CFU的平板记录具体菌落数,大于300CFU的可-记录为多不可-计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。4.5.2其中一个平板有较大片状菌落生长时,则不宜采

7、用,而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2,代表一个平板菌落数。4.5.3当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。4.6结果与报告4.6.1菌落总数的计算方法4.6.1.1若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内,计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每g(ml)样品中菌落总数结果。4.6.1.2若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时,按下公式计算:YCN=—白―(%+0.1〃J次式中

8、:N——样品中菌落数;EC一平板(含适宜范围菌落数的平板)菌落数之和;⑴——第一稀释度(低稀释倍数)平板个数;m——第二稀释度(高稀释倍数)平板个数;d一稀释因了(

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