小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备.pdf

小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备.pdf

ID:55613283

大小:517.93 KB

页数:3页

时间:2020-05-20

小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备.pdf_第1页
小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备.pdf_第2页
小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备.pdf_第3页
资源描述:

《小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备.pdf》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在行业资料-天天文库

1、动物医学进展。201l,32(12):67—69ProgressinVeterinaryMedicine小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备赵文婧,鲁承,杜秋明,高旭,高建伟,申峰勇,张颖,袁娜,房靖添(延边大学农学院动物医学系,吉林延吉133000)摘要:采用杂交瘤技术,用纯化的鹅细小病毒(Gooseparvovirus,GPV)VP3蛋白免疫Balb/c小鼠制备单克隆抗体(mAb),经间接ELISA方法筛选和有限稀释法进行3次亚克隆后获得一株抗鹅细小病毒VP3蛋白杂交瘤细胞株(4E5)。经鉴定,该mAb为IgG1亚型,轻

2、链为K链。Westernblot试验结果表明,获得的4E5mAb可特异性地识别鹅细小病毒VP3蛋白。本试验成功制备了抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体,为研究鹅细小病毒病诊断方法奠定了基础。关键词:鹅细小病毒;单克隆抗体;VP3蛋白中图分类号:$852.659.2;S858.33文献标识码:A文章编号:1007-5038(2011)12—0067—03鹅细小病毒病俗称为小鹅瘟,是由鹅细小病毒剂、HAT培养基(hypoxantinaminopterinthymidin(Gooseparvovirus,GPV)引起的主要侵害413龄~m

3、edium)、HT培养基(hypoxantinthymidinmedi-2o日龄雏鹅和雏番鸭的一种烈性传染病。由于该urn)、辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG、单克隆抗病病程短,传播速度快,病死率高[1],严重危害养鹅体亚类鉴定试剂盒为Sigma公司产品。业的发展。GPV结构多肽有3种,即VP1、VP2、1.2方法VP3L2],分子质量分别为85、61、57.5ku,其中VP31.2.1抗原制备鹅细小病毒VP3基因原核表达为主要结构多肽r引。研究发现VP3基因是鹅细小蛋白经亲和层析法进行蛋白纯化。取含10mg的融病毒核衣壳的主要成

4、分,约占总蛋白含量的8O,合蛋白溶液加入1mL已平衡好的500g/L的谷胱具有较高的保守性,能够诱导机体产生中和抗体,是甘肽Sepharose4B溶液中,室温搅拌1h,500r/minGPV主要保护性抗原[4_。虽然GPV最早是由我离心5min,弃上清。用l0倍于Sepharose4B的国学者分离获得,但我国对GPV分子生物学方面的PBS洗涤,500r/min离心5min,弃上清,重复2次。研究却起步较晚[7]。本试验制备了抗GPVVP3单按照1;1的比例加入还原性谷胱甘肽洗脱液(50克隆抗体,为研究快速、简便、特异的鹅细小病毒病

5、mmol/LTris-HC1、10mmol/L还原性谷胱甘肽,诊断方法奠定基础pH8.O),室温孵育10min,500r/min离心5min,1材料与方法吸取上清,重复2次。进行SDS-PAGE电泳检测蛋1.1材料白纯化情况。GPV标准株来自中国兽医药品监察所,GPV1.2.2动物免疫按1:1比例将抗原与弗氏完延边株、鹅副黏病毒(Gooseparamyxovirus,全佐剂乳化后,皮下多点注射6周龄~8周龄Balb/cGPMV)和鹅细小病毒VP3基因原核表达蛋白由延小鼠(0.2mL/只)进行初次免疫,分别在14d、21d边大学农学

6、院预防兽医实验室提供,鼠抗GPV阳性将抗原与弗氏不完全佐剂进行乳化,进行二免及三血清为延边大学农学院预防兽医实验室用标准株免免。在取小鼠脾脏细胞进行细胞融合的前3d尾静疫制备;Balb/c小鼠购自吉林大学实验动物中心;骨脉加强免疫(50g/只)。髓瘤细胞SP2/0为延边大学农学院预防兽医实验室1.2.3融合用骨髓瘤细胞的制备从液氮中取出保存;RPMI一1640培养液为Invirogen公司产品;聚冻存的骨髓瘤细胞进行复苏,加入5mL完全培养乙二醇(MW1450)、弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐液,置于37℃、体积分数为5CO。培养箱中

7、培养。收稿日期:2011—08—31基金项目:吉林省牧业管理局项目(200902)作者简介:赵文婧(1986一),女,吉林通化人,硕士研究生,主要从事动物传染病学研究。*通讯作者赵文婧等:小鼠抗鹅细小病毒VP3蛋白单克隆抗体的制备69进行处理,防止细胞返祖,并加强了细胞对HAT的敏感性,利于融合。本试验在融合剂的选择上,选用了对细胞的毒性较小的PEG1450,这更利于细胞融合后的生长。通过ELISA法检测及有限稀释法多次亚克隆,便能得到我们所需要的能稳定分泌抗体的单克隆融合细胞。目前检测鹅细小病毒的方法有中和试验、免疫荧光试验、琼

8、脂扩散试验、酶联免疫吸附试验以及普通PCR等方法[1引,检测方法较繁琐,耗时长。快速的检测方法有待研制,如胶体金诊断试纸条,单克隆M.蛋自分子质量标准;1.阴性尿曩液l2.GPMV;3.GPV-VP3蛋抗体的制备为该检测方法研制奠定了基础。白;4.

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文

此文档下载收益归作者所有

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文
温馨提示:
1. 部分包含数学公式或PPT动画的文件,查看预览时可能会显示错乱或异常,文件下载后无此问题,请放心下载。
2. 本文档由用户上传,版权归属用户,天天文库负责整理代发布。如果您对本文档版权有争议请及时联系客服。
3. 下载前请仔细阅读文档内容,确认文档内容符合您的需求后进行下载,若出现内容与标题不符可向本站投诉处理。
4. 下载文档时可能由于网络波动等原因无法下载或下载错误,付费完成后未能成功下载的用户请联系客服处理。