脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测

脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测

ID:46592176

大小:390.11 KB

页数:6页

时间:2019-11-26

脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测_第1页
脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测_第2页
脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测_第3页
脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测_第4页
脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测_第5页
资源描述:

《脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在行业资料-天天文库

1、万方数据2008-0644(3)北京师范大学学报(自然科学版)JournalofBeijingNormalUniversity(NaturalScience)脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSCs及转染效果检测*黄雅静”孙万军”孙琪云2’王冬梅2’艾辉胜2’(1)第二炮兵总医院,100088,北京I2)军事医学科学院附属医院,100071,北京)摘要肝细胞生长因子(HGF)对各种组织都具有促分裂、促迁移、促细胞形态发生的作用,尤其是肾脏、肺和肠道.间充质干细胞(MSC)是一种具有多向分化潜能的干细胞,同时还具有相对的定位归巢以及免疫调节作用,由于MSC具有较低

2、的免疫原性,可作为良好的基因载体.为联合应用HGF和MS(3的作用,本实验在分离培养小鼠MSC并鉴定后;应用脂质体介导法将pcDNA3.1-HGF瞬时转染MsC}采用半定量RT-PCR和ELISA法分别鉴定HGF的表达情况.结果表明:转染试剂对Msc的活性无影响,转染细胞形态及定向分化特性未发生改变;HGF在转染后48h达到最高表达量,随时间推移逐渐减低,在10d时仍略高于对照.脂质体介导pcDNA3.1-HGF瞬时转染小鼠MSC后,HGF在转染后10d内升高表达.关键词问充质干细胞;肝细胞生长因子;脂质体间充质干细胞(MSC)来源方便,易分离、培养,经多代扩增后仍保持干细胞

3、活性,可以分化为多种组织细胞,如骨、软骨、脂肪和肌肉;MSC能够分泌多种细胞因子来促进造血干细胞的生长和分化,在造血重建、组织修复和基因治疗等方面都具有广阔的临床应用前景[1-s].本实验首先分离培养了小鼠骨髓来源的MSC,应用流式细胞仪检测细胞表型,并作诱导分化实验以鉴定.然后应用脂质体转染方法将pcDNA3.1一肝细胞生长因子(HGF)瞬时转染MSC,使其高表达HGF,并在转染后在mRNA水平、蛋白水平检测了HGF表达情况.1材料和方法1.1骨髓细胞制备无菌取C57BL/6小鼠股骨,用PBS冲出髓腔内骨髓,淋巴细胞分离液(质量浓度为1.083g·mL.1)分离单个核细胞,

4、PBS洗2次(1200r·min~。10min).1.2MSC培养将制备的骨髓细胞悬液按照1×106cm-2的密度接种于25cm2的培养瓶中,在完全LGDMEM中(含lOOg·L-1胎牛血清,青链霉素双抗),妒=5%C0:,37℃培养箱中静置培养.培养48h后去处悬浮细胞,每3天换液,贴壁细胞达到80%以上融合后,经1.5g·L.1的胰蛋白酶消化,1:2传代.I.3流式细胞仪鉴定MSC表面标志消化收集第2代细胞,用含妒=0.1%小牛血清的PBS重悬细胞,调整细胞数为106mL~.在流式管底部加入5pLFITC收稿日期:2008—01-16或PE标记的单抗(CD34,CDl06

5、,CD45,CD44,CD29,CDl05,Sca-1),加入200pL细胞悬液,避光冰浴30min,上流式细胞仪检测.1.4MSC定向分化当细胞达80%融合时,以5×103cm-2接种于直径6cm的培养皿,加入诱导分化培养液;成脂分化体系包含地塞米松10-6mol·L~,IBMX0.5mmol·L~,维生素C0.1mmol·L~;成骨分化体系包含地塞米松10卅mol-L~,p磷酸甘油10mol·L~,维生素C0.05mol·L~;分别在第4、8、12和16d进行油红0染色和VonKossa染色.1.5转染军事医学科学院段海峰博士惠赠质粒pcDNA3.1一HGF,经转化扩大培

6、养后,应用于转染.质粒pcDNA3.1一HGF为卡那霉素抗性,酶切位点为BamHI和ApaI,应用核酸定量仪定量.取3pg质粒pcDNA3.1一HGF,加300弘L无血清LG-DMEM培养基,混合均匀;取15pLTransquick(脂质体转染试剂),加300弘L无血清LG-DMEM培养基,混合均匀;合并以上2种溶液,混合均匀,室温孵育5min;细胞数按每孔2×105,接种于含2mL完全LG-DMEM培养基的六孔板中,培养24h至细胞对数生长期;对数生长的细胞经无血清培养基洗1次,加入800弘L无血清培养基;预处理溶液200pL加入实验孔,轻柔振荡混匀;设2组对照:一组加入仅

7、含转染试剂的溶液;另一组仅加入无血清培养基;在无血清条件下,37℃,妒一5%CQ温箱培养4h后换为完全培养基,继续培养.1.6转染细胞活性检测在24孔培养板2个孔中按万方数据260一北京师范大学学报(自然科学版)第44卷2x106接种细胞,一孔内加完全DMEM培养基,未做转染处理;另一孔按转染步骤处理,不加质粒,只加转染试剂,培养48h后收集细胞,经台盼兰染色,分别计数活细胞.1.7检测转染后细胞HGF表达情况转染48h开始,隔天取1孔细胞提取RNA,半定量RT—PCR方法检测HGF基因的表达.同时吸取

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文

此文档下载收益归作者所有

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文
温馨提示:
1. 部分包含数学公式或PPT动画的文件,查看预览时可能会显示错乱或异常,文件下载后无此问题,请放心下载。
2. 本文档由用户上传,版权归属用户,天天文库负责整理代发布。如果您对本文档版权有争议请及时联系客服。
3. 下载前请仔细阅读文档内容,确认文档内容符合您的需求后进行下载,若出现内容与标题不符可向本站投诉处理。
4. 下载文档时可能由于网络波动等原因无法下载或下载错误,付费完成后未能成功下载的用户请联系客服处理。