DNA抽提和质粒DNA制备

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1、DNA抽取和质粒DNA制备刘湘帆提取DNA总的原则1保证核酸一级结构的完整性；2其他生物大分子如蛋白质、多糖和脂类分子的污染应降低到最低程度；3核酸样品中不应存在对酶有抑制作用的有机溶剂和过高浓度的金属离子；4其他核酸分子，如RNA，也应尽量去除。核酸分子抽提的技术设计核酸的释放：破裂细胞释放核酸机械法与非机械法（非机械法中溶胞法是应用最广泛的方法）核酸的分离与纯化：将含有核酸分子复杂复合物中，将核酸与其他物质分离非核酸的大分子污染物（蛋白质、多糖和脂类分子）、非需要的核酸分子、试剂和溶液核酸的浓缩、沉淀与洗涤沉淀可去除部分杂质与某些盐离子加入一定的盐类（醋酸钠、氯化钠等）后使用有机

2、溶剂（如乙醇、异丙醇等）少数盐类可使用70-75%的乙醇洗涤鉴定与保存（一）核酸的鉴定浓度鉴定纯度鉴定完整性鉴定浓度鉴定1紫外分光光度法：测定DNA在A260nm的光吸收值。如计算DNA浓度A260×稀释倍数×50＝μg/ml紫外分光光度法只用于测定浓度大于0.25ug/ml的核酸溶液。2荧光光度法荧光染料溴化乙锭，可嵌入到碱基平面，而发出荧光，且荧光强度与核酸含量呈正比。适用于低浓度核酸溶液的定量分析。纯度鉴定1紫外分光光度法：在260nm和280nm处测定DAN溶液的光吸收，A260与A280之比应在1.80。低于此值表明制备物中留有蛋白质成份。高于此值表明有RNA的残留量。A2

3、60/A280比值是纯度检测的重要指标。2荧光光度法核酸电泳结果进行评定。完整性鉴定凝胶电泳法：基因组DNA电泳，在电场中泳动慢，如果发生降解，可出现电泳图谱脱尾现象；总RNA电泳，观测各条带的含量，提示是否存在RNA降解；如加样槽中存在条带，可能是DNA污染。核酸的贮存——DNA保存1短期贮存：4℃或-20℃存放于TE（tris和EDTA）缓冲液中。2长期贮存：TE缓冲液中-70℃保存数年；在DNA溶液中加一滴氯仿可有效防止细菌和核酸的污染。核酸的贮存——RNA保存RNA可溶于0.3mol/L的醋酸钠溶液或双蒸水，在-70℃保存。RNA可溶于70%的乙醇溶液或去离子的甲酰胺溶液中，

4、可在-20℃保存。基因组DNA的分离与纯化DNA样品准备常见的标本：血液、尿液、唾液、组织及培养细胞等生物组织：最好新鲜组织，若不能马上提取，应贮存－70℃或液氮DNA提取1酚抽提法：先用EDTA、SDS、蛋白酶K破碎细胞，消化蛋白，然后用pH8的Tris饱和酚或酚-氯仿抽提DNA，最后乙醇或异丙醇进行沉淀。获DNA大小为100－150kb。主要试剂的作用：EDTA：1二价金属螯合剂，抑制核酸酶；2降低细胞膜的稳定性SDS的作用：1溶解膜蛋白和脂肪，从而是细胞膜破裂；2溶解核膜和核小体，使其解聚，将核酸释放出来；3对RNA、DNA酶有抑制作用；4与蛋白质形成R-O-SO3….R蛋白质

5、复合物，使蛋白质变性。蛋白酶K：水解蛋白质的作用，消化DNA酶和细胞中的蛋白质。蛋白酶K与其他蛋白酶相比，它具有更强的水解能力，而且在SDS、EDTA存在时仍保持较高活性，可同时使用。酚可以使蛋白质变性沉淀、抑制DNA酶活性。PH8.0的Tris溶液可以似的抽提出的DNA进入水相，减少在蛋白质层滞留。在酚或酚-氯仿中加入少许的异戊醇，是可以减少实验中的气泡的产生，而且利于分相，保持分相的稳定性。2甲酰胺解聚法：破碎细胞同上，然后用高浓度甲酰胺解聚蛋白质与DNA的结合，再透析获得DNA。高浓度甲酰胺可以裂解蛋白质与DNA的复合物，可以使蛋白质变性。减少了酚多次抽提的步骤甲酰胺解聚法适用

6、于从标本中制备高分子量的DNA样品。可得DNA200kb左右。3玻璃棒缠绕法：用盐酸胍裂解细胞，将裂解物铺于乙醇上，然后用带钩或U型玻璃棒在界面轻搅，DAN沉淀液绕于玻棒。生成DNA约80kb。4异丙醇沉淀法：基本同1法，仅用二倍容积异丙醇替代乙醇，可去除小分子RNA（在异丙醇中可溶状态）。5表面活性剂快速制备法：用TritonX-100或NP40表面活性剂破碎细胞，然后用蛋白酶K或酚去除蛋白，乙醇沉淀或透析。DNA样品的纯化：透析、层析、电泳及选择性沉淀。电泳法简单、快速，是DNA样品纯化最重要的方法。琼脂糖电泳和聚丙烯酰胺电泳。PAGE分辨率高，适用于5-500bp大小的片段。琼

7、脂糖含量％（W/V）线性DNA分离范围（Kb）0.35-600.61-200.70.8-100.90.5-71.20.4-61.50.2-32.00.1–2DNA的浓缩1、固体聚乙二醇（PEG）浓缩：用透析袋外敷PEG至合适量。2、丁醇抽提浓缩：DNA溶液中水可分配到正丁醇或仲丁醇，但DNA不会。因此重复几次可显著减少DNA体积。DNA的检测溴乙锭染色：在254nm紫外光下检测，如需回收最好在300nm紫外光下割胶，否则易使嘌呤断链，在1cm宽带上可检到1